Name: איפוק ידני ומסלולי מנהל מתחם נפוצים בעכברים וחולדות (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-09-26T12:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 10 s
Description: למד טכניקות איפוק ידני וניהול מתחם בעכברים וחולדות למחקר ביולוגי. שיטות אלו מסייעות לחוקרים לנהל ניסויים בבעלי חיים בבטיחות ובהומניות.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

המחקר הנוכחי נתמך על ידי צ&#39;ארלס ריבר.

<ol><li>Turner, P. V., Brabb, T., Pekow, C., Vasbinder, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Administration+of+substances+to+laboratory+animals%3A+routes+of+administration+and+factors+to+consider%5BTitle%5D)+AND+%22JAALAS%22%5BJournal%5D)">Administration of substances to laboratory animals: routes of administration and factors to consider.</a> JAALAS. 50, 600-613 (2011).</li>
<li>Diehl, K. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+good+practice+guide+to+the+administration+of+substances+and+removal+of+blood%2C+including+routes+and+volumes%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Appl.+Toxicol%22%5BJournal%5D)">A good practice guide to the administration of substances and removal of blood, including routes and volumes.</a> J. Appl. Toxicol. 21, 15-23 (2001).</li>
<li>Hurst, J. L., West, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Taming+anxiety+in+laboratory+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">Taming anxiety in laboratory mice.</a> Nat. Methods. 7, 825-826 (2010).</li>
<li>Maurer, B. M., Döring, D., Scheipl, F., Küchenhoff, H., Erhard, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+a+gentling+programme+on+the+behaviour+of+laboratory+rats+towards+humans%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Anim.+Behav.+Sci%22%5BJournal%5D)">Effects of a gentling programme on the behaviour of laboratory rats towards humans.</a> Appl. Anim. Behav. Sci. 111, 329-341 (2008).</li>
<li>Cloutier, S., Newberry, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+a+conditioning+technique+to+reduce+stress+associated+with+repeated+intra-peritoneal+injections+in+laboratory+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Anim.+Behav.+Sci%22%5BJournal%5D)">Use of a conditioning technique to reduce stress associated with repeated intra-peritoneal injections in laboratory rats.</a> Appl. Anim. Behav. Sci. 112, 158-173 (2008).</li>
<li>Romanovsky, A. A., Kulchitsky, V. A., Simons, C. T., Sugimoto, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methodology+of+fever+research%3A+why+are+polyphasic+fevers+often+thought+to+be+biphasic%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Methodology of fever research: why are polyphasic fevers often thought to be biphasic.</a> Am. J. Physiol. 275, 332-338 (1998).</li>
<li>Turner, P. V., Pekow, C., Vasbinder, M. A., Brabb, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Administration+of+substances+to+laboratory+animals%3A+equipment+considerations%2C+vehicle+selection%2C+and+solute+preparation%5BTitle%5D)+AND+%22JAALAS%22%5BJournal%5D)">Administration of substances to laboratory animals: equipment considerations, vehicle selection, and solute preparation.</a> JAALAS. 50, 614-627 (2011).</li>
<li>Lukas, G., Brindle, S. D., Greengard, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+route+of+absorption+of+intraperitoneally+administered+compounds%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Pharmacol.+Exp.+Ther%22%5BJournal%5D)">The route of absorption of intraperitoneally administered compounds.</a> J. Pharmacol. Exp. Ther. 178, 562-564 (1971).</li>
<li>AALAS. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22Laboratory+Mouse+Handbook%22">Laboratory Mouse Handbook</a>. , AALAS. (2009).</li>
<li>AALAS. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22LAT+Training+Manual%22">LAT Training Manual</a>. , AALAS. (2009).</li>
<li>AALAS. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22LATg+Training+Manual%22">LATg Training Manual</a>. , AALAS. (2009).</li>
<li>Barnett, S. W. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBarnett%2C+SW+%22Manual+of+Animal+Technology%22">Manual of Animal Technology</a>. , Wiley-Blackwell. 440(2007).</li>
<li>Baumans, V., Pekow, C. A. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBaumans%2C+V+%22Handbook+of+Laboratory+Animal+Science%22">Handbook of Laboratory Animal Science</a>. Hau, J., Schapiro, S. J. 1, CRC Press. 401-446 (2010).</li>
<li>Bogdanske, J. J., Hubbard-Van Stelle, S., Riley, M. R., Schiffman, B. M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aBogdanske%2C+JJ+%22Laboratory+Mouse+Procedural+Techniques%22">Laboratory Mouse Procedural Techniques</a>. , CRC Press. (2011).</li>
<li>Danneman, P., Suckow, M. A., Brayton, C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aDanneman%2C+P+%22The+Laboratory+Mouse%22">The Laboratory Mouse</a>. , CRC Press. (2000).</li>
<li>Sharp, P. E., La Regina, M. C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSharp%2C+PE+%22The+Laboratory+Rat%22">The Laboratory Rat</a>. , CRC Press. (1998).</li>
</ol>

הכותבים הם עובדי צ&#39;ארלס ריבר.

