Name: הכנת מועכת תסיסנית Polytene כרומוזום עבור סימון נוגדן (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-02-09T17:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 37 s
Description: למדו את שיטת הסקווש להכנת כרומוזומים פוליטניים מבלוטות הרוק של זבובי Drosophila melanogaster לסימון נוגדן. פרוטוקול זה מאפשר חקר מבנה כרומטין וביטוי גנים במיקרוסקופיה.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

אנו מודים לגב &#39;ו&#39; Lephart לאחזקת מלאי לעוף עבודה זו נתמכה על ידי המכונים הלאומיים לבריאות מענק (GM62916) ואת הקרן הלאומית למדע מענק (MCB0817107).

פרוטוקול הבאים להכנת כרומוזום polytene סקווש מותאמת ההליך המתואר יוהנסן et al. (2009). 1. תרבות של הזחלים third תסיסנית instar על מנת לקבל את הכרומוזומים polytene האופטימלי עבור ההכנות סקווש באיכות גבוהה, תנאים culturing צפוף חיוניים (כלומר, סביב מקום 20 ההטלה זבובים הנשי בקבוק סטנדרטי "4 לעוף שינוי בקבוק חדש בכל יום). בחר את האנשים השמנים ביותר מן היבול הראשון של טיפוס 3 זחלים instar בזמן שהם עדיין משוטטים אך זמן קצר לפני התגלמות. אנו שגרתי תרבות ב 21 ° C 18 ° C אך תניב הכרומוזומים שמנים שעשויים להיות מתאים יותר למטרות מסוימות כמו למשל כאשר הלהקה / אזורים interband צריך להיות דמיינו ברזולוציה גבוהה. 2. קישואים חומרים Polytene <ul style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דראמונד מלקחיים דיסקציה (2) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צלחות פטרי (60 x 15 מ"מ) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מסוכרים שקופיות מיקרוסקופ (פישר מס '12-544-3) (poly-ליזין מצופה) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> 22 x 22 מ"מ מס '15 מכסה מחליק (פישר מס' 12-520B) (מצופה Sigmacote: Sigma # SL2) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> 22 x 40 מ"מ 15 מס 'מכסה מחליק (פישר מס' 12-530B) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> קים, מגבונים </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בניגוד שלב מיקרוסקופ במטרה 20X </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דיואר קטנים (למשל, תרמוס תרמוס או בקבוק) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לונג מלקחיים </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סכיני גילוח </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Coplin צנצנת </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> גומי Maid או מגש טאפרוור (או מגש סגר שווה ערך) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Parafilm (חתך לתוך ריבועים 22 מ"מ) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> 175 גרם משקולות </li></ul> 3. Fixatives ופתרונות <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניות פורמלדהיד 5X. הכן פתרון חדש של 0.74 גרם paraformaldehyde ב 4.0 מ"ל של DH 2 O עם 28 μl של 1N KOH. חם עד 65 ° C לפזר את paraformaldehyde ולאחר מכן לאחסן על הקרח. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מקבע 1. הכן פתרון חדש של 0.5 מ"ל PBS 10X, 50μl טריטון X-100, 3.45 מ"ל DH 2 O ו - 1.0 מ"ל ממלאי פורמלדהיד 5X. חם לפזר את טריטון X-100 ולהשתמש תוך שעה 1. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מקבע 2. הכן פתרון חדש של 1.5 מ"ל DH 2 O, 2.5 מ"ל חומצה אצטית קרחונית, ו 1.0 מ"ל ממלאי פורמלדהיד להשתמש 5X ו תוך שעה 1. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חומצה Lactoacetic פתרון. הכן תמיסה של חומצה לקטית 1 מ"ל, 2 מ"ל DH 2 O, ו - 3 מ"ל חומצה אצטית. </li></ol> 4. סקווש Polytene כרומוזום הכנה: <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשטוף עם מים זחלים להעביר PBS בצלחת רקמה תרבות לנתיחה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אחוז את קצה הפה קרסים עם זוג אחד של מלקחיים, להחזיק את הגוף בערך 2 / 3 הדרך למטה עם זוג אחר, ולמשוך על פיו ווים כך בלוטות הרוק חשופים. הפרד את בלוטות הרוק מהמוח את העין מחושים דיסקים, לנתח משם את השומן בגוף וכל הרקמות הקשורים אחרים מבלוטות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 200 מיקרוליטר של מקבע 1 עד הבאר הראשונה של השקופית שני דיכאון היטב 200-300 מיקרוליטר של 2 מקבע היטב השניים. העברת זוג אחד של בלוטות הרוק בכל פעם עד 1 מקבע היטב אחד לדגור על כמות הזמן הדרוש epitope היעד, בדרך כלל כ - 1-2 דקות. (הערה: כמה epitopes, כמו רוב השינויים היסטון, עשויה לדרוש 5 דקות או קיבעון יותר.) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שימוש במלקחיים להעביר את בלוטות הרוק עד 2 מקבע היטב 2 ו דגירה במשך שתי דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מעבירים את בלוטות ל μl 10-30 של פתרון חומצה Lactoacetic על coverslip Sigmacoted נקי. בעדינות נמוך שקופיות polylysine מצופה מיקרוסקופ על coverslip ו, ללא הפעלת לחץ אנכי, להרים את בלוטות coverslip כך הם בין השקופיות לבין coverslip. להקל מיד תמוגה התא כרומוזומליות להפיץ בקפידה על ידי לתפוס את coverslip עם מלקחיים על קצה אחד בעדינות להעביר אותו מעט קדימה ואחורה, מנסה למזער את הלחץ האנכי על הרקמה. לחילופין להשתמש בצד מחק של עיפרון או אפילו האצבע להזיז בעדינות את coverslip קדימה ואחורה. שים לב כי כל עיכוב בהעברת coverslip הלוך ושוב צפוי לצמצם הפצת הנשק כרומוזומליות כמו שהם נוטים להיות נוקשה יותר בחשיפה הפתרון חומצה Lactoacetic. ערפול של הפתרון הוא בדרך כלל אינדיקציה טובה ההפרדה התא. בעדינות הקשה coverslip באלכסון (כדי למנוע לחץ אנכי) עם הצד במחק של עיפרון כמה פעמים יכול גם לסייע בהפצת כרומוזומליות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מיד לבדוק את הרקמה תחת מיקרוסקופ שלב לעומת יעד של 20 40X או כדי לקבוע אם הכרומוזומים היטב להתפשט. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כאשר כרומוזומליות הפצת מספיק, להגדיר את השקופית עם הצד coverslip על ערימה של קים נקי, מגבונים. המקום השני קים-למחות על גבי ולשטח כרומוזומים על ידי הנחת האצבע על איפה coverslip ממוקם ולחיצה בתקיפות, להימנע מכל תנועה אופקית של coverslip כי היה גזירההכרומוזומים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בדוק את השקופית שוב תחת מיקרוסקופ כדי לקבוע אם התכשיר מתאים למטרה המיועדת. אם הכרומוזומים עברו באופן משמעותי על מועך, להשתמש פחות נפח של תמיסת חומצה Lactoacetic בהכנות הבאים שלך. חזור על שלבים עד 4.1-4.8 מספר מספיק של שקופיות מתאים הושגו. מקום 175 גרם משקולות על coverslip של השקופיות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מילוי דיואר קטן (למשל, בקבוק תרמוס) עם חנקן נוזלי. בעזרת מלקחיים ארוכים, לטבול להחליק לתוך הנוזל N 2 עד מפסיק רותחים, להסיר שקופיות, ומיד להשתמש בקצה של סכין גילוח נקי בפינה אחת כדי להפוך את coverslip. אם השקופית ישמש באופן מיידי, מקום בצנצנת Coplin עם PBS ב 4 ° C. אחרת לגבות את השקופית לתוך צנצנת Coplin מלא אתנול 95%. בדוק את coverslip פעם כפור יש בסובלימציה ממנו לאשר כי הרקמה דבק לשקופית ולא להישאר עם coverslip. חזור עם שאר השקופיות עד כל השקופיות מאוחסנים או PBS (לשימוש בתוך מספר שעות) או אתנול (עבור אחסון לטווח ארוך יותר). </li></ol> נציג תוצאות הצעד הקריטי הראשון עבור השגת איכות גבוהה polytene הכנה סקווש הוא לגדול הזחלים שומן עם גרעין גדול בלוטת הרוק. השנייה היא טכניקה טובה עם ההליך להפיץ, אשר עשוי לקחת חלק באימון. טיפ להצלחה הפצת משופרת היא למצוא את נפח מינימלי של פתרון חומצה lactoacetic במהלך השלב מועך. זו תקדם מספיק להפיץ הכרומוזומים מבלי ליצור כוחות זרימה מוגזמת שיכולה לשטוף ידיים כרומוזום משם. זה גם ראוי לציין כי כל עיכוב בהעברת coverslip הלוך ושוב תפחית הפצת הנשק כרומוזומליות כאשר הם הופכים נוקשים יותר כאשר הם נחשפים הפתרון חומצה Lactoacetic. אם הכל ילך כשורה, צריך להיות רבים הכרומוזומים polytene להפיץ היטב. איור 1 מציג דוגמה של הכנה כזו, שכותרתו כפול עם כסמן לאזורים interband בירוק עם צבע כי כתמים באזורים התאגדו בכחול. אם הפצת מספיק מתקבל, הכרומוזומים ייראה כדורים קטנים, כפי שמוצג באיור 2. מצד שני, אם יותר מדי מתפשט התרחש, chomosomes תהיה רזה מדי המורחבת או במקרים מסוימים מקוטעת לחתיכות קטנות כפי שמוצג באיור 3. <img src="/files/ftp_upload/1748/1748fig1.jpg" alt="איור 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="איור 1"> 1. איור הכנה Polytene סקווש שכותרתו כפול עם נוגדנים קינאז H3S10 ז'יל-1 היסטון (באדום) ו Hoechst (כחול). <img src="/files/ftp_upload/1748/1748fig2.jpg" alt="איור 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="איור 2"> 2. איור Polytene סקווש עם הפצת מספיק. <img src="/files/ftp_upload/1748/1748fig3.jpg" alt="איור 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="איור 3"> איור 3. סקווש Polytene עם יותר מדי מתפשט.

