PCR דיגיטלי דופלקס לכימות סימולטני של סמנים גנטיים כפולים

0 views • 8:45 min • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

תגובת שרשרת פולימראז דיגיטלית דופלקס - ddPCR - מאפשרת זיהוי כמותי בו זמנית של שני סמנים גנטיים נפרדים.

כדי להתחיל, קחו דגימה שמכילה שני רצפי מטרה שונים. הוסף תערובת המכילה אנזים DNA פולימראז יציב בחום, dNTPs ופריימרים ספציפיים למטרה. לאחר מכן, הוסף שתי בדיקות אוליגונוקלאוטידים ספציפיות למטרה, המסומנות עם מדווחים פלואורסצנטיים ומולקולת מרווה לאיתור מטרות מוגברות.

התמיסה מתחלבת בשמן כדי לחלק את רצפי המטרה לננו-טיפות רבות. כל טיפה המכילה את המטרה פועלת ככלי תגובה אינדיבידואלי.

התחל את תהליך המחזור התרמי עבור תגובת ההגברה בתוך הננו-טיפות הבודדות.

בטמפרטורת דנטורציה גבוהה, המטרות הדו-גדיליות נפרדות לגדילים בודדים.

הורד את הטמפרטורה כדי להגיע לטמפרטורת החישול המתאימה, מה שמאפשר לפריימרים ולבדיקות האוליגונוקלאוטידים להיקשר לתבנית.

קרבתו של המרווה מדכאת את הקרינה של המדווח. בטמפרטורת ההרחבה, DNA פולימראז מרחיב את הפריימרים ומבקע את בדיקת האוליגונוקלאוטיד. הכתב הלא כבול פולט פלואורסצנטיות.

העבירו את הטיפות דרך קורא טיפות - מערכת לזיהוי פלואורסצנטיות. זיהוי פלואורסצנטי יחיד או כפול מצביע על טיפות חיוביות המכילות מטרות, בעוד שהיעדר אות מצביע על טיפות שליליות.

היחס בין טיפות חיוביות למספר הכולל של מחיצות קובע את הריכוז הראשוני של רצפי המטרה.

כדי להתחיל בהליך זה, ראשית, הכינו 100 ריכוזי מלאי מיקרומול לליטר עבור כל הפריימרים במים בדרגה מולקולרית ובדיקות במאגר TE pH 8, כמתואר בטקסט הפרוטוקול. לאחר מכן, הכינו תערובת מאסטר על ידי ערבוב כמויות מתאימות של תערובת PCR דיגיטלית, פריימרים קדימה ואחורה, הגשושית הפלואורסצנטית ומים נטולי נוקלאז. פיפטה למעלה ולמטה לפחות 10 פעמים לערבוב, תוך הקפדה על זהירות לא להכניס בועות אוויר לתמיסה.

מכיוון שתערובת מאסטר dPCR צמיגה יותר מתערובת מאסטר qPCR קונבנציונלית, יש צורך להשתמש בטכניקת ערבוב על ידי פיפטינג על מנת ליצור פתרון הומוגני. זה מאפשר כימות dPCR מדויק במורד הזרם.

כדי להכין את תערובת הבדיקה ליצירת טיפות להפעלת דגימות בשכפול, פיפטה 36 מיקרוליטר מתערובת המאסטר לתוך צלחת PCR רגילה. לכל אחת מתערובות המאסטר של 36 מיקרוליטר, מערבבים פנימה 12 מיקרוליטר של תבנית DNA, ומשאירים את בארות השכפול המתאימות ריקות על הצלחת. כלול בקרות חיוביות כדי להבטיח שהבדיקה פועלת כהלכה. כלול No Template Controls או NTCs כדי להבטיח שאין זיהום בתוך הצלחת, וכדי להגדיר את קו הבסיס הפלואורסצנטי מאוחר יותר לניתוח נתונים.