פרוטוקול זה יש לראות כמבוא לטיפול בבעלי חיים וממשל חומר שנועד להשלים את הידות על אימונים ספקו במתקן של החוקר. אמצעי הריסון שישמש ואת המסלולים של ממשל חומר יש לשקול בעיצוב הניסיון וכאשר המחקר או פרוטוקול ועדת אתיקת הפרוטוקול כתוב. הדרכה בנהלים הקשורים לבעלי חיים היא חיונית להצלחתו של מחקר. כדי לבצע את רוב הניסויים, בעלי חיים חייבים להיות מטופלים על ידי צוות מחקר, וטיפול בבעלי החיים הטוב יותר, פחות לחוץ בעלי החיים 3. הרגיל את בעלי חיים למגע אנושי עדין יכול להפחית את הלחץ ולעשות חי נבדקים צייתנים יותר 4,5. מתח טיפול הוכח להשפיע על כמה סוגים של 6 מחקר וזה אפשרי זה יכול להשפיע גם על אחרים. איפוק של מכרסמים צריך להתבצע בזהירות, אבל טיפול חברה (לא סופיאחיזה עשויה לגרום לפציעה למכרסם ומטפל) וצריכה להיות לכל תקופה הקצרה ביותר המעשית. שיטות ריסון בדרך כלל נבחרו על סמך גודלו של בעל החיים או הגישה בקשה. לדוגמה, טיפול בחולדות בוגרות בעורפו, אם כי ניתן, לעתים קרובות נתקל בהתנגדות חזקה של העכברוש, במיוחד אם המטפל הוא חסר ניסיון. מחזיק עכבר או חולדה ביד יכולה להפוך את הגישה לורידי הזנב קשה ומכשיר איפוק לעתים קרובות בחר לשמור את החיה בשקט ככל האפשר. כאשר חוקרים להתמודד עם בעלי חיים, לעתים קרובות הם מבקשים לנהל את מתחם או ביולוגי למחקר נוסף. המסלול של מתן חומרים יכול להשפיע על קליטה, זמינותו ביולוגית, והתאמת לניסוי מסוים. היכרות עם מסלולים שונים צריכה לספק לחוקרים עם היכולת לניהול החומר שלהם בצורה הטובה ביותר האפשרית עבור המחקר שלהם. לדוגמה, במסלול שמקדם ספיגה מהירה של חומר, כמו ורידים או intraperitoneal, אין להשתמש אם החוקר רוצה לנהל את החומר באופן איטי יותר טווח. הביקורות האחרונות של חלק מהטכניקות האלה ושיקולים לנפח, ציוד, ומומס ניתן למצוא בשני מסמכים של טרנר ואח&#39;. 1,7 בכל פעם שהם חומרים שניתן למכרסמים במעבדה, יש להתחשב בגודל הנכון של ציוד ונפח של חומר (המפורטים בטבלה 1). כיאות ציוד בגודל או בכמויות גדולות עלול לגרום לחוסר נוחות, פציעה או מוות של בעל החיים. באופן כללי, חומרים המנוהלים parenterally הם עקרים, אלא אם מטרות המחקר היינו להפוך את זה בלתי אפשרי (כלומר, מחקרי חיידקים). תרכובות ביולוגיות וצריכות להיות במומס או רכב שתהיה ההשפעה לפחות על החיה. PH פיסיולוגי (7.3 -7.4) הוא מקובל היטב, במיוחד עבור תת עורית, תוך שרירית, וintrapeמסלולי ritoneal. רמות ה-pH ללא פיסיולוגיות בחומרים המנוהלים על ידי נתיבים אלו עלולות לגרום לכאב או נימק וניזק לרקמות. טווחים רחבים של pH נסבלים עם מסלולי intragastric ווריד 7. במכרסמים קטנים, שיקול חשוב נוסף הוא האפשרות של מצמרר אם כמויות גדולות של נוזלים בטמפרטורת חדר מקבלות. אם נוזלים מתבצעים בהזרקה לוריד או intraperitoneally, במיוחד בתמיכה של בעלי חיים חולים, הם צריכים להיות חממו לטמפרטורת גוף (37 מעלות צלזיוס). את המסלולים של ממשל שנדונו בפרוטוקול זה הם אלה ששמשו בדרך כלל בתכניות מחקר רבות, הם פשוטים להורים, ובדרך כלל לא דורש הרדמה. מגוון כמעט אינסופי של מסלולים של ממשל הוא אפשרי, עם זאת, כולל תוך גולגולתי, intrathecal, אפידורל, intratracheal, intraosseous, וintraarticular אבל לתת שם כמה. הדרכה במסלולים מיוחדים אלה של ממשל צריכה להיות בקשה מאנשי WHo יש ניסיון רב עם המסלול ותוצאות טובות. במכרסמים, המסלול אפי משמש בדרך כלל כדי ללמוד חומרים שהוכנסו לריאות דרך &quot;טבעית&quot; יותר; שיטה מהחדרת intratracheal. עכברים וחולדות הם נושמים אף מחייבים את, כך שפיתו אותם לשאוף כמויות קטנות מאוד של נוזל זה לא קשה, גם בבעלי חיים מודעים. מאז רירית האף היא מצוידת היטב בכלי דם, מנהל אפי של כמה חומרים יכול להיות דומה לעירוי לוריד. מסלול זה אינו מומלץ בבעלי חיים עם נזלת, עם זאת, כפי שעלול לפגוע בספיגה. ניסיונות לנהל כמויות גדולות על ידי התוואים אפי עלולים לגרום לקוצר נשימה או בטביעתו של בעל החיים. זריקות תוך שרירית לספק ספיגה מהירה של חומרים. זריקות לשריר יכולות להיות מאתגרות בחולדות ועכברים, בשל גודלם הקטן והשרירים בהתאמה קטנים. הם מבוצעים ברגל האחוריתs. בשל הפוטנציאל לניזק של עצב הירך, femoris הארבעה הראשיים הוא השריר של בחירה. למרות שגם תת עורית ומסלולי intradermal כרוך בעור, יש הבדלים בין הזמינות הביולוגית של חומרים הממוקמים בעור לעומת subcutis. תת עורית ממשל נחשב לעתים קרובות מסלול &quot;תצהיר&quot;, עם ספיגה איטית יותר ממסלולים אחרים, כגון תוך ורידית או intraperitoneal. ממשל intradermal משמש לנפחים קטנים מאוד של חומרים, בדרך כלל חומרי immunostimulatory כגון תערובות אדג&#39;ובנט-אנטיגן. בשני המקרים, את החומרים המנוהלים צריכים להיות של pH הפיזיולוגי ולא מעצבן. לא צריך להתבצע intradermal או תת עורית זריקות בעורף, שכן מדוברים באתר בשימוש נפוץ לריסון המכרסם. עירוי לוריד וintraperitoneal נחשבים לעתים קרובות מקביל במכרסמים. נתיבים תוך ורידים של מינון לספק יותר rספיגת apid של תרכובות, עם זאת, בעוד שממשל intraperitoneal צריך להיחשב שווה בערך לנטילה דרך פה 8. יש להקפיד עם intraperitoneally תרכובות מנוהל כפי שהם עלולים לגרום לכאב אם נאגרו לא תקין. המסלול המשותף של ממשל בולוס תוך ורידים במכרסמים הוא דרך ורידי הזנב. אם עירוי לוריד כרוני של חומר הוא רצוי, השתלה של ורידים או עורקי cannulae צריכה להיחשב. חומרי הזרקה לוריד צריכים להיות מועברים נקי מחיידקים, וצריך להיות מוצגים כדי להיות בטוח כדי לנהל דרך וריד. לדוגמה, חומרים שעלולות לגרום המוליזה, פקק או דלקת כלי דם אינם מתאימים לעירוי לוריד. מסלול gavage intragastric או בעל פה משמש לעתים קרובות לחקות מסלול מינון נפוץ בבני אדם. זה גם מאפשר מינון מדויק של חומרים בהשוואה לנטילה דרך פה באמצעות מזון או מים. זמינות ביולוגית של תרכובותמנוהל באמצעות gavage ישתנה בהתאם למדינה הנמאסת / צום של בעלי החיים, כמו גם מומס או הרכב של המתחם או הביולוגי. מחטי Gavage או האכלה צריכות להיות בגודל המתאים לבעלי החיים בשימוש, ויש לנקות בין חיות, אם מחטים חד פעמיות gavage אינן מעשיות. פציעות שנגרמו על ידי gavage אינן נדירות וכוללות תצהיר של החומר לתוך הריאות או הקרע בקיבה או הוושט. אימון צריך להיות מפוקח על ידי צד מנוסה והתחייב על בעלי חיים מורדמים ראשונה, ואז חיות מורדמות (שיהיה מורדם) לפני gavage בעודם ערים הוא ניסה. ניסיונות gavage ראשונים על חיות ערות צריכים לערב חיות בגודל ממוצע ונפחים קטנים של חומר, כגון מי מלח, שלא יגרמו לפגיעה אם ההליך משתבש. בעלי חיים יש להעריך באופן הדוק לסימני מצוקה, כגון מתנשף, פונים, דימום כחול, או ריור העודף, לאחר gavage ולהרדים במקרה צורך. אם euthanasia נדרש, בעלי החיים צריכים שלאחר מוות כדי לקבוע מדוע הליך gavage נכשל.

