Name: Necropsy לאבחון רקמות אוסף נבחר מדגם של חולדות ועכברים (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-08-07T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 13 s
Description: למדו לבצע נקרופסיה בחולדות ועכברים לאיסוף רקמות ואיברים לניתוח היסטופתולוגי. שיטה זו מאפשרת הערכת מצב בריאותי וזיהוי בעיות בקולוניית מחקר.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

<ol><li>AVMA. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=%22AVMA+Guidelines+on+Euthanasia%22">AVMA Guidelines on Euthanasia</a>. , (2007).</li>
<li>Feldman, D. B., Seely, J. C. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFeldman%2C+DB+%22Necropsy+Guide%3A+Rodents+and+the+rabbit%22">Necropsy Guide: Rodents and the rabbit</a>. , CRC Press. (1988).</li>
<li>King, J. M., Dodd, D. C., Roth, L. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKing%2C+JM+%22The+Necropsy+Book%22">The Necropsy Book</a>. , 4th edn, C.L. Davis Foundation. (2006).</li>
<li>Kittel, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Revised+guides+for+organ+sampling+and+trimming+in+rats+and+mice--Part+2.+A+joint+publication+of+the+RITA+and+NACAD+groups%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Toxicol+Pathol%22%5BJournal%5D)">Revised guides for organ sampling and trimming in rats and mice--Part 2. A joint publication of the RITA and NACAD groups.</a> Exp Toxicol Pathol. 55, 413-431 (2004).</li>
<li>Fox, J. G. Chapter 1. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKomarek%2C+V+%22The+Mouse+in+Biomedical+Research%22">The Mouse in Biomedical Research</a>. , Elsevier. Vol. 3: Normative biology, husbandry, and models 1-22 (2007).</li>
<li>Morawietz, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Revised+guides+for+organ+sampling+and+trimming+in+rats+and+mice--Part+3.+A+joint+publication+of+the+RITA+and+NACAD+groups%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Toxicol+Pathol%22%5BJournal%5D)">Revised guides for organ sampling and trimming in rats and mice--Part 3. A joint publication of the RITA and NACAD groups.</a> Exp Toxicol Pathol. 55, 433-449 (2004).</li>
<li>Popesko, P., Raijtová, V., Horák, J. Colour Atlas of Anatomy of Small Laboratory Animals. 2, 1st edn, Saunders. vol. 2: Rat, mouse, hamster 91-106 (2002).</li>
<li>Ruehl-Fehlert, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Revised+guides+for+organ+sampling+and+trimming+in+rats+and+mice--part+1%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Toxicol+Pathol%22%5BJournal%5D)">Revised guides for organ sampling and trimming in rats and mice--part 1.</a> Exp Toxicol Pathol. 55, 91-106 (2003).</li>
</ol>

המחברים הם כל העובדים של מכרסמים במעבדה צ&#39;ארלס ריבר של האבחון במעבדה, שבה שירותים אלה מוצעים מסחרית.

איסוף נתונים בסוף המחקר עשוי לדרוש בדיקה שלאחר המוות של בעלי חיים. תאר היטב מה הוא ראה ולזכור לבחון את כל הרקמות. נהלים אלה נועדו בעיקר כדי לייעל necropsy אוסף מדגם לפיקוח מחלות זיהומיות, אך רובם ניתנים להתאמה בקלות החקירות התמקדו התקריות התפרצויות המחלה או חשד בו אולי רק קבוצת משנה של נהלים יהיה מועסק. רבים מן הנהלים הם גם רלוונטי necropsies ביצע יותר בדרך כלל בסיומו של מחקרים במסגרת הערכה מורפולוגית הכוללת יחד עם אוסף של מחקר ספציפי דגימות לניתוח שלאחר מכן.

