Name: סינתזה כיול nanoprobes זרחני עבור הדמיה חמצן במערכות ביולוגיות (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-03-03T17:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 38 s
Description: למד לסנתז ולכייל nanoprobes זרחניים מבוססי פורפירין פלטינה ופלדיום להדמיית חמצן במערכות ביולוגיות. השיטה מדגימה בניית חיישנים דנדריטיים עם שכבת פוליאתילן גליקול הידרופילית לניטור מדויק.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

תמיכה של מענקים EB007279 ו HL081273 מארה&quot;ב NIH היא הודתה בהכרת תודה.

<ol><li>Vanderkooi, J. M., Maniara, G., Green, T. J., Wilson, D. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+optical+method+for+measurement+of+dioxygen+concentration+based+on+quenching+of+phosphorescence%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">An optical method for measurement of dioxygen concentration based on quenching of phosphorescence.</a> J. Biol. Chem. 262, 5476-5482 (1987).</li>
<li>Rumsey, W. L., Vanderkooi, J. M., Wilson, D. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+of+phosphorescence%3A+A+novel+method+for+measuring+the+distribution+of+oxygen+in+perfused+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Imaging of phosphorescence: A novel method for measuring the distribution of oxygen in perfused tissue.</a> Science. 241, 1649-1651 (1988).</li>
<li>Lebedev, A. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dendritic+phosphorescent+probes+for+oxygen+Imaging+in+biological+systems%5BTitle%5D)+AND+%22Acs+Applied+Materials+and+Interfaces%22%5BJournal%5D)">Dendritic phosphorescent probes for oxygen Imaging in biological systems.</a> Acs Applied Materials and Interfaces. 1, 1292-1304 (2009).</li>
<li>Finikova, O. S., Cheprakov, A. V., Beletskaya, I. P., Carroll, P. J., Vinogradov, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+versatile+synthesis+of+substituted+tetrabenzoporphyrins%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Organic+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Novel versatile synthesis of substituted tetrabenzoporphyrins.</a> Journal of Organic Chemistry. 69, 522-535 (2004).</li>
<li>Lindsey, J. S., Schreiman, I. C., Hsu, H. C., Kearney, P. C., Marguerettaz, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rothemund+and+Adler-Longo+Reactions+revisited%3A+Synthesis+of+tetraphenylporphyrins+under+equilibrium+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Organic+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Rothemund and Adler-Longo Reactions revisited: Synthesis of tetraphenylporphyrins under equilibrium conditions.</a> Journal of Organic Chemistry. 52, 827-836 (1987).</li>
<li>Lebedev, A. Y., Troxler, T., Vinogradov, S. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Design+of+metalloporphyrin-based+dendritic+nanoprobes+for+two-photon+microscopy+of+oxygen%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Porphyrins+and+Phthalocyanines%22%5BJournal%5D)">Design of metalloporphyrin-based dendritic nanoprobes for two-photon microscopy of oxygen.</a> J. Porphyrins and Phthalocyanines. 12, 1261-1269 (2008).</li>
</ol>

<table border="1" cellspacing="0" cellpadding="0"&gt;<tr<td<strong&gt; קיצור</strong<strong</strong</td&gt;<td<strong&gt; שם מלא</strong<strong</strong</td&gt;</tr&gt;<tr<td&gt; NMP</td&gt;<td&gt; N-methylpyrrolidinone</td&gt;</tr&gt;<tr<td&gt; TFA</td&gt;<td&gt; Trifluoroacetic חומצה</td&gt;</tr&gt;<tr<td&gt; DIPEA</td&gt;<td&gt; Diisopropylethylamine</td&gt;</tr&gt;<tr<td&gt; HBTU</td&gt;<td&gt; 2 - (-1H benzotriazol-1-י.ל.) -1,1,3,3-tetramethyluronium hexafluorophosphate</td&gt;</tr&gt;<tr<td&gt; DMSO</td&gt;<td&gt; Dimethylsulfoxide</td&gt;</tr&gt;<tr<td&gt; CDMT</td&gt;<td&gt; CDMT = 1-כלורו-3 ,5-dimethoxytriazine</td&gt;</tr&gt;<tr<td&gt; המוזיאון</td&gt;<td&gt; המוזיאון = N-methylmorfoline</td&gt;</tr&gt;</table