<table border="1" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td> שם המגיב </td><td> חברה </td><td> מספר קטלוגים </td><td> תגובות </td></tr><tr><td> מחטים </td><td> שונה </td><td> שונה </td><td> מחטים נמכרות על ידי שני מד ואורך. בדקו גם לפני ביצוע ההזמנה. </td></tr><tr><td> מזרקים </td><td> שונה </td><td> שונה </td><td> תמיד לבחור גודל מתאים להיקף להינתן. </td></tr><tr><td> DecapiCones </td><td> בריינטרי מדעי </td><td> DC-200, מת&quot;ק-120, MDC-200 </td><td> זמין בעכבר ובגדלי חולדה. </td></tr><tr><td> עוצר מכרסם </td><td> הרווארד Apparatus, Braintree Scientific, Plas-Labs, אחרים </td><td></td><td> זמין בפרספקס השקוף, פלסטיק מתכוונן, וגודל לעכברים וחולדות. </td></tr><tr><td> צינור 50 מ&quot;ל חרוטים </td><td> שונה </td><td> &amp; Nbsp; </td><td></td></tr><tr><td> מחטי האכלה </td><td> VWR, פופר ובניו </td><td> שונה </td><td> Fit מד המחט ואורך לבעלי החיים כמתוארים לעיל. שני מחטי האכלה חד פעמיות לשימוש חוזר זמינות. </td></tr></tbody></table>