<ol><li>Cai, W., Bao, X., Deng, H., Jin, Y., Girton, J., Johansen, J., Johansen, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((RNA+polymerase+II-mediated+transcription+at+active+loci+does+not+require+histone+H3S10+phosphorylation+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">RNA polymerase II-mediated transcription at active loci does not require histone H3S10 phosphorylation in Drosophila.</a> Development. 135, 2917-2925 (2008).</li>
<li>DiMario, P., Rosby, R., Cui, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+visualization+of+GFP-fusion+proteins+on+polytene+chromosomes%5BTitle%5D)+AND+%22Dros.+Inf.+Serv%22%5BJournal%5D)">Direct visualization of GFP-fusion proteins on polytene chromosomes.</a> Dros. Inf. Serv. 89, 115-118 (2006).</li>
<li>Johansen, K. M., Cai, W., Deng, H., Bao, X., Zhang, W., Girton, J., Johansen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+for+studying+transcription+and+epigenetic+chromatin+modification+in+Drosophila+polytene+chromosome+squash+preparations+using+antibodies%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Methods for studying transcription and epigenetic chromatin modification in Drosophila polytene chromosome squash preparations using antibodies.</a> Methods. 48, 387-397 (2009).</li>
</ol>

הכללתו של חומצות אצטית לקטית פרוטוקולים קיבעון קונבנציונאלי סקווש מקלה הן ברזולוציה interband והזרוע כרומוזומליות מתפשטת אך למרבה הצער epitopes כמה אינם שורדים את הטיפול הזה. דוגמה epitope כזה היא H3S10ph (Cai et al. 2008). מאז הטיפול בחומצה יש גם חיסרון, כי זה מרווה את הקרינה הפנימית של ה-GFP-tagged חלבונים, DiMario et al. (2006) לאחרונה פיתח משחררי פורמלדהיד &quot;נטול חומצה טכניקה סקווש&quot; המאפשרים להדמיה ישירה של חלבון ה-GFP-Fusion על כרומוזומים polytene ל...