<table border="1" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><th> שם מגיב </th><th> חברה </th><th> מספר קטלוגי </th><th> תגובות </th></tr><tr><td> קרש חיתוך </td><td> Thermo Electron Corp חתול # 36114 </td><td> חתול # 36114 </td><td></td></tr><tr><td> מספריים קטנים </td><td> ROBOZ </td><td> RS-5910, G204 </td><td> להבי 23mm, 3.5 &quot;אורך, ישר </td></tr><tr><td> בינוני מספריים </td><td> ROBOZ </td><td> RS-6808, G207 </td><td> 5 &quot; </td></tr><tr><td> מספריים גדול </td><td> ROBOZ </td><td> RS-6826, G65 &quot; </td><td> 6.25 &quot; </td></tr><tr><td> מלקחיים-מעוקל </td><td> ROBOZ </td><td> RS-8254 (M1/21004) </td><td> 4.5 &quot;, משונן, עקומה קלה </td></tr><tr><td> מלקחיים-Microdissecting </td><td> ROBOZ </td><td> RS-5238 </td><td> הדסון-(אוולד) </td></tr><tr><td> מלקחיים, רקמות מלקחיים </td><td> ROBOZ </td><td> RS - 8160 </td><td> עכברוש שן </td></tr><tr><td> הלהבה מעקר </td><td> אוקספורד labware מוצרים </td><td> Bacti-Cinerator # 5889-001007 </td><td></td></tr><tr><td> אזמל נתוחים </td><td> אבחון סרטן, Inc </td><td> פינגר אזמלים # 60, # חתול FS0060 </td><td></td></tr><tr><td> Pipettes </td><td> VWR </td><td> פסטר Pipet 5 3 / 4 &quot;, חתול # 14672-400 </td><td></td></tr><tr><td> החיטוי שקיות </td><td> ייצור פרופר החברה </td><td> תיק שקיות נייר מעקר חתול # 021002 (3100923) E09110 </td><td> עבור פסטר pipettes </td></tr><tr><td> פיפטה הנורה </td><td> VWR </td><td> חתול # 56310-240 </td><td></td></tr><tr><td> Eppendorf צינורות </td><td> Sarstedt </td><td> Microtube 2ml SafeSeal, שופט # 72.695 </td><td></td></tr><tr><td> Eppendorf צינורות </td><td> ארגוס </td><td> Microtube Cat 5 מ&quot;ל # T20765-C </td><td></td></tr><tr><td> מזרק </td><td> BD (Beckton דיקנסון) </td><td> 1ml-309602-3 מ&quot;ל 300910 5 מ&quot;ל, 10 מ&quot;ל # 309603 309604 חתול חתול 20mL # 309661 </td><td></td></tr><tr><td> מחטים </td><td> BD </td><td> 26G-18G-309625 305195 </td><td></td></tr><tr><td> ניטרלי שנאגרו פורמלין </td><td> VWR </td><td> 20L NBF 10%, חתול # 16004-128 </td><td></td></tr><tr><td> מלוח </td><td> ThermoScientific </td><td> שנאגרו מלוחים בנק דם, חתול # 23-309-178 </td><td></td></tr><tr><td> Trypticase סויה מרק </td><td> בקטון דיקנסון </td><td> TSB: חתול מיובש, # 211825 </td><td></td></tr><tr><td> פוספט שנאגרו מלוחים </td><td> סיגמא אולדריץ </td><td> HA חוצץ, חתול # P3813-10PAK </td><td></td></tr><tr><td> פורמלין כוסות </td><td> VWR </td><td> חתול 4oz # # 36318-852 8oz 36318-860 16oz חתול חתול # 36318-858 </td><td></td></tr><tr><td> כוסות פורמלין גדול </td><td> Oakridge מוצרים </td><td> 32oz חתול מיכל # 0432-1100 </td><td></td></tr><tr><td> אקסטרה כוס פורמלין גדול </td><td> VWR </td><td> HDPE מיכל 160oz רב קט # 89038-282 </td><td></td></tr><tr><td> תפר חומר </td><td> הנרי שיין </td><td> קלועה משי תפר כירורגי, שופט # 100-5000, M766750 </td><td> לגבי האינפלציה ריאות העכבר </td></tr><tr><td> פתיל </td><td> סטייפלס </td><td> חתול # qua-46173 </td><td> לגבי האינפלציה ריאות חולדה </td></tr></tbody></table>