סינתזה כיול nanoprobes זרחני עבור הדמיה חמצן במערכות ביולוגיות

Synthesis and Calibration of Phosphorescent Nanoprobes for Oxygen Imaging in Biological Systems

מדידת חמצן על ידי מרווה זרחני [1, 2] מורכב מהשלבים הבאים: 1) בדיקה מועבר לתוך המדיום של עניין (למשל דם או נוזל interstitial); 2) את האובייקט מואר עם אור באורך גל מתאים כדי להלהיב בדיקה למצב שלישיה שלה; 3) זרחני הנפלט נאסף, ואת כמובן הזמן שלו הוא ניתח להניב את חייו זרחני, אשר מומר ריכוז החמצן (או הלחץ החלקי, ת.ד.<sub&gt; 2</sub&gt;). החללית אסור באינטראקציה עם הסביבה הביולוגית ובמקרים מסוימים להיות 4) מופרשים מן המדיום עם סיום המדידה. כל אחד משלבים אלה מטילה דרישות על עיצוב המולקולרי של בדיקות זרחני, המהווים מרכיב רק פולשני של פרוטוקול המדידה. כאן אנו סוקרים את העיצוב של nanosensors זרחני הדנדריטים למדידות חמצן במערכות ביולוגיות. הבדיקות כוללות Pt או Pd porphyrin מבוססי polyarylglycine (AG) dendrimers, שונה שולי עם פוליאתילן גליקול (PEG של) שאריות. עבור עירור שני הפוטונים יעיל, טרמיני של dendrimers עשוי להיות שונה עם שני הפוטונים chromophores האנטנה, אשר ללכוד את האנרגיה עירור וערוץ אותו ליבות שלישיה של בדיקות באמצעות intramolecular סריג (פורסטר תהודה העברת אנרגיה). אנו מתארים את המאפיינים photophysical המפתח של בדיקות כיול להציג פרוטוקולים מפורטים.

אנו מציגים עקרונות של מדידות חמצן על ידי מרווה זרחני ועיצוב סקירה של porphyrin מבוססי nanosensors הדנדריטים הדמיה חמצן במערכות ביולוגיות.

מדידת חמצן באמצעות כיבוי פוספורסנציה [1, 2] מורכבת מהשלבים הבאים: 1) הגשתו של הגשוש אל תוך המצע הרלוונטי (למשל, דם...