לפני הגדרת מחולל הטיפות, ערבבו את תערובות הבדיקה באמצעות פיפטה רב-ערוצית כדי לזרוק את התערובות למעלה ולמטה כ-15 פעמים. ודא שקצה הפיפטה נשאר בתוך הנוזל כדי למנוע יצירת בועות עודפות בתוך התערובת.

לאחר מכן, הכנס את המחסנית הראשונה, המכילה שמונה בארות, לתוך מחזיק מחסנית לבן ולחץ על מחזיק המחסנית סגור. מחסנית אחת נמצאת כעת במקומה היטב, ולא ניתן להוציא אותה מהמחזיק תוך יצירת טיפות.

בעזרת פיפטה רב-ערוצית, העבירו בעדינות 20 מיקרוליטר מתערובת הבדיקה למצב האמצעי של המחסנית המסומנת 'דגימה' מבלי להכניס בועות אוויר. פיפטה ב-70 מיקרוליטר שמן ליצירת טיפות בצד שמאל של המחסנית המסומנת 'שמן'.

כסה את המחסנית באטם, וודא שהאטם שטוח ומוחזק באופן שווה על ידי ארבעת הקרציות לכיוון קצה המחסנית. לחץ על הכפתור המואר בירוק בגנרטור הטיפות כדי לפתוח את הדלת ולהניח את המחסנית. לחץ שוב על הכפתור כדי לסגור את הגנרטור. לאחר סגירת הדלת, הכפתור הירוק מעומעם ולא ניתן לפתוח את הדלת מחדש.

יצירת טיפות תתחיל מיד ותימשך כדקה.

בזמן שיצירת הטיפות מתבצעת, הנח את המחסנית השנייה במחזיק מחסנית לבן שני, והכן אותה באותו אופן כמו למחסנית הראשונה. לאחר השלמת יצירת הטיפות, הכפתור המואר במעומעם יהפוך לירוק.

פתח את דלת מחולל הטיפות. הסר את מחזיק מיכל הדיו הלבן המכיל את מיכל הדיו הראשון והנח אותו בצד. הנח מחסנית שתיים בגנרטור הטיפות.

הסר את האטם מהמחסנית הראשונה והשליך. אל תבטל את הלחיצה על מחזיק מיכל הדיו הלבן, מכיוון שהפעולה עלולה לשבור את הטיפות החדשות שנוצרו.

בעזרת פיפטה רב-ערוצית המוגדרת ל-40 מיקרוליטר, הכנס את הקצוות לעמודה השלישית של הטיפות המסומנות במחסנית בזווית של 45 מעלות, ואט אט למעלה את כל הטיפות. העבירו אותם לצלחת ה-PCR הסופית על ידי הנחת קצה הפיפטה על דופן הבאר בערך באמצע הדרך למטה והוצאת הטיפה לאט.

באותו אופן, כאשר יצירת הטיפות עבור מחסנית 2 הושלמה, הסר את האטם ממחסנית 2 והעביר את הטיפות שנוצרו לצלחת ה-PCR הסופית. הניחו מכסה נייר כסף מנוקב על גבי הצלחת והניחו אותו על אוטם צלחות. הגדר את הסילר ל -180 מעלות צלזיוס. לחץ על "הפעל" על הסילר ואטום למשך 10 שניות.

כדי להתחיל בהליך זה, הנח את לוחית ה-PCR הסופית האטומה במחזור התרמי. השתמש במחזור תרמי התואם ללוחית ה-PCR הסופית, ובמהירות הגברת טמפרטורה של 2 מעלות צלזיוס לשנייה.

הפעל את התוכנית התרמית הבאה: 10 דקות ב-95 מעלות צלזיוס ולאחר מכן 40 מחזורים של 30 שניות ב-94 מעלות צלזיוס ו-60 שניות ב-60 מעלות צלזיוס ולאחר מכן החזקה של 10 דקות ב-98 מעלות צלזיוס. עם סיום הרכיבה, העבירו את הצלחת לקורא טיפות למדידה אוטומטית של הקרינה בכל טיפה בכל באר.