necropsy לאבחון רקמות אוסף נבחר מדגם של חולדות ועכברים

Diagnostic Necropsy and Selected Tissue and Sample Collection in Rats and Mice

ישנם סוגים רבים מדגם שעשויים להיות שנאספו חיה מורדמים על מנת לסייע באבחון או לגלות חומרים מזהמים במושבה חיה. איסוף נכון של רקמות לעיבוד היסטולוגית עוד יכול להשפיע על איכות תוצאות הבדיקה. מאמר זה מתאר את התנהלות בדיקה בסיסית ברוטו כולל זיהוי של הלב, הכבד, הריאות, הכליות והטחול, וכן כיצד לאסוף אותם איברים. בנוסף ארבעה רקמה / מדגם טכניקות קשה יותר אוסף הם הפגינו. אוסף ריאות זלוף יכול להיות מאתגר במיוחד כאשר הרקמה צריך להיות מנופח כיאות עם מקבע על מנת בתוך הרקמה לתקן כראוי כדי לאפשר הערכה היסטולוגית יסודית. מאמר זה מדגים את הטכניקה צעד אחר צעד כדי להסיר את הריאות לנפח אותו עם מקבע על מנת להשיג קיבעון אופטימלי של הרקמה בתוך 24 שעות. אוסף המוח יכול להיות מאתגר באותה מידה כמו ברקמה רכה נפגע בקלות. מאמר זה מדגים את הטכניקה צעד אחר צעד כדי לחשוף ולהסיר את המוח מהגולגולת עם נזק מינימלי לרקמות. קשרי לימפה mesenteric הוא סוג מדגם טוב בו כדי לזהות הרבה גורמים מזהמים נפוצים כמו וירוסים enteric להתמיד זמן רב יותר הצומת לימפה מאשר לשפוך בצואה. מאמר זה מדגים את התהליך צעד אחר צעד לאיתור בסביבה נקייה מחיידקים, הסרת בלוטת לימפה mesenteric. לבסוף, זיהוי של חומרים מזהמים של דרכי הנשימה יכולה להתבצע על ידי התרבות חיידקי או בדיקת PCR של האף ו / או הסימפונות נוזל aspirates נלקחה ב necropsy. הליך זה מתאר קבלת והכנת מדגם לשאוב הנשימה לתרבות חיידקי בדיקות PCR.

מאמר זה מתאר את ההליכים לביצוע בדיקה שלאחר המוות הבסיסי של עכבר או חולדה, ואת אוסף של איברים בסיסיים, כמו גם סוגי המדגם מאתגר יותר מ להערכה היסטולוגית, מיקרוביולוגית, ו-PCR.

Necropsy לאבחון רקמות אוסף נבחר מדגם של חולדות ועכברים

ניתן לאסוף מספר סוגי דגימות מבעל חיים שהורדם, במטרה לסייע באבחנה או בגילוי של גורמים זיהומיים בבעל חיים...