הכנת מועכת תסיסנית polytene כרומוזום עבור סימון נוגדן

Preparation of Drosophila Polytene Chromosome Squashes for Antibody Labeling

תסיסנית כבר זמן רב במערכת מודל האהוב לחקר הקשר בין מבנה הכרומטין ויסות הגנים, בשל היתרונות ציטולוגית הניתנים על ידי ענקי הרוק polytene הכרומוזומים של בלוטת הזחלים instar השלישי. ברקמת זה הכרומוזומים לעבור סיבובים רבים של שכפול בהעדר חלוקת התא והוליד כ 1,000 עותקים. ה-DNA נשאר מיושר לאחר כל מחזור replicative וכתוצאה מכך הכרומוזומים מוגדלים מאוד אשר מספקים הזדמנות ייחודית, כדי לקשר בין המורפולוגיה הכרומטין עם לוקליזציה של חלבונים ספציפיים. כתוצאה מכך, חלה על רמה גבוהה של עניין בהגדרת שינויים epigenetic נוכח גנים שונים בשלבים שונים של תהליך השעתוק. כלי חשוב עבור מחקרים כאלה הוא תיוג של כרומוזומים polytene עם נוגדנים האנזים, גורם שעתוק, או שינוי היסטון של עניין. זה פרוטוקול וידאו ממחיש את הטכניקה סקווש המשמשים את המעבדה יוהנסן להכין תסיסנית הכרומוזומים polytene תיוג נוגדן.

זה פרוטוקול וידאו ממחיש את הטכניקה סקווש המשמשים את המעבדה יוהנסן להכין<em&gt; תסיסנית</em&gt; הכרומוזומים polytene תיוג נוגדן.

הכנת מועכת תסיסנית Polytene כרומוזום עבור סימון נוגדן

Drosophila מהווה מזה זמן רב מערכת מודל מועדפת לחקר הקשר בין מבנה הכרומטין לבין בקרה גנטית, וזאת בשל המאפיינים הציטולוגיים...