אנו מציגים את התכנון של גששים פוספורסצנטיים לחמצן המבוססים על DERs של פורפירין פלטינה ופלדיום. הגששים מורכבים מליבות של פורפירין מתכתי המעטפות דנדרון ושכבת פוליאתילנגליקול הידרופילית פריפריאלית; בניית הגששים והכיול שלהם יודגמו במאמר זה. שלום, שמי לואיס סינקס.אני עובד עם פרופסור Sergei OV כאן במחלקה לביוכימיה וביופיזיקה באוניברסיטת פנסילבניה. אני Emmanuel Losis, גם אני מה-Vina. אני גם מה-, ואני Sergei V. מדידות חמצן ביולוגי באמצעות זרחן וכיבוי (quenching) משתמשות בזרחן ובגששים אקסוגניים, המוחדרים ישירות למצע הנחקר.גששים של דם או נוזל בינתיים הם הרכיב הפולשני היחיד בסכימת המדידה הדורש תשומת לב מיוחדת לתכנונם. היום נדגים לכם פרוצדורה לסנתזה וכיול של ננו-גששים פוספורסצנטיים דנדריטיים למדידת חמצן במערכות ביולוגיות. אנו משתמשים בפרוצדורה זו כדי לסנתז ולאפיין גששים למדידות חמצן חלקיות וכפולות.אם כן, בואו נתחיל. לפני שנתחיל בבניית הגששים, נעבור תחילה על התאוריה הבסיסית העומדת מאחורי פוספורסנציית גששים. פוספורסנציה מקורה במצב הטריפלט בעל זמן חיים ארוך.יש לתכנן את מולקולת הגשוש כך שתניב נבח quantum גבוה של מצב הטריפלט ותפלוט פוספורסנציה במקום פלואורסנציה. עירור הגששים מתבצע באמצעות פוטון אחד, או במקרה של גששים מיוחדים המועצמים על ידי שני פוטונים, באמצעות מנגנון של שני פוטונים. עירור על ידי פוטון אחד מספק בדרך כלל רזולוציה מרחבית נמוכה יותר, אך דורש ציוד פשוט יותר וניתן לשימוש במדידות בנקודה בודדת עם פוספורימטרים מסיבים אופטיים המבוססים על LED.בעודו במצב הטריפלט, הגשש עלול לחוות מפגשים התנגשויות עם מולקולות חמצן, אשר יכולות לבטל את מצב הטריפלט בתהליך הנקרא כיבוי (quenching). לפיכך, בנוכחות חמצן, זמן מחיי הפוספורסנציה מתקצר. כתוצאה מהכיבוי, התלות של זמן מחיי מצב הטריפלט בכמות החמצן בסביבה מאופיינת על ידי משוואת Stern-Volmer.בניסויי in vivo, הגשונן מוחדר אל הדם או אל הנוזל הבין-תאי של בעל חיים, ופני הרקמה מוארים באור באורך גל מתאים כדי להעביר את הגשונן למצב הטריפלט המעורר שלו. כדי למדוד את זמן החיים הפוספורסצנטי, הפוטונים הפוספורסצנטיים שנפלטו נספרים לאורך זמן. לדוגמה, לאחר פולס העירור, ייתכן שייאספו 3,609 פוטונים בחמש מיקרו-שניות הראשונות, 1,421 פוטונים בחמש מיקרו-שניות הבאות, וכן הלאה עד שלא ייאספו יותר פוטונים.המספרים בbins המלוטשים אל מול הזמן מייצגים את דעיכת הפספורסנציה, אשר מנותחת כדי להפיק את זמן חיי הפספורסנציה. בדימות, הליך זה מיושם על כל פיקסל בתמונה, מה שיוצר מפות של זמני חיי פספורסנציה. מדידות של זמני חיים אינן רגישות להטרוגניות של התפלגות הגשש ברחבי האובייקט, תופעה הנפוצה בדגימות ביולוגיות.כעת נראה כיצד להכין את הגששים. התחילו את הליך הסינתזה על ידי הוספת אלדהיד ארומטי לתמיסה 0.01 מולרית של tetra hydro iso indole. ערבבו את תערובת התגובה במשך 10 דקות בחושך ובטמפרטורת החדר.לאחר מכן, הוסיפו boron trifluoride diethyl etherate והמשיכו לערבב במשך שעתיים נוספות. בשלב הבא, הוסיפו dichloro(cyano)benzoquinone או DDQ, דבר שגורם לשינוי בצבע מאדום חיוור לירוק כהה; השאירו את התערובת למשך לילה תחת ערבוב רציף. למחרת, שטפו ויבשו את התמיסה, ולאחר מכן רכזו אותה בוואקום.גידול גבישים חוזר של השארית מספק את תוצר היעד כאבקה ירוקה. התנובה היא בדרך כלל סביב 50%. לאחר מכן, יש לטפל בפורפירין בבסיס חופשי עם palladium acetate. יש לעקוב אחר ההמרה באמצעות ספקטרוסקופיית UV vista.ההמרה הושלמה לאחר שהפס של הסבון של ה-Dion בין 468 ל-472 ננומטר נעלם. הפורפירין מבודד באמצעות כרומטוגרפיית עמודה על סיליקה ג'ל. כדי להכין פלדיום טטרה בנזו פורפירין, חמצן את הפלדיום טטרה ציקלו פורפירין.במהלך הרפלקס, הצבע משתנה מאדום כהה לירוק עמוק; יש לאייד את הממס, לדלל את השארית בשטיפה של di chloro methane, לייבש ולרכז את הפאזה האורגנית בוואקום. לאחר כרומטוגרפיה על סיליקה ג'ל, יש לבודד את palladium tetra benzo porphyrin כאבקה בכחול-ירוק. לאחר מכן, יש לבצע הידרוליזה לקבוצות ה-etro ההיקפיות של ה-palladium trab benzo porphyrin.ראשית, טפל את ה-tetra benzo porphyrin Esther בבסיס בתוך tetra hydro purin. לאחר מכן, המשך את ההידרוליזה בבסיס מימי, שקיע את הפורפירין על ידי הוספה של חומצה כלורית וייבש אותו בוואקום. בכך נשלמת סינתזת הפורפירין.