איפוק ידני ומסלולי מנהל מתחם נפוצים בעכברים וחולדות

Manual Restraint and Common Compound Administration Routes in Mice and Rats

היכולת הבטוחה ויעילה לריסון עכברים וחולדות היא חלק חשוב של מחקר. עבודה בביטחון ובאנושיות עם עכברים וחולדות דורשת מיומנות בסיסית בשיטות טיפול ובאיפוק. מאמר זה יציג את העקרונות הבסיסיים הנדרשים לטיפול בבעלי חיים בבטחה. בשתי ידות, ואיפוק ביד אחת, עם חפצי ריסון תוכננו במיוחד יומחש. לעתים קרובות, חלק אחר של המחקר או בדיקה של השימוש בבעלי חיים הוא הממשל היעיל של תרכובות לעכברים וחולדות. למרות שיש מספר רב של מסלולים אפשריים ניהול (מוגבל רק על ידי הגודל והאיברים של בעלי החיים), רובם לא השתמשו באופן קבוע במחקר. וידאו זה מדגים כמה מהמסלולים הנפוצים יותר, לרבות תוך ורידים, תוך שרירית, תת עורית, וgavage האוראלי. המטרה של מאמר זה היא לחשוף את צופה מכירה את הטכניקות האלה לאיפוק בסיסי ונתיבי ממשל בסמים. וידאו זהלא מחליף ידות על הכשרה נדרשות במתקן שלך, אך נועד כדי להגדיל ולהשלים את ההכשרה הזאת.

עבודה בצורה בטוחה ואנושית עם מכרסמי מחקר דורשת מיומנות ליבה בשיטות טיפול ובאיפוק. מאמר זה יציג את העקרונות הבסיסיים הנדרשים לטיפול בצורה בטוחה ויעילים לנהל תרכובות לעכברים וחולדות.

היכולת לרסן עכברים וחולדות באופן בטוח ויעיל היא חלק חשוב מביצוע מחקר. עבודה בביטחון ובאופן הומני עם עכברים ו...