הליך זה מתחיל בגידול זחלי דרוזופילה בשלב השלישי (fat crawling) בתוך בקבוק זבובים. באמצעות שני זוגות פינצטות, מבודדים את בלוטות הרוק מהזחלים. לאחר מכן, מקבעים את בלוטות הרוק בשני חומרי קיבוע שונים בתוך למסחת שקע בעלת שני בארות.לבסוף, פריסות של הבלוטות נמעכות בתוך תמיסת חומצה לקטו-אצטית בין זכוכית כיסוי לבין slides של מיקרוסקופ. שלום, אני ד"ר קריסטן יוהנסן מהמחלקה לביוכימיה, ביופיזיקה וביולוגיה מולקולרית באוניברסיטת מדינת איווה. שלום, אני סטודנט לתואר שני במעבדה של יוהנסן.היום נדגים לכם פרוצדורה להכנת דגימות מעיכה (squash) של כרומוזומי ענק של דרוזופילה, המתאימות לסמימה בנוגדנים. אנו משתמשים בפרוצדורה זו במעבדה שלנו כדי לחקור מודיפיקציות אפיגנטיות של היסטונים ואת הקשר שלהן למבנה הכרומטין ולביטוי גנים. אז בואו נתחיל.על מנת להשיג כרומוזומי פוליטן אופטימליים עבור תכשירים איכותיים של דריסה (squash), תנאי תרבית שאינם צפופים הם חיוניים. הניחו כ-20 זבובים נקביים מטילים בבקבוק זבובים סטנדרטי של ארבעה אינץ', והעבירו לבקבוק חדש מדי יום. תרבית בטמפרטורה של 21 degrees Celsius מתאימה לרוב המטרות, אך דגירה בטמפרטורה של 18 degrees Celsius תניב כרומוזומים עבים יותר שעשויים להתאים יותר לניסויים מסוימים, למשל כאשר יש צורך להדגים אזורי בינ-פס (interband) בראשולוציה גבוהה.בחרו את הפרטים השמנים ביותר מהדור הראשון של זחלי כוכב בשלב הטיפוס השלישי. בזמן שהם עדיין נודדים, אך רגע לפני ההבניה, הזחלים נראים בבירור על דופן הבקבוק מעל המזון. השתמשו בפינצטה כדי להעביר את הזחלים לצלחת תרבית רקמה.עבור כל סבב של ריסוק, שטפו שתיים עד שלוש זחלים יחד במים לפני העברתם לצלוחית נקייה של PBS לצורך נתיחה. ה-PBS צריך לכסות את הזחלים, אך אין דחיפות לגבי הזמן. מכיוון שהזחלים יכולים לשרוד בתנאים אלה במשך שעות, הניחו בעזרת זוג פינצטות את הצלוחית עם הזחלים ב-PBS על במה של מיקרוסקופ נתיחה.אחזו בקצה וויי הפה תוך כדי החזקת הגוף. במרחק של כשני שלישים כלפי מטה, משכו את וויי הפה באמצעות פינצטה עם זוג שני כדי לחשוף את בלוטות הרוק. הפרידו את בלוטות הרוק מהמוח, מהעין ומהדיסקים הטנליים (tenal discs), והסִירו בדיסקציה את גוף השומן וכל רקמה קשורה אחרת.הוסף 200 µL של מקבע 1 לבאר הראשונה של זכוכית עם שתי בארות (depression slide) ו-200 עד 300 µL של מקבע 2 לבאר השנייה. העבר בכל פעם זוג אחד של בלוטות רוק למקבע 1 בבאר 1, והדגר למשך הזמן הנדרש עבור האפיטופ המטרה, בדרך כלל כ-1 עד 2 דקות, באמצעות פינצטה.העבירו את בלוטות הרוק לקיבוע של שניים בבאר שתיים והדגירו למשך שתי דקות. בעזרת פינצטה, העבירו את הבלוטות לכיסוי זכוכית (cover slip) נקי ומצופה בסיגמא עם 10 עד 30 µL של תמיסת חומצה לקטו-אצטית שהוכנה טרם השימוש. הניחו בעדינות זכוכית מיקרוסקופ מצופה פוליליזין על כיסוי הזכוכית.הרימו בזהירות את העגלה, תוך ניצול ההידבקות של הנוזל לזכוכית, כדי להרים את זכוכית הכיסוי ללא הפעלת לחץ אנכי. כדי לפרוס את הכרומוזומים בתוכנית מיד, אחזו בזהירות בקצה זכוכית הכיסוי בעזרת פינצטה והזיזו אותה בעדינות קדימה ואחורה. שוב, תוך מזעור הלחץ האנכי על הרקמה, ניעור זכוכית הכיסוי חשוב להפרדה נאותה של התאים הבודדים של בלוטת הרוק.הקשה עדינה ובזווית על זכוכית המכסה בעזרת צד המחק של עיפרון עשויה לסייע בפיזור; עכירות של התמיסה היא לרוב אינדיקציה טובה להיפרדות התאים. בחן מיד את הרקמה תחת מיקרוסקופ ניגודיות פאזה (phase contrast) כדי לוודא שהכרומוזומים פרוסים היטב, כפי שניתן לראות בזרועות כרומוזומים מוארכות ומופרדות בבירור. אם הכרומוזומים אינם נראים פרוסים היטב בפעם הראשונה.ניתן לחזור על הנקשות העדינות על מכסית הזכוכית עד להשגת פריסה מספקת. הנח את השקופית כאשר צד מכסית הזכוכית פונה כלפי מטה על ערימה של ניגוני Kim נקיים. הנח ניגון נקי מעל לדגימה.הנח אגודל מעל מיקומו של לבישת הכיסוי ולחץ בחוזקה כלפי מטה. הימנע מתנועה אופקית, שעלולה לגרום לקריעה של הכרומוזומים. בחן שוב את הפסחית תחת המיקרוסקופ כדי לקבוע אם היא מתאימה לניסוי הנוכחי.חזור על הניתוח והכנת פריסת הכרומוזומים כדי להשיג מספר מספיק של סליידים. הנח משקולת של 175 gram על זכוכית הכיסוי של הסליידים באמצעות פינצטה ארוכה. טבול סלייד מוכן בכמות קטנה של חנקן נוזלי והחזק אותו שם עד להפסקת הרתיחה.הוציאו את השקופית והשתמשו מיד בקצה של להב תער נקי מתחת לפינת זכוכית הכיסוי כדי להדף אותה. העבירו את השקופית לצנצנת Coplan מלאה ב-PBS קר לשימוש מיידי, או מלאה ב-95% ethanol לאחסון ממושך. לאחר שהכפור התעלה, בחנו את זכוכית הכיסוי כדי לוודא שהרקמה נשארה על השקופית.השלב הקריטי הראשון להשגת תכשיר squash איכותי של INE הוא גידול זחלים שמנים בעלי גרעינים גדולים בבלוטות הרוק. השלב השני הוא טכניקה טובה של הליך הפריסה, שעשויה לדרוש תרגול. טיפ אחד לשיפור הצלחת הפריסה הוא מציאת הנפח המינימלי של תמיסת חומצה לקטו-אצטית במהלך שלב ה-squashing.פעולה זו תעודד פריסה מספקת של הכרומוזומים מבלי ליצור כוחות זרימה מוגברים שעלולים לשטוף את זרועות הכרומוזומים. ראוי לציין גם שכל עיכוב בהזזת זכוכית המכסה הלוך ושוב יפחית את פריסת זרועות הכרומוזומים, שכן הן הופכות לקשיחות יותר בעת חשיפתן לתמיסת חומצה לקטו-אצטית. אם התהליך יעבור בהצלחה בכל שקופית, אמורים להופיע כרומוזומים פוליטנים רבים הפרוסים היטב.כאן אנו מציגים דוגמה להכנה כזו עם סימון כפול: סמן לאזורים שבין-פסים באדום וצבע הצובע את האזורים הפסים בכחול. אם הפריסה אינה מספקת, הכרומוזומים ייראו ככדורים קטנים כפי שמוצג כאן. מנגד, אם התרחשה פריסת יתר, הכרומוזומים יהיו דקים ומוארכים מדי, או במקרים מסוימים מפוצלים לחלקים קטנים כפי שמוצג כאן.הראינו לכם כעת כיצד להכין דגימות של מעיכת כרומוזומי פוליטן של drosophila. בעת ביצוע הליך זה, חשוב לזכור להתחיל עם זבובים שמנים. זהו כל התהליך.תודה לצפייה ובהצלחה בניסוייכם.

