$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
קחו תרבית לקטוקוקוס לקטיס המבטאת את הפפטידאז הקשור לממברנה NisP.
מערבבים את התרבות עם מדיום עשיר בחומרים מזינים.
מוסיפים אגר מותך, מערבבים ויוצקים לצלחת לפיזור אחיד של L. lactis באגר.
לאחר שהתמצק, אגרוף בארות לתוך האגר.
לאחר מכן, קח E. coli רקומביננטי המייצר גרסאות פרקורסור מסוג בר או שונה של הפפטיד האנטי-מיקרוביאלי ניסין.
צנטריפוגה כדי לגלול את החיידקים, להשליך את הסופרנטנטים ולהשעות מחדש את הכדורים במאגר.
סוניקציה כדי לליז את החיידקים, הצנטריפוגה ולהעביר את הסופרנטנטים לצינורות טריים.
נרמל את הליזטים לצפיפות אופטית שווה באמצעות חוצץ כדי להבטיח רמות פפטידים עקביות.
פיפט כל דגימה לבארות אגר בודדות ודגירה על הדגימות.
במהלך הדגירה, פפטידי מבשר הניסין מתפזרים לתוך האגר ונבקעים על ידי NisP, ויוצרים ניסין בוגר.
ניסין בוגר מעכב את צמיחת הלקטובצילוס לקטיס , ויוצר הילות ברורות סביב הבאר.
השווה את גדלי ההילה כדי להעריך את הפעילות האנטי-מיקרוביאלית של וריאנטים של ניסין.
הוסף מיליליטר אחד של תרבית קדם לקטוקוקוס לקטיס ל-25 מיליליטר של מרק 2X M17 המכיל 10 מיקרוגרם למיליליטר כלורמפניקול ושני אחוז גלוקוז. לאחר מכן, מוסיפים 25 מיליליטר אגר מותך פושר, מערבבים ויוצקים את התמיסה לצלחת פטרי גדולה. תוך שמירה על תנאים סטריליים, יבש את הצלחת למשך 10 עד 15 דקות.
לאחר מכן, יש לעקר את הקצוות של פיפטת פסטר מזכוכית על ידי להבה. לאחר שהפיפטה התקררה, השתמש בקצה הרחב שלה כדי ליצור חורים באגר המוצק. סמן את החלק התחתון של צלחת הפטרי עבור כל דגימה ליד מיקום החור המתאים.
לצורך בדיקת הפעילות, קח את דגימות המיליליטר של תרביות הייצור של E.coli וצנטריפוגה אותן למשך שלוש דקות ב-7,000 פעמים גרם. שאפו את המדיום הנותר והשעו מחדש את כדור התא ב-500 מיקרוליטר של מאגר נתרן פוספט על ידי פיפטינג.
לאחר מכן, סוניקציה של הדגימה על קרח על ידי טבילת קצה בדיקת הסוניקטור לתוך תרחיף התא. התחל את הסוניקציה. לאחר מכן, צנטריפוגה של התא ליזאט למשך 10 דקות ב-13,000 פעמים גרם כדי לגלול פסולת תאים.
העבירו את הסופרנטנט לצינור תגובה חדש על קרח. לדלל ולנרמל את הסופרנטנטים למיליליטר אחד של OD600 השווה ל-0.6, ביחס לצפיפות התאים שנקטפו, עם מאגר נתרן פוספט ומערבבים. כדי לבדוק את הפעילות המיקרוביאלית, הוסף 40 מיקרוליטר מהדגימה המנורמלת לחור המיועד של אגר המחוון.
המתן עד שכל הדגימה תתפזר לתוך האגר. דגרו את הצלחת למשך הלילה בחום של 30 מעלות צלזיוס. למחרת, צלם את צלחת האגר באמצעות סורק מיטה שטוחה או מצלמה דיגיטלית.
ניתן למדוד את גודל הילת עיכוב הגדילה ביד או באמצעות תוכנה.