המטרה הכללית של הסרטון הבא היא להכיר לצופה טכניקות שונות המשמשות לריסון ידני ולהגשת תרכובות בעכברים ובחולדות. ניתן לרסן עכברים וחולדות באמצעות מספר טכניקות של יד אחת או שתי ידיים, או באמצעות שימוש במרסנים מפלסטיק, וכן להשתמש בטכניקות להגשת תרכובות, כגון הזרקה תוך-פריטונית, תת-עורית, תוך-כלית (אינטרה-וסקולרית) ותוך-עורית. בסרטון זה מודגמות שיטות הזרקה, כמו כן הגשה דרך פה (oral gavage) והגשה תוך-אפית.למידה כיצד לטפל בבעלי חיים בביטחון, בעדינות ובבטיחות היא חלק חשוב ממחקר in vivo. יש לטפל בבעלי חיים תמיד באופן שהוא בטוח הן עבור בעל החיים והן עבור החוקר. בדרך כלל, אנשים שאינם מנוסים בשיטות אלו עשויים להתקשות, שכן נדרש זמן עד להגעה לתחושת נוחות בעבודה עם מכרסמים.מכרסמים עשויים גם להרתיע או להפחיד אנשים שאינם מנוסים בעבודה איתם. הדגמה חזותית של מתן המינון ושל טכניקות ריסון היא מפתח הן למתן מוצלח של התרכובת והן למניעת מצוקה או פגיעה בבעל החיים ובמרסן.השלב הראשון בשתי השיטות הוא הרמה עדינה של העכבר בבסיס הזנב אל סורגי מכסה הכלוב, או למשטח מחוספס דומה. עבור הטכניקה של יד אחת, הכניסו את בסיס הזנב בין האצבע השלישית לרביעית תוך써 משיכה עדינה של הזנב לאחור. פעולה זו תגרום לעכבר לאחוז במשטח ולמשוך את עצמו קדימה.לאחר מכן, אחזו בחוזקה. תפסו את העכבר בעורף בעזרת אותה יד המחזיקה את הזנב. אחזו עם האצבע והבוהן ליד בסיס הראש, והרחיבו את האחיזה במורד הגב על ידי שילוב האמה והקמיצה.יש להפעיל לחץ מדויק על העור מסביב לצוואר כדי למנוע מהעכבר להסתובב או להתפתל, אך לא במידה שתמנע מהבעל חיים לנשום. הטכניקה הדו-ידנית דומה, פרט לכך שבעוד יד אחת מושכת בעדינות את הזנב לאחור, היד השנייה תופסת במהירות ובחוזקה את העכבר בעורף, כאשר הזנב ביד אחת והעורף ביד השנייה. הרם את העכבר והצמידו את בסיס הזנב בין כף היד לבין האצבע השלישית או הרביעית של היד המחזיקה בעורף.כמו קודם, וודאו שהאחיזה מאובטחת, אך עדיין מאפשרת לבעל החיים לנשום. אחיזת עורף (scruff) בחולדה מבוצעת בדרך כלל בשתי ידיים. ראשית, הוציאו את החולדה מהכלוב והניחו אותה על משטח מחספר.בשלב הבא, אחזו את החולדה בזנבה ביד הלא-דומיננטית ומשכו. בעודכם מחזיקים את הזנב בחוזקה ביד אחת ומושכים בעדינות לאחור, התקרבו לעורף החולדה מהחלק האחורי בעזרת היד השנייה. הפילו לחץ עדין על גבה של החולדה תוך כדי תנועה כלפי מעלה לכיוון השכמות.ולבסוף, אחיזה של העורף בין האצבעות לכף היד. חולקים עשויים להשמיע קולות כאשר הם מורחקים בצורה זו. בעת שימוש באחיזה מעל הכתף, אחזו בחולק בזנארו בעזרת היד הדומיננטית ומשכו אותו בעדינות לאחור.בשלב הבא, הניחו את היד הלא-דומיננטית על גבו של החולדה תוך התקרבות מאחור. אחזו בחולדה מסביב לבית החזה באמצעות האצבע הטבעתית, הזרת והאגודל. ראש החולדה צריך להימצא בין האצבע המורה לאצבע האמה.שיטת ריסון נוספת היא אחיזת מתחת לכתפיים. אחוזו בזנב באמצעות היד הדומיננטית כפי שנראה קודם לכן, והניחו את היד הלא-דומיננטית על גבו של החולדה תוך התקרבות מאחור. לאחר מכן, אחוזו את החולדה סביב בית החזה, ממש מתחת לשכמות.יש לדחוף בעדינות את זרועותיו הקדמיות של החולדה כלפי מעלה באמצעות האגודל והאצבע המורה. על הזרועות הקדמיות להישב aquellas מתחת לסנטרה של החולדה, כדי למנוע ממנה לנשוך. ניתן להחזיק את החולדה באופן זה ביד אחת, בתנאי שגופה מיוצב כנגד המטפל.