JoVE Encyclopedia of Experiments
טכניקות ביולוגיות
0 צפיות • 4:34 דק' • July 8th, 2025
PCR טיפתי דיגיטלי מזהה מוטציות אינדל - החדרה או מחיקה אקראית של נוקלאוטידים ב-DNA. זה מושג על ידי חלוקת הדגימה לטיפות זעירות והגברה עצמאית של ה-DNA בכל טיפה.
כדי לבצע ddPCR, קח דגימת DNA המכילה וריאציות פראיות ומוטנטיות של גן המטרה. טען את תערובת הדגימה והשמן לתאים נפרדים של תא מחולל הטיפות המכילים את התעלה המיקרופלואידית.
הדגימה והשמן זורמים במהירות דרך התעלות הצרות, מתחלבים בצומת, ומחולקים למספר טיפות, שכל אחת מהן מכילה כמה מולקולות DNA.
כעת, קח לוחית PCR עם המאגר המכיל פריימרים קדימה ואחורה, dNTPs, DNA פולימראז יציב בחום ושתי בדיקות המתויגות עם פלואורופורים ומולקולות מרווה שונות. כל בדיקה היא ספציפית לסוג מסוים של אלל - סוג פרא או מוטנטי.
מעבירים את הטיפות לצלחת ה-PCR. הנח את הצלחת במחזור תרמי והפעל את התגובה. במהלך דנטורציה, גדילי ה-DNA נפרדים. בטמפרטורת חישול, הפריימרים והבדיקות מחסלים ל- DNA של התבנית.
הגשושית עם פלואורופורים ירוקים וכתומים נקשרת לרצף ה-DNA מסוג הבר והמוטנטי בהתאמה. מאוחר יותר, DNA פולימראז מרחיב את הפריימרים, מבקע את מולקולות הפלואורופור והמרווה מהגשושית, ויוצר אות פלואורסצנטי.
נתח את המוצר המוגבר. הטיפות המציגות פלואורסצנטיות ירוקות מכילות את רצף ה-DNA מסוג הבר, בעוד שהפלואורסצנציה הכתומה מצביעה על מוטציית האינדל.
ראשית, הכינו 25 מיקרוליטר של תערובת הדגימה הדיגיטלית PCR או ddPCR על ידי הוספת תערובת סופר ddPCR, פריימרים קדימה ואחורה, בדיקות HEX או FAM, DNA ומים בפרופורציות המתוארות בטקסט. לאחר מכן, מערבבים היטב את התגובה על ידי מערבולת.
בעזרת פיפטה רב-ערוצית בנפח 50 מיקרוליטר, טען 20 מיקרוליטר מתערובת הדגימה ddPCR לשורה האמצעית של המחסנית. לאחר מכן, השתמש בפיפטה רב-ערוצית של 200 מיקרוליטר כדי להעמיס 70 מיקרוליטר מהשמן לשורה התחתונה מבלי ליצור בועות לאורך הפיפטה.
הנח את האטם, נוגע רק בקצוות, הימנע מהאזור הקעור המרכזי, ולאחר מכן, הנח את הצלחת היטב בגנרטור הטיפות, וסגור את המכסה כדי להתחיל בריצה.
כדי להעביר את תערובת הטבילה מהשורה העליונה של המחסנית לצלחת 96 הבארות, השתמש בפיפטה רב-ערוצית ושאב 40 מיקרוליטר דגימת נוזל למשך 3 עד 5 שניות בזווית של 30 עד 45 מעלות. לאחר מכן, הוציאו את התערובת לבאר לאט במשך למעלה מ-3 שניות בזווית של 45 מעלות, ואפשרו לה ליפול מהצד, ולאחר מכן, עברו לתחנה השנייה של הפיפטה כדי להוציא את הנוזל לחלוטין. בעזרת אטמי חום נייר כסף, אטמו את הצלחות למשך 5 שניות בחום של 180 מעלות צלזיוס.
הנח את הצלחת האטומה לתוך התרמו-סייקלר והגדר את תנאי ה-PCR להנחיות ההורדה של NHEJ על ידי הגדרת דנטורציה ראשונית על 95 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות. לאחר מכן, הגדר 40 מחזורים של 94 מעלות צלזיוס למשך 30 שניות להארכה, 55 מעלות צלזיוס למשך דקה לחישול, ו-60 מעלות צלזיוס למשך 2 דקות להארכה.
לאחר 40 מחזורים, הגדר את האחיזה על 98 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות, והחזקה סופית על 4 מעלות צלזיוס. השתמש בקצב שיפוע של 2 מעלות צלזיוס לשנייה עבור כל השלבים. טמפרטורת החישול תשתנה בהתאם לבדיקות או לפריימר המשמשים. הנח את הצלחת היטב בקורא הטיפות כשה-A1 מסומן היטב בפינה השמאלית העליונה.
פתח את התוכנית והגדר את הצלחת על ידי ייעוד FAM כערוץ הייחוס הידוע ו-HEX כערוץ הלא ידוע עבור כל באר. לאחר מכן, שנה את השם עבור כל דוגמה. הפעל את ניסוי קריאת הטיפות ככימות ישיר תוך שמירת התבנית.
מאמר זה דן בשימוש ב-PCR של טיפות דיגיטליות (ddPCR) לזיהוי מוטציות indel ב-DNA. השיטה מחלקת דגימה לטיפות זעירות לצורך הגברה עצמאית, מה שמאפשר ניתוח מדויק של מוטציות.
טכנולוגיית Digital droplet PCR מאפשרת זיהוי וכימות מדויקים של מוטציות indel, ותומכת בתיקוף המטרה בשלבי הגילוי המוקדמים על ידי אספקת קריאות ברגישות גבוהה עבור וריאנטים גנטיים נדירים. יכולת זו מגבירה את הביטחון החזוי במודלים פרה-קליניים על ידי מתן אפשרות להערכה מדויקת של תוצאות המוטגנזה בתהליכי עריכה גנטית. השיטה תומכת בקבלת החלטות מבוססות נתונים של go/no-go בזיהוי מובילים (lead identification) ובמיון תיקי הפיתוח באמצעות ניתוח מוטציות כמותי.
PCR של טיפות דיגיטליות (Digital droplet PCR) משתלב ברצף הגילוי, החל מניסויי עריכה גנטית מוקדמים ועד לזיהוי מובילים, ומספק נתונים כמותיים על מוטציות המנחים את ההערכה הפרה-קלינית הבאה.
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
סרטונים קשורים
0 צפיות
עודכן לאחרונה: 29 אוגוסט 2026