כעת נראה כיצד לסנתז entrons. לפני הרכבת הגששים (probes), יש לסנתז מראש את ה-entrons, שהם הענפים של ה-Denmark. אנו משתמשים ב-aero gly, אותם DERs, שניתן להכינם בנוחות מחומרי מוצא זולים באמצעות שיטות ללא כרומטוגרפיה.לאחר מכן, ת'רונים (Therons) בעלי קבוצות אמינו בנקודות המוקד שלהם מחוברים לקבוצות הקריל (caril) שעל הפי (phy), שהראינו הרגע כיצד להכין. לאחר מכן, קבוצות האסטר בפריפריה של ה-DME עוברות הידרוליזה באופן דומה לקבוצות הקרבוקסיל בפריפריה של הפורפירין. בשלב זה, החל מחומצה פולי-קרבוקסילית של Porphyrin DME, ניתן לסנתז גששים של פוטון אחד או שני פוטונים כדי להפיק את גששי שני הפוטונים.ראשית, חברו באופן מגוון מספר מקטעי אנטנה דו-פוטוניים למספר קבוצות קרבוקסיל להיקף הדימר. כעת המשיכו במודיפיקציה של שארית חומצות הקרבוקסיל הנותרות בדימר. התחילו בהוספה של עודף של 1.25 מקוטע HBTU לתמיסה ריכוזית מאוד של הפורפירין ריימר (porphyrin rimer), וערבבו את תערובת התגובה בטמפרטורת החדר למשך 10 דקות.כעת, הוסיפו di isopropyl ethylamine ו-methoxy polyethylene glyco lamine. ערבבו את תערובת התגובה למשך יומיים בטמפרטורת החדר ולאחר מכן הוסיפו ethyl ether. הפרידו את המשקע על ידי צנטריפוגה ובצעו שיקוע חוזר מ-tetrahedran מספר פעמים על ידי הוספת dathyl ether.לבסוף, טהרו את הגשש באמצעות כרומטוגרפיית הֶסְרָה לפי גודל (size exclusion chromatography) על חרוזי פוליסטירן תוך שימוש בטטרהדראן כממס. כעת נבחן את אפיון הגשש והכיול שלו. את ספקטרומי הבליעה והפליטה של הגשש מקבלים באמצעות תמיסות גשש בריכוז 1 µM בתנאי סביבה, תוך שימוש בספקטרופוטומטר סטנדרטי ובפלואורימטר במצב יציב (steady state).בשלב הבא, כדי לקבל את עקומת כיול Stern-Volmer, המאפשרת לנו לקשר בין זמן החיים של הגשוש (probe) לבין ריכוז החמצן, הכנס תמיסה של הגשוש לכלי צילינדרי מיוחד. הכלי ממוקם בתוך תא בבקרה טמפרטורלית, בתוך כלוב אטום לאור עם פתחים לסיבים אופטיים של עירור ופליטה. סגור את הכלי בעזרת פקק, שבו מוחדרת אלקטרודת חמצן רגישה מאוד מסוג Clark.בפקק ישנם גם שני פתחי מחט לכניסה ויציאה של Argonne. הגדירו את הטמפרטורה ל-36 עד 37 degrees Celsius והשאירו את התמיסה בערבוב עד להגעה לשיווי משקל. חברו את סיב העירור לפתח העירור של פוספומטר דיגיטלי הנשלט על ידי מחשב.מקור האור והפוס-פרימטר הם נורת LED בעלת הספק גבוה, שפלטה נשלט על ידי כרטיס המרה מדיגיטלי לאנלוגי בתדר 333 kilohertz. סיב הפליטה מחובר לפתח אופטי נוסף של הפוס-פרימטר, המצומד לפוטודיודת מפולת (avalanche photo diode) הרגישה לאינפרא-אדום. הפלט של הדיודה מוגבר ומוזן לערוץ ה-ad של אותו כרטיס בקרה, מה שמאפשר סנכרון בין ערוצי העירור והפליטה.תוכנת הבקרה שנכתבה במעבדה מייצרת פולסי עירור בכל אורך רצוי, ולאחריהם נאסף דעיכת הפוספורסנציה. הפלט של אלקטרודת החמצן מוגבר ומועבר לכרטיס אנלוגי-דיגיטלי אחר באותו מחשב. זהו כרטיס בתדר נמוך, עד 1 kHz, המשמש להקלטת זרם האלקטרודה בנקודות זמן נבחרות, בדרך כלל 10 פעמים בשנייה.ברגע שטמפרטורת התמיסה מאוזנת, תוכניות היקף הפוספטין והאלקטרודה מאותחלות בו-זמנית. כדי לבצע מדידות מדי 10 שניות, הפלטים שלהן נרשמים באופן סינכרוני לשני קבצים נפרדים. לאחר מכן, Argonne מחובר לפתח הכניסה בפקק הוונט.בעוד שגז Argonne זורם על פני התמיסה הנערבבת, הוא מחליף בהדרגה את החמצן. דבר זה גורם לירידה בזרם האלקטרודה ולעלייה באורך חיי הפספורוס, הנמדד באמצעות ה-phos perimeter. בדרך כלל, החמצן נדחק מהתמיסה באופן מלא.כשעתיים לאחר הרצת הטיטרציה, נתוני האלקטרודה וזמני החיים של הפספורוס מיובאים לתוכנית ניתוח סטנדרטית, היוצרת גרף של ההופכי של זמן החיים של הפספורוס לעומת הלחץ החלקי של החמצן. גרף זה מותאם לקו ישר באמצעות שיטת הריבועים הפחותים כדי לקבל את קבוע כיבוי החמצן כשיפועו. זמן החיים הפספורסצנטי מתקבל או מאותה התאמה או ישירות מהמדידה באפס חמצן.ניתן לחזור על הטיטרציה תוך שימוש בתמיסת הגשש בנוכחות אלבומין, חלבון הנמצא בפלזמה של הדם, וזאת כדי לדמות את התנאים הקיימים בדמו של בעל חיים in vivo. גרפי Stern-Volmer המתקבלים אמורים להיות זהים אם ה-ER מגן על הגשש, וקבוצות ה-peg מבודדות את הגשש ממגע עם האלבומין.ההצעה כאן כוללת שלבים נבחרים בסינתזה של חמצן, ולאחר מכן טיפול ב probes והכיול שלהם. בעת ביצוע הכיול, חשוב לוודא שהתנאים קרובים ככל האפשר לאלו של המערכת הביולוגית הנחקרת.חשוב לוודא שמולקולת הגשש אינה מושפעת ממולקולות ביולוגיות, כגון albumin. זהו כל הפרוטוקול. תודה שצפיתם ובהצלחה בניסוייכם.