preparation-drosophila-polytene-chromosome-squashes-for-antibody

Research

JoVE Journal

Biology

ביולוגיה

שיטות לבידוד והכנת דגימות דרוזופילה אשכים (לחיות וקבוע) להדמיה על ידי שלב בניגוד ומיקרוסקופ פלואורסצנטי מתוארים במסמך זה.

ניתוח ציטולוגית של תאי זרע: הכנות בשידור חי והקבועות של<em&gt; דרוזופילה</em&gt; אשכים

ציור כרומוזום הוא שיטה שימושית לחקר ארגון גרעין התא והתפתחות הקריוטיפ. כאן, אנו מדגימים גישה לבודד ולהגביר אזורים ספציפיים של עניין מכרומוזומי פוליטן יחיד המשמשים לאחר מכן עבור פלואורסצנט דו מימדי בהכלאה situ (FISH).

ציור כרומוזום דו מימדי ותלות מימדי אצל יתושים מלריה

כאן, אנו מציגים שיטה פשוטה לביצוע הכלאה של DNA פלואורסצנטי באתרו (DNA ISH) כדי לדמיין רצפים הטרוכרומטיים חוזרים ונשנים על כרומוזומים המותקנים בשקופיות. השיטה דורשת ריאגנטים מינימליים והיא רב-תכליתית לשימוש עם בדיקות קצרות או ארוכות, רקמות שונות וזיהוי עם אותות פלואורסצנטיים או שאינם מבוססי פלואורסצנטיות.