ניתן להשתמש גם בחלק פלסטיק דק וגמיש בצורת קונוס, הנקרא decapicone, לצורך ריסון. דחפו את בעל החיים קדימה עד שאפו האף בולט מהחור שבקצה ה-decapicone, ואז החזיקו את השק סגור סביב הזנב או השתמשו בגומייה או בחוט תיל לסגירה כדי לקבע את בעל החיים במקומו. לאחר הריסון, ניתן להעביר זריקות דרך החומר הפלסטי; מכל פלסטיק קשיח הוא שימושי כאשר נדרשת גישה לזנב.הכניסו את החולדה כפי שהנחה יצרן המכשיר. בסוג זה של מרסן, מושכים בעדינות את החולדה לאחור אל תוך המרסן באמצעות הזנב. הניחו את הסגירה בחלקו הקדמי של המכשיר וכוונו אותה כדי להגביל את תנועות בעל החיים.אם נראה כי בעלי החיים נסערים, ניתן להשתמש בריסון באמצעות מגבת; כאשר מניחים אותה על בעל החיים, החשיכה והריסון העדין שמספקת המגבת יכולים להרגיע חולדה תוקפנית. הניחו את המגבת בעדינות על החולדה ולאחר מכן אחזו בחולדה בזהירות מסביב לגופה. עטפו את החולדה במגבת, תוך הקפדה לא לחסום את אפה של החולדה.הזיזו את המגבת כך שחלק הגוף המיועד להזרקה יהיה חשוף. לפני ביצוע כל אחת מטכניקות ההזרקה הבאות, מומלץ להתאמן על תפעול המזרק. באופן אידיאלי, יד אחת תתפעל את המזרק בעוד השנייה תקיים את בעל החיים; מומלץ להחדיר את המחטים לגוף בעל החיים כאשר הפיה פונה כלפי מעלה, במיוחד בהזרקות תוך-ורידיות.מחטים בעלות קוטר דק נישמות בקלות בעת החדרתן לפקקי בקבוקונים. השתמשו במחט בעלת קוטר רחב יותר לשאיבת החומרים, ולאחר מכן החליפו אותה במחט בעלת קוטר קטן יותר לצורך ההזרקה. מתן תרופות דרך האף משמש עבור סוגים מסוימים של גורמים זיהומיים במחקרי אלרגיה ואסמה, ובחלק מהמחקרים העוסקים בריאות.מתן תרופות דרך האף אינו דורש הרדמה וניתוח, בניגוד להחדרה תוך-קשקשית (intra tracheal installation). לצורך מתן תרופות דרך האף, יש לרסן את בעל החיים כפי שתואר קודם לכן; בעזרת מזרק או פיפטה, הניחו כמות קטנה של החומר המיועד לשאיפה בנחיר של בעל החיים. המתינו עד שהחומר ייספג בתוך הנחירים וחזרו על הפעולה במידת הצורך.תרכובות מוחדרות תוך-שרירית אם הן דורשות ספיגה מהירה וניתנות להחדרה בנפחים קטנים מאוד. ריסון להזרקות תוך-שריריות עשוי לדרוש שני אנשים, כיוון שרגל אחורית אחת חייבת להיות חופשית ומיוצבת לצורך ההזרקה. הכניסו את המחט בניצב לעור מעל שריר ה-quadriceps או מעל מסת השריר הצידית של הירך של בעל החיים.היו זהירים שלא להזריק למסת השריר האחורית, שכן קיימת אפשרות לפגוע בעצב הסקיאטי (העצב המדשן). הזרקה תוך-בטנית נבחרת כאשר יש להחדיר נפח גדול של תרכובת, והיא מקובלת עבור קצב הספיגה, כדי לדמות את זו של מתן דרך הפה.לביצוע הזרקה תוך-peritoneale, יש לקבע את בעל החיים ולהפנות את קצה אפו כלפי הרצפה. כדי לחשוף את הבטן, אתר את קו האמצע של בעל החיים וחלק את הבטן באופן מנטלי לרבעים.בחרו אתר הזרקה ברביעים התחתונים, ובמיוחד ברביע הימני התחתון של בעל החיים; השתמשו במזרק ובמחט בגודל מתאים כדי להזריק את החומר לבעל החיים. מתן תת-עורי של חומר משמש כאשר רצויה ספיגה איטית.לעכברים וחולדות יש כמויות גדולות של עור רפוי, ולכן ניתן להזריק תתי-עורית נפחים גדולים יחסית בהשוואה לבני אדם. להזרקות תת-עוריות, רסנו את בעל החיים בריסון רפוי כפי שהודגם בעבר. תפסו את העור ומשכו אותו בעדינות כלפי מעלה.ליצירת "אוהל", השתמשו במזרק ובמחט בגודל מתאים, הכניסו את המחט בזווית של 30 עד 45 מעלות אל תוך העור המורם והזריקו את החומר. נפיחות קטנה מתחת לעור מעידה על הזרקה מוצלחת. אם יש צורך בטיפול שגרתי בבעלי החיים לאחר הזרקה תת-עורית, אין להשתמש באחיזת עור העורף (scruff).