המטרה הכללית של הליך זה היא לבצע נתיחה לאחר המוות (necropsy) בסיסית למכרסמים. פעולה זו מבוצעת תחילה על ידי תיעוד מידע בסיסי על בעל החיים. השלב השני של ההליך הוא בדיקת האיברים הפנימיים.השלב השלישי הוא איסוף דגימות כגון איברים או קשרי לניף מזנטריים. בסופו של דבר, ניתן לקבוע את המצב הבריאותי של בעל חיים באמצעות היסטופתולוגיה או טכניקות אחרות. בדרך כלל, אנשים שאינם מנוסים בביצוע נתיחה לאחר המוות יתקשו בכך, כיוון שהאנטומיה של מכרסמים נלמדת תוך כדי עבודה.שיטות אלו יכולות לסייע במתן מענה לשאלות מפתח בנוגע לבריאותן של בעלי חיים במושבה מחקר. הדגמה חזותית של טכניקות אלו היא חיונית, שכן נדרש זמן כדי ללמוד את מיקומם של רקמות שונות וכיצד להבחין בין רקמה נורמלית לרקמה לא נורמלית. לפני ביצוע ההמתה של בעל החיים, אספו מידע על ההיסטוריה שלו ורשמו את מאפייניו הנוכחיים, כגון מצב גופני, התנהגות, מין, גיל, משקל, זן וכדומה.רישום זה חיוני עבור האדם שיבצע את בדיקת הרקמות לפני קטילת בעל החיים. ודאו כי נעשה שימוש בציוד מגן אישי מתאים. הכינו לוח ניתוח, פינצטות, מספריים, תוויות למכלי הקיבול, חומר קיבוע, מדיה ומכלי איסוף.לאחר המתילת בעל החיים, העריכו את מצבו הגופני ובדקו אם קיימות הפרעות בעור ובפרווה, כשירה או התייבשות. כמו כן, חפשו עדות למניפולציות מלאכותיות, שתלים או צלקות ניתוחיות בגוף בעל החיים. לאחר מכן, באמצעות מיקרוסקופ דיסקציה, בחנו את כל הפתחים החיצוניים בפירוט.אלה כוללים את האוזניים, העיניים, האף, הפה, פי הטבעת ואיברי הה reproduקציה. כעת, הנח את בעל החיים על גבו על לוח הנתיחה, הרם את העור באמצעות פינצטה והשתמש במספריים כדי לחתוך את העור מהפי הטבעת ועד לסנטר. לאחר מכן, קפל את העור לצדדים וחתוך דרך דופן הבטן וכלוב הצלעות.חשפו את איברי החזה על ידי ביצוע שני חתכים לצדדים במעלה כל צד של כלוב הצלעות. חתכו את הסרעפת. לאחר מכן, הסירו את כלוב הצלעות על ידי חיתוך לרוחב החלק העליון של עצם הסטרנום.כעת, בחנו את איברי בית החזה והבטן החשופים. שימו לב לכל שינויים בצבע, ריחות חריגים, גודל, הבדלים, וכן לאיברים חסרים או מ displaced. בחנו את מרקם פני השטח של האיברים וציינו מסות רקמתיות או כיסים מלאים בנוזלים.כמו כן, שימו לב לנוכחות של נוזלים בכל אחת מהחללים. המשיכו את הבדיקה עם מערכת העיכול. בדקו את הגריד (mesentery) לאיתור קשרי לימפה מוגדלים או מסות רקמה.תארו את תכולת מערכת העיכול ובדקו בקפידה אם קיימים עיבויים של הדפנות, מסות או דימומים. כדי לבחון את פנים הכליות, השתמשו בלהב כדי לבצע חיתוך לאורכי של הכליה השמאלית וחיתוך רוחבי של הכליה הימנית, מחוץ למרכז קו האמצע. בדקו את הפארנכימה לאיתור חריגות כלשהן.