שיטה פשוטה DNA הקרינה<em&gt; באתר</em&gt; הכלאה לכרומוזומים &quot;סתמת

פרוטוקול זה מתאר כיצד ליצור קו תאים של דרוזופילה S2 הרגיש למעכבי מולקולות קטנות של קינזין-5. מתואר גם השימוש בתאים אלה בבדיקת תיקון שגיאות מבוססת תאים.

יצירה &quot;אנושי&quot;<em&gt; דרוזופילה</em&gt; S2 שורת תאים רגיש לתרופתי עיכוב של Kinesin-5

אנו מציגים פרוטוקולים לאיסוף, הכנה והדמיה של ביציות דרוזופילה בוגרות. שיטות אלו מאפשרות הדמיה של התנהגות הכרומוזומים והרכבת הציר ותפקודו במהלך מיוזה.

טכניקות הדמיה prometaphase ו Metaphase של המיוזה ואני קבוע<em&gt; תסיסנית</em&gt; ביציות

כפולות משטח גרעיני הם כלי הכרחי עבור לימוד אירועי כרומוזום במהלך meiosis. כאן אנו מדגימים שיטה כדי להכין ולדמיין כרומוזומים מיוטיים במהלך prophase הייתי מתוך הדגים הספרציטים.

הכנת כרומוזום מיוסטי כפולות מדגים בזימטציטים

פרוטוקול זה נועד לדמיין אגרגטים הטרוקרומטין בתאי טוריטנה Drosophila.

כתמים אימונופלואורסצנטיים להדמיה של חלבונים הקשורים הטרוכרומטין בבלוטות הרוק של דרוסופילה

פרוטוקול זה מתאר תיוג פלואורסצנטי מותאם אישית מבוסס נוגדנים והזרקה לעוברים מוקדמים של דרוזופילה כדי לאפשר הדמיה חיה של חלבונים בשפע נמוך או שינויים לאחר תרגום שמאתגרים לזיהוי באמצעות גישות GFP/mCherry-tag מסורתיות.

הדמיה של חלבונים בשפע נמוך ושינויים לאחר תרגום בעוברי דרוזופילה חיים באמצעות הזרקת נוגדנים פלואורסצנטיים

מחקר זה מציג פרוטוקול פשוט לעיבוד רקמות הכולל עריפת ראש, קיבוע, קריוסקציה, צביעה פלואורסצנטית, צביעה חיסונית והדמיה, שניתן להרחיב להדמיה קונפוקלית ורב-פוטונית. השיטה שומרת על יעילות דומה לדיסקציות מורכבות, ועוקפת את הצורך במיומנויות מוטוריות מתקדמות. ניתוח תמונה כמותי מספק פוטנציאל חקירה נרחב.

הקפאה ישירה של ראשי דרוזופילה לצביעה פלואורסצנטית משופרת של המוח וצביעה חיסונית

במחקר זה, אנו קובעים פרוטוקול מפורט לתיוג קרבה מבוסס TurboID (PL) בשחלות D. melanogaster , המכסה שלבים מתוספת ביוטין ודיסקציה של שחלות ועד לאימות ביטוי טרנסגנים והעשרה של פפטידים ביוטיניליים לספקטרומטריית מסה.

ב Vivo יישום של תיוג קירבה מבוסס TurboID ב-Drosophila melanogaster

מאמר זה מתאר פרוטוקול יעיל לפירוק דיסק דמיוני וצביעת נוגדנים, שהוא חסכוני עם מגיבים ומקל על טיפול בדיסקים דמיוניים במספרים קטנים.

כריתה בקנה מידה קטן וצביעת נוגדנים של דיסקים דמיוניים באנטנות העיניים והכנף מ-Drosophila melanogaster

למדו את שיטת הסקווש להכנת כרומוזומים פוליטניים מבלוטות הרוק של זבובי Drosophila melanogaster לסימון נוגדן. פרוטוקול זה מאפשר חקר מבנה כרומטין וביטוי גנים במיקרוסקופיה.

הכנת מועכת תסיסנית Polytene כרומוזום עבור סימון נוגדן

גלה סרטונים נוספים