ודא שהטיפות נמצאות בטמפרטורת החדר לפני שתמשיך בקריאת הטיפות. התחל בפתיחת התוכנה הנלווית כדי להגדיר את קריאת הטיפות. בתפריט ברירת המחדל "הגדרה" המכיל סכימה של צלחת ריקה של 96 בארות, לחץ פעמיים על באר A1 כדי לפתוח את התפריט המכיל שלושה חלקים - "דוגמה", "בדיקה 1" ו"בדיקה 2".

במקטע הדוגמה, הקלד את המזהה לדוגמה בתיבה שכותרתה "שם" וסמן את התיבה מימין המסומנת "החל". לאחר מכן, לחץ על התפריט הנפתח שכותרתו "ניסוי". בחר "אדום" לזיהוי אירועים נדירים ולחץ על 'Enter'.

מעבר למקטע המסומן כ- "A1". בקטע "שם", מלא את הבדיקה ולחץ על 'Enter'. בתיבה למטה שכותרתה "סוג", לחץ על התפריט הנפתח, בחר "ערוץ 1 לא ידוע" ולחץ על "Enter".

מעבר למקטע המסומן כ- "A2". בקטע "שם", מלא את הבדיקה ולחץ על 'Enter'. בתיבה למטה שכותרתה "סוג", לחץ על התפריט הנפתח, בחר "ערוץ 2 לא ידוע" ולחץ על "Enter".

כל המידע מהשלבים הקודמים נמצא כעת בבאר A1.

תן שם לכל הבארות הבאות המכילות טיפות. כדי לחסוך זמן התקנה כולל, לחץ על 'Shift' או 'בקרה' כדי לבחור מספר בארות בו זמנית. כאשר התיאור הדיגיטלי של הצלחת משקף את הצלחת הפיזית, לחץ על "אישור" בפינה השמאלית התחתונה של התפריט. בתפריט החדש שמופיע בחלק העליון של סכימת הצלחת, תחת הקטע "תבנית", בחר "שמור בשם" ושם ושמור את הצלחת.

משמאל למסך, לחץ על "הפעל" ובחר את ערכת הצבע המתאימה בחלון המוקפץ "אפשרויות הפעלה". איסוף הנתונים יתחיל ויוצגו בזמן אמת בתוכנה.

08:23

Droplet יחיד שרשרת התגובה פולימראז דיגיטלי עבור זיהוי מקיף, בו זמנית של מוטציות באזורים חמה

Related Videos

0 Views

06:53

איתור וניטור של DNA הקשורים במחזור הגידול ב ביולואידים חולה

Related Videos

0 Views

08:25

איתור דנ"א ללא תאים בדגימות פלזמה בדם של חולי סרטן

Related Videos

0 Views

11:09

Multiplex זיהוי של חיידקים דוגמאות מורכבות קלינית הסביבה באמצעות oligonucleotide מצמידים פלורסנט microspheres

Related Videos

0 Views

04:32

PCR דיגיטלי מבוסס שבב בצינור לכימות גרסאות נוקלאוטידים בודדים

Related Videos

0 Views

12:14

Assay PCR דיגיטלי דופלקס כימות סימולטני של Spp אנטרוקוקוס. ואת מרקר HF183 הקשורים צואת האדם ווטרס

Related Videos

0 Views

09:16

זיהוי של Variant התעתיק נדיר CDH1 ברקמות מוקפאות סרטן קיבה על ידי מבוססי שבב דיגיטלי PCR

Related Videos

0 Views

05:53

ג'ין המועמד בדיקות במחקרים קליניים עוקבה ועם Genotyping מרובבת ספקטרומטר מסה

Related Videos

0 Views

05:58

פולימראז דיגיטלי Assay תגובת שרשרת עבור הווריאציה גנטי לחולה סדיר פוליפוזיס באמצעות התבנית שבב-ב--שפופרת

Related Videos

0 Views

07:11

דיגיטלי PCR מבוססי אינדקס תחרותי עבור ניתוח תפוקה גבוהה של כושר בסלמונלה

Related Videos

0 Views

Last updated: 1 August 2026