כעת בחנו את מערכת השתן והמין בזכרים. זהו את שלפוחיות הזרע, האשכים, האיפידידימיס והשופכנים. בנקבות, זהו את הרחם, השחלות והשופכנים.בדקו את מערכת השתן והמין לאיתור חסימות, כיסי נוזלים, דימומים או חריגות אחרות. לאחר השלמת בדיקות אלו, בודדו והוציאו את האיברים המבוקשים להמשך בדיקה. בדרך כלל, הלב, הכבד, הכליות והטחול נאספים תוך כדי הוצאתם.טבלו כל איבר במקבע או בצעו את השלבים הראשונים של פרוטוקול הדורש רקמות אלו, כגון הקפאה או אימונוהיסטוכימיה, כדי להשיג קיבוע נאות. בדרך כלל, טובלים רקמות בחומר משמר כגון 10%NBF ביחס של 20 נפחי מקבע לכל נפח אחד של רקמה. בעבודה עם חולדות, אספו את השאיבה הסימפונית לפני השאיבה הנחיתית.התחילו בהרחקה של העור והרקמות התת-עוריות מאזור הצוואר, ובכך חשפו את בלוטות הרוק ואת שרירי הצוואר. לאחר מכן, הסירו רקמות אלו כדי לחשוף את הקנה. בצעו חתך של שלושה מילימטרים לתוך הקנה והחדירו פיפטה טעונה ב-1 mL של נוזל דגימה לתוך חלל הקנה בכיוון רבעוני.שטפו באיטיות את נוזל הדגימה דרך הקנה אל תוך הריאות שלוש פעמים. לאחר מכן, שאבו את נוזל הדגימה והוציאו את הפ pipette מהקנה. לא כל הנוזל יחזור אל תוך ה-pipette.לפיכך, חזור על התהליך במידה ונדרש נוזל נוסף. לבדיקה בעכברים, כדי לקחת דגימה של שאיבה נחירית או שאיבה ברונכיאלית, גש ליחידת ה-ATU הנחירית-לועית באמצעות מספריים סטריליים.נתקו את המפصل הלסת-רקה והרחיקו את הלסת התחתונה מהלסת העליונה, כדי לחשוף את ה-nasal pharyngeal atu לאיסוף של שאיבה נחירית. הכניסו פיפטה טעונה ב-1 mL של נוזל דגימה לתוך ה-nasal pharyngeal atu של העכבר, או לתוך הלומן של הקנה בעכבר. יש לכוון את הפיפטה באופן קרני (cran) ולהחדירה פנימה.כך קצה השפיץ נוגע בחך הנחיר. בנקודה זו, הזרק slowly את נוזל הדגימה. עם כניסת הנוזל לחלל האף, ייווצרו מניסקוסים בפתח הנחיר, והוא אמור להיות נראה גם דרך החך הפהי השקוף.עם זאת, אם נוזל יוצא דרך הפה, יש להתאים מחדש את כיוון הפ pipette. לאחר ההזרקה המלאה, יש לשאוב את נוזל הדגימה מחלל האף אל תוך ה-pipette, ולאחר מכן להוציא את ה-pipette. התחילו בתפיסת הקנה באמצעות פינצטה וגזרו אותו ממש מעל הפינצטה.בשלב הבא, משכו בעדינות את הקנה כלפי מעלה, תוך גזירת חיבורי הרקמה עד שניתן יהיה להוציא את כל מערכת הרקמות החזהיות. כעת, הניחו את הריאות בצורה שטוחה על משטח העבודה, וקשרו באופן רפוי חוט תפר או חוט רגיל סביב הקנה. אין להדק את הקשר, שכן הדבר ימנע את הליש של המחט לתוך הקנה.כעת, מלאו מזרק בחומר מקבע והחדירו את המחט לפתיחת הקנה תוך כדי קיבוע הקנה למחט. בעזרת פינצטה, מלאו באיטיות את הריאות בחומר המקבע עד להתרחבותן המלאה. נפח חומר המקבע ישתנה בהתאם לגילו של בעל החיים, לגזעו ולמצבו הבריאותי.אם הרקמות אינן מנופחות מספיק, הן ייראו שטוחות; אם הן מנופחות מדי, נוזל קצפי ידלף מהרקמה לאחר המילוי. במקרה זה, הדקו את חומר התפירה או את החוט הסובב את הקנה כדי למנוע נזילה לאחור של המקבע מהריאות. לאחר מכן, הניחו את הריאות המנופחות בתוך המקבע. הניחו את הפגר על לוח נתיחה נקי במצב שכיבה גחוני, והשתמשו במספריים ובפינצטה כדי להסיר את העור ואת השרירים המכסים את הלב.לאחר מכן, יש לבצע עקיפת ראש לגופה באמצעות מספריים קטנים. יש להחדיר את הלהב התחתון אל ה-foramen magnum ולגזור לאורך קו האמצע של הגולגולת בתנועה כלפי מעלה. כעת, יש לחשוף את המוח בעזרת פינצטה על ידי פתיחה של הגולגולת.אם הפתולוג מעדיף לחתוך חתכים של המוח בעודו בתוך הגולגולת, יש להניח מיד את הגולגולת עם המוח החשוף ב-10%NBF. אחרת, אחזו את הראש סביב האף באמצעות פינצטה או אצבעות והפכו בעדינות את הגולגולת כדי שהכבידה תסייע לרקמה לנשור מהגולגולת. בזהירות, החליקו פינצטה מעוקלת לאורך הקצה החיצוני של המוח, החל מאונות הריח.המשיכו להחליק את הפינצטה לאורך הגולגולת לכיוון המוח הקטן, תוךما צביטה עדינה של עצבים באמצעות אותה פינצטה. כאשר המוח משתחרר, הניחו אותו במקבע. כדי לאתר תחילה את קשרי הלימפה המזנטריים, איתרו את העקום (cecum) הגדול של המעי, בעל צורה של סהר. קשרי הלימפה המזנטריים הם גושי רקמה צהובים, סגלגלים או כדוריים, הנמצאים במזנטריום הסמוך לעקום.הם לרוב מעט עבים יותר ובעלי מרקם מוצק יותר מהמסרק (mesentery) והשומן שסביבם. מיקרוסקופ ניתוח עשוי להיות מועיל להבחנה בין הרקמות בתחילה, אך עם הניסיון הוא לא יהיה נחוץ. בעזרת פינצטה ומספריים, בודדו את קשרי הלימפה המזנטריים, ולאחר מכן העבירו אותם לפח שחמירה לשימוש עבור תרבית, PCR או היסטופתולוגיה.עם השלמת הפרוטוקול, יעמדו לרשות הפתולוג או המדען המסמכים הבאים: דוח כתוב על המצב האובייקטיבי והסובייקטיבי בעת ההמתה; תיאור אובייקטיבי של הרקמות לפני קיבוען; כל האיברים העיקריים בבטן ובבית החזה בתוך נוזל קיבוע; המוח וקשרי הלימפה המזנטריים (mesenteric), ודגימות של שאיבות מהאף ומהסימפונות.בעת ביצוע פרוצדורה זו, חשוב לזכור לתעד את התצפיות על מצב בעל החיים ורקמותיו. לאחר צפייה בסרטון זה, תהיו בעלי הבנה טובה לגבי אופן ביצוע נתיחה לאחר המוות (necropsy) מלאה של מכרסם, כולל איסוף ריאות שעברו פרפוזיה, קשרי לימפה מזנטריאליים והמוח.

diagnostic-necropsy-selected-tissue-sample-collection-rats

Research

JoVE Journal

Biology

ביולוגיה

מאמר זה מתאר את ההליכים השונים חולדות ועכברים ההקרנה לזהות אנדו או ectoparasitism. מבחני אבחון כמה יהיה הפגינו, הן אלה מתאימים לשימוש בבעלי חיים לבין אלה המשמשים לאחר המתת חסד של החיה. צילומים לסייע בזיהוי של טפילים חולדה ועכבר ייכלל.

אבחון חיצוני ו Endoparasites בחולדות מעבדה ועכברים

הסרטון מדגים הליך לכימות נגיף הזיקה באיברי עכבר מרובים באמצעות בדיקת מיקוד. התהליך כולל הדבקה של חד-שכבות תאי יונקים בהומוגנאטים של רקמות נגועות בנגיף, ולאחר מכן שימוש במתיל צלולוז למניעת התפשטות ויראלית. לאחר מכן, נעשה שימוש ב-immunostaining כדי לאפשר כימות ומדידה מדויקים של זיהומיות ספציפית לאיברים.

בדיקת מיקוד לכימות טיטרים של וירוסים באיברים של עכבר נגוע

סרטון זה מדגים את הדיסוציאציה של רקמת מוח קפואה של חולדה לתרחיף חד-תאי באמצעות עיכול אנזימטי וטריטורציה מכנית. התאים המוכנים מקובעים וחדירים באתנול ליישומים במורד הזרם כמו ציטומטריית זרימה או ניתוח ביטוי גנים.

השגת תרחיף של תא בודד מרקמת מוח של חולדה קפואה

אנו מציגים כאן פרוטוקול אופטימלי ומפורט לצביעה חיסונית כפולה בחלקי רקמת מערכת העצבים המרכזית של חולדה (CNS) ובלוטות הלימפה ההיקפית (LN) קבועים בפורמלין, משובצים בפרפין.

Immunohistochemical ניתוח של מערכת העצבים המרכזית עכברוש לימפה הפריפריה צומת סעיפים רקמות

הנוירוכימיה של מוח היונקים משתנה במחלות נוירולוגיות ומערכתיות רבות. ניתן להשיג ביעילות פרופילים אופייניים של מטבוליטים מוחיים על סמך תמציות גולמיות של רקמת המוח. לשם כך נעשה שימוש בספקטרוסקופיה של תמ"ג ברזולוציה גבוהה, המאפשרת ניתוח כמותי מפורט של ריכוזי מטבוליט (מטבולומיקה).

ניתוח metabolomic של מוח חולדה על ידי ספקטרוסקופיה בתהודה מגנטית הגרעינית ברזולוציה גבוהה של תמציות רקמות

מטרת פרוטוקול זה היא להשתמש בטכניקת מיון תאים מופעלים פלואורסצנטיים (FACS) כדי למיין סוגים ספציפיים של תאים עצביים לניתוח עוקב של ביטוי גנים ספציפיים לסוג התא, סמנים אפיגנטיים ו/או ביטוי חלבון.

ביטוי גנים מסוג התא ספציפי באמצעות סלולארי קרינה המופעל מיון לבדיקת רקמות במוח החולדה

המטרה של פרוטוקול זה היא להפגין שיטות נמק בטוח בבעלי חיים קטנים וגדולים כדי להשיג דגימות רקמה מספקת עבור בדיקת כלבת.

כלבת נקרומה טכניקות בעלי חיים גדולים וקטנים

כתב יד זה מציג פרוטוקול סטנדרטי לכריתת כליה 5/6 על ידי כריתה דו-פולרית חדה באמצעות לפרוטומיה בקו האמצע במודל חולדה, במטרה לגרום למצב של אי ספיקת כליות באמצעות הפחתת פרנכימה כלייתית עם מידה רבה של דיוק שיטתי וסיכון נמוך לטעות טכנית.

כריתת כליה 5/6 באמצעות כריתה דו-קוטבית חדה באמצעות לפרוטומיה בקו האמצע בחולדות

מחקר זה מציע שיטה ניתנת לשחזור וסטנדרטית על מנת לבסס מודלים של חולדות שמנות המציגים השמנת יתר פשוטה, המאופיינת בדרך כלל בלבלב שומני. הוא כולל גם פרוטוקולים מפורטים לדגימת רקמת הלבלב ואימונוהיסטוכימיה.

פיתוח ותיקוף מתודולוגיה להקמת מודלים של חולדות שמנות עם לבלב שומני טיפוסי

שימוש Micro-Electro-Mechanical Systems (MEMS) לפתח כלים לאבחון

למדו לבצע נקרופסיה בחולדות ועכברים לאיסוף רקמות ואיברים לניתוח היסטופתולוגי. שיטה זו מאפשרת הערכת מצב בריאותי וזיהוי בעיות בקולוניית מחקר.

Necropsy לאבחון רקמות אוסף נבחר מדגם של חולדות ועכברים

גלה סרטונים נוספים