$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
התחל עם עכבר מושתל מורדם שהוקרן בעבר כדי לדכא את מערכת החיסון המארח.
השג תאי גזע המטופויאטיים מעכבר תורם שונה גנטית כדי לחקות השתלת תאי גזע אלוגניים.
הסר את תאי ה-T התורמים באמצעות חרוזים מגנטיים.
הזרקו את התרחיף המדולדל של תאי T לחלל הרטרובולברי של העכבר המקבל.
תאים מושתלים נכנסים לזרם הדם, נודדים לכלי מח העצם ומשתמשים במולקולות הידבקות כדי להיכנס לנישה, ויוזמים המטופואיזה.
הזרקת לימפוציטים טחוליים מסוג T מעכבר תורם אלוגני לחלל הרטרובולברי של המקבל כדי לגרום לתגובתיות צולבת חיסונית.
תאי T אלוראקטיביים אלה נודדים לרקמות שונות.
קולטני פני השטח של תאי T נקשרים לאנטיגנים של תאי הנמען, ומזהים אותם כזרים.
זה מעורר מפל של אירועי איתות בתוך לימפוציטים T, מה שמוביל להפעלתם.
תאי ה-T המופעלים מעוררים מפל דלקתי המאופיין בגיוס של תאים חיסוניים נוספים הפוגעים באופן קולקטיבי ברקמות המארח, מה שמוביל להתפתחות מחלת השתל נגד המאכסן.
יום אחד לאחר הקרנת הגוף המלאה של עכברי BALB/c המקבלים, הנח CD45.1/Ly5.1 B6. עכבר תורם SJL במצב נוטה על נדן עבודה נקי, והשתמש בקצה מעוקל ומשונן של 13 סנטימטר של מלקחיים של Semken כדי להרים את הפרווה בעקב אכילס אחד.
בעזרת מספריים עדינים מוקשים בגודל 8.5 ס"מ עם קצוות ישרים, חותכים את העור בין המלקחיים לעקב אחד, מאריכים את החתך בגולגולת כדי להקל על הסרת העור והפרווה מהגפיים האחוריות. לאחר הסרת העור מהגפיים האחוריות, יש לחתוך כל מפרק ירך, קרסול וברך.
אחסן את הירך והשוק של כל גפה אחורית בצלחת פטרי אחת בגודל 92 מילימטר מלאה ב-PBS על קרח, והסר בזהירות כמה שיותר שרירים מכל עצם, והעביר כל עצם ירך ושוק נקיים לתוך צינור של 50 מיליליטר של מדיום RPMI 1640 סטרילי על קרח רטוב.
כדי לבודד את מח העצם, העבירו עצם אחת בכל פעם לצלחת פטרי חדשה בגודל 92 מילימטר מלאה במדיום RPMI 1640 טרי, והשתמשו באזמל כדי לחתוך את הקצוות של כל עצם. לאחר מכן, השתמש במזרק של 1 מיליליטר המצויד במחט בגודל 26 כדי לשטוף את העצמות במיליליטר אחד של מדיום טרי בכל פעם לתוך צינור איסוף של 50 מיליליטר המכיל חמישה מיליליטר מדיום.
לאחר שכל העצמות נשטפו, פיפטה בעדינות את חלקי מח העצם המתפוררים למעלה ולמטה מספר פעמים כדי ליצור תרחיף חד-תאי. לפני סינון התאים דרך מסננת תאי רשת של 40 מיקרומטר לתוך צינור איסוף חדש של 50 מיליליטר, גלולה את התאים על ידי צנטריפוגה, והשעיה מחדש של התאים בחמישה מיליליטר של מאגר אשלגן אמוניום כלוריד לדגירה של שלוש דקות בטמפרטורת החדר. בתום הדגירה יש לעצור את התגובה עם 