synthesis-calibration-phosphorescent-nanoprobes-for-oxygen-imaging

Research

JoVE Journal

Biology

ביולוגיה

אנו מציגים הליך הניסוי למדידת הלחץ החלקי של החמצן (pO2) בתוך כלי הדם המוחיים מבוסס על מרווה חמצן תלויי של זרחני. הכנת בעלי חיים ונהלים הדמיה שהותוו הן עבור שדה גדול של הדמיה מבוססי CCD לאור pO2 בחולדות 2-פוטון הדמיה מבוססת עירור של pO2 בעכברים.

הדם במוח חמצון מדידה על בסיס מרווה חמצן תלויי של זרחני

פרוטוקול זה מתאר שיטה הדמיה תלת ממדי מיקרון בקנה מידה של ריכוז החמצן בסביבה המיידית של תאים חיים במיקרוסקופ על ידי ספין האלקטרון תהודה.

אלקטרונים ספין תהודה מיקרו הדמיה המינים Live עבור מיפוי חמצן

חלקיקים פלורסנט המיוצר במעבדה שלנו משמשים ריכוזי הדמיה יונים והנתיבים יון במערכות ביולוגיות כגון תאים במהלך נוזל איתות ביניים במהלך הומאוסטזיס פיזיולוגיים.

חלקיקים ניאון למדידה של ריכוז יון במערכות ביולוגיות

מונואמין NADPH הוא המקור העיקרי של מיני חמצן תגובתי (ROS) בphagocytes. בשל האופי הארעי של ROS, קשה למדוד ולעקוב אחר רמות ROS חי חיות. שיטה פולשנית לכימות סידורית של ROS בעכברים חיים מתוארת.

הדמית פליטת אור של פעילות מונואמין NADPH במודלים של בעלי חיים שונים

צבעי ציאנין עמידים לאור מחוברים לאוליגונוקלאוטידים כדי לנטר הכלאה על ידי העברת אנרגיה.

סינתזה של בדיקות הכלאה DNA הסטה אורך גל על ​​ידי שימוש photostable Cyanine צבעים

כתב יד זה מציג פרוטוקולים ליישום בדיקות תחמוצת החנקן (NO•) המקודדות גנטית (geNOps) לניטור תנודות NO• של תא בודד בזמן אמת באמצעות מיקרוסקופיה פלואורסצנטית. היווצרות NO• המופעלת על ידי Ca2+ ברמה של תאי אנדותל בודדים הודגמה על ידי שילוב של geNOps עם חיישן Ca2+ כימי.

יישום של תחמוצת החנקן פלורסנט מקודדים גנטית (NO •) בדיקות, את geNOps, הדמיה בזמן אמת של אותות NO • ב תאים בודדים

כאן, אנו מציגים את שיטת האפיון ספקטרוסקופיות של מולקולות אורגניות באמצעות פוטולומיניסנציה זמן לפתור ספקטרוסקופיה בציר ננו-כדי-אלפית בתנאים ללא חמצן. שיטות כדי להסיר ביעילות חמצן מן הדגימות ולהגביל, לפיכך, הפריה חוץ גופית שכבתה מתוארים גם.

זמן לפתור Photophysical אפיון של שלישיה-קציר תרכובות אורגניות ללא חמצן-הסביבה שימוש iCCD המצלמה

אנו מתארים את השימוש של רומן, תדר-תחום מצלמה לאורך החיים עבור מיפוי 2D O2 הפצות עם משטח חיישן אופטי. מערכת המצלמה וניתוח התמונה הליכים מתוארים יחד עם ההכנה, כיול ויישום של כנפונים חיישן עבור המחשה O2 מיקרו הסביבה בריזוספירה של צמחים ימיים.

לומינסנציה הדמיה של החיים של O2 עם תדר-מערכת מבוססי התחום מצלמה

הפרוטוקול מתאר יצירת כדוריות בתפוקה גבוהה להדפסה ביולוגית באמצעות ניתוח רב-פרמטרי של החמצון שלהם ומוות התאים שלהם במיקרוסקופ פלואורסצנטי סטנדרטי. ניתן ליישם גישה זו כדי לשלוט בכדאיות הספרואידים ולבצע סטנדרטיזציה, החשובה במידול רקמה תלת-ממדית, מיקרו-סביבה של הגידול וביו-פבריקציה מוצלחת (מיקרו)של רקמות.

מיקרופריקציה ביולוגית בסיוע מיקרוסקופיית חמצן במחיר סביר של ספרואידים רב-תאיים

מאמר זה מתאר את השימוש במצלמה אופטית חדשה ומהירה עבור הדמיה מקרוסקופית פוטולומינסנציה לכל החיים של דגימות פולטות דעיכה ארוכה. מתוארים תהליכי האינטגרציה, רכישת התמונה והניתוח, לצד הכנה ואפיון של חומרי החיישן להדמיה ויישום ההדמיה בחקר דגימות ביולוגיות.

Fluorescence Lifetime Macro Imager עבור יישומים ביו-רפואיים

אנו מציגים פרוטוקול להדמיה ישירה של פעילויות מטבוליות בתאים המווסתים על ידי חומצות אמינו באמצעות מיקרוסקופ פיזור ראמאן מגורה (DO-SRS) המשולב במיקרוסקופ פלואורסצנטי עירור של שני פוטונים (2PEF).

הדמיה כימית ביו-אורתוגונלית של מטבוליזם בתאים המווסתת על ידי חומצות אמינו ארומטיות

למד לסנתז ולכייל nanoprobes זרחניים מבוססי פורפירין פלטינה ופלדיום להדמיית חמצן במערכות ביולוגיות. השיטה מדגימה בניית חיישנים דנדריטיים עם שכבת פוליאתילן גליקול הידרופילית לניטור מדויק.

סינתזה כיול nanoprobes זרחני עבור הדמיה חמצן במערכות ביולוגיות

גלה סרטונים נוספים