במקום זאת, השתמשו בעור באזור הגב התחתון (dorsal rump). אם בעלי החיים אמורים לקבל מספר הזרקות תת-עוריות, יש להחליף את אתרי ההזרקה. ריסון בעלי חיים במהלך מתן תרופה תוך-עורי עשוי להיות קשה ועלול לדרוש שימוש בסדציה כימית. אם נעשה שימוש בחומר אלחוש, ודאו כי הוא אינו מפריע למטרות המחקר.בעת ביצוע הזרקה תוך-עורית, ראשית, הסירו שיער מאתר ההזרקה כך שהעור יהיה גלוי בבירור בנקודת ההזרקה. הכניסו מחט בגודל מתאים אל העור בזווית של 15 עד 30 מעלות. אין להחדיר את המחט עמוק מדי.אם ההזרקה בוצעה נכון, היא אמורה להיתקל בהתנגדות. במידה וההזרקה הצליחה, תופיע שלפוחית קטנה, שצבעה בהיר יותר מהעור שסביבה. הפעל לחץ עדין כדי למנוע זרימה חוזרת של החומר.מתן תוך-כלי (Intravascular administration) משמש עבור מגוון רחב של תרכובות והוא המסלול המומלץ כאשר ניתן לנסח את התרכובת באופן מתאים ומעוניינים בהשפעה מהירה מאוד. לצורך הזרקה תוך-כלית לווריד הזנב הלטראלי, יש לקבע את בעל החיים במכסיח ראש (decap cone) או במקבע פלסטיק למכרסמים. כפי שהודגם בעבר, החזקו את זנב בעל החיים בקצהו באמצעות היד הלא-דומיננטית כדי ליישר ולסובב אותו. סובבו ברבע סיבוב כדי למקם את ורידי הזנב בצד הגבי (dorsally).זהו את אחד משני ורידי הזנב הצדיים לצורך ההזרקה, תוך הימנעות מעורק הזנב הבטני. התקרב לחלק המרוחק של הזנב עם המחט בזווית של 15 עד 20 מעלות והזרק את החומר. הזרקה מוצלחת תתבטא בכך שהחומר ייכנס לווריד ללא התנגדות, ובשינוי צבע של וריד הזנב להבהרה למשך משך ההזרקה.מיקום ההזרקה באופן דיסטלי יותר משמר חלק לא פגוע של הווריד שניתן להשתמש בו אם הניסיון הראשון לא צלח. מתן תוך-קיבתי או הזנה פומית (oral gavage) מבוצעים רק בבעלי חיים ערים המוחזקים בריסון, כיוון שהרדמה או סדציה מגבירות את הסיכון לשאיפה. תרכובות שנבדקות בטיחותן למתן פומי בבני אדם ניתנות לעיתים קרובות באופן זה. התחילו בבחירת מחט להזנה פומית בגודל מתאים.האורך נקבע על ידי החזקת בעל החיים המרותק במצב זקוף ומדידה מפינת הפה. קצה הכדור של מחט ההאכלה צריך להגיע לצלע האחרונה של בעל החיים; יש לרתק את בעל החיים כך שראשו וגופו יהיו בקו אנכי ישר.פעולה זו מיישרת את הוושט, ובכך מאפשרת מעבר קל יותר של מחט ההזנה. הכניסו את קצה הכדור של המחט לתוך פיו של בעל החיים, מעל הלשון. ברגע שהמחט במקומה, העלו את המחט והמזרק תוך לחיצה עדינה נגד החך, כך שאפו של בעל החיים פונה כלפי מעלה.ייתכן שיהיה צורך להסיט מעט את כיוון המחט בעת מעברה בחלק האחורי של הגרון. כל מתח המורגש על המחט מעיד על הצורך להתאים את המיקום; יש להמשיך להחדיר את המחט עד להגעה למרחק שנקבע מראש. המחט אמורה לעבור בקלות והבעל חיים לא אמור להחניק או להנשף; לאחר מכן יש להחדיר את החומר.אם מורגשת התנגדות או אם בעל החיים מנשף, נחנק או הופך לכחול, יש להפסיק מיד ולהוציא את המחט. לאחר השליטה בטכניקות אלו, תוכלו להעניק מנות בבטחה הן לחולדות והן לעכברים ולריסן אותם ביעילות. בעת ביצוע פרוצדורות אלו, חשוב לזכור כי ריסון נכון של בעל החיים הופך את הפרוצדורה לבטוחה הן עבור בעל החיים והן עבור המטפל.אל תשכחו כי עבודה עם בעלי חיים במדע היא פריבילגיה ואחריות. בחירת שיטת הריסון הנכונה ונתיבי המתן המתאימים מהווה הן מדע נכון והן רווחה נאותה.

manual-restraint-common-compound-administration-routes-mice

Research

JoVE Journal

Biology

ביולוגיה

בדיקות פרה יסודית של תרופות הפועלות על מערכת העצבים המרכזית כרוך לעתים קרובות בהערכת השוואת biodistribution התרופה בשיתוף עם מסלולים ספציפיים של הממשל. הנה שלוש שיטות נפוצות של משלוח מערכתית (תוך ורידי, intraperitoneal, ובעל פה), כמו גם שיטה למסירה מקומית (הסעה משופרת משלוח) הם הוכיחו בעכברים.

תרופות משלוח מערכתית מקומי לטיפול במחלות של מערכת העצבים המרכזית מודלים מכרסמים

כאן, אנו מתארים מתן תרופות מונחות מיקרופיפטה (MDA) כשיטה חלופית לאכילה אוראלית המתמרצת את חיית המחקר לבלוע טיפולים בקלות עם מינימום מתח ואי נוחות.

שימוש במתן תרופות מונחות מיקרופיפטה כשיטה חלופית לגבאג' אוראלי במודלים של מכרסמים

סוג של רגישות יתר מאוחרת (DTH) היא תגובה דלקתית בתיווך CCR7-מפעיל זיכרון T (TEM) לימפוציטים. כאן אנו מדגימים כיצד להפעיל את אנטיגן ספציפי לערמונית תאים TEM, לגרום DTH המאמצת בחולדות לואיס לפקח על התגובה הדלקתית.

אינדוקציה וניטור של רגישות יתר מושהית-Type המאמצת בחולדות

פרוטוקול שלנו מתאר כיצד לנתח את בלוטת החלב בטן עכברוש ואיך להכין mounts בלוטת החלב כולו. הוא גם מתאר כיצד לנתח מורפולוגיה בלוטת החלב באמצעות שלוש נקודות קצה (מספר ניצנים סוף סופני, התארכות בידול אפיתל) ולהשתמש התוצאות הללו כדי לחזות את הסיכון לסרטן השד אצל חולדות אשר נחשפו שינויים...

שינויים במורפולוגיה בלוטת החלב ואת הסיכון לסרטן השד אצל חולדות

מאמר זה מתאר את ההליכים לביצוע בדיקה שלאחר המוות הבסיסי של עכבר או חולדה, ואת אוסף של איברים בסיסיים, כמו גם סוגי המדגם מאתגר יותר מ להערכה היסטולוגית, מיקרוביולוגית, ו-PCR.

Necropsy לאבחון רקמות אוסף נבחר מדגם של חולדות ועכברים

Ovariectomy והחלפת הבאות של 17β-אסטרדיול באמצעות כמוסות silastic ו נוטלה peroral הם הפגינו חולדות ועכברים.

Ovariectomy ו-17β אסטרדיול החלפת בחולדות ועכברים: הפגנה חזותית

ב2001, חוקרים באוניברסיטת UCLA תאר את בידודה של אוכלוסייה של תאי גזע בוגרים, המכונה תאי גזע שמקורם בשומן או ASCs, מרקמת שומן. מאמר זה מתאר את הבידוד של ASCs מlipoaspirates באמצעות פרוטוקול עיכול ידני, האנזימטית באמצעות collagenase.

בידוד ידני של תאי גזע שמקורם בשומן מLipoaspirates האדם

Assay qPCR פותח לצורך זיהוי של O157 החיידקים Escherichia: H7 מיקוד סמן גנטי ייחודי, Z3276. QPCR היה בשילוב עם טיפול monoazide propidium (PMA) לגילוי תא חי. פרוטוקול זה כבר שונה ומותאם לפורמט צלחת 96 היטב לטיפול קל ועקבי של דגימות רבות...

איתור של שידור חי<em&gt; חיידקי Escherichia</em&gt; O157: H7 תאים על ידי PMA-qPCR

מתקן דג זברה המתאים לגידול ומחקר in vivo בנוי בצורה קלה ומשתלמת. התחזוקה מינימלית. מתקן זה אידיאלי למעורבות סטודנטים ולמחקר עצמאי.

הקמת מתקן דג הזברה בנייה קלה למשתלם ו

ניתוח ביטוי יזם מכריעים לשיפור ההבנה של הכונה וביטוי ייתכן היעד גנים. במסמך זה אנו מציגים פרוטוקול כדי לזהות, לבודד לשבט מקדם הצמח. עוד יותר, אנו מתארים את האפיון של האמרגן גולה ספציפיים שורשים שעירים שעועית נפוצות.

מי קולחין יזם: זיהוי ואפיון של השורש גולה יזם ספציפי בתוך השעועית נפוצות

למד טכניקות איפוק ידני וניהול מתחם בעכברים וחולדות למחקר ביולוגי. שיטות אלו מסייעות לחוקרים לנהל ניסויים בבעלי חיים בבטיחות ובהומניות.

איפוק ידני ומסלולי מנהל מתחם נפוצים בעכברים וחולדות

גלה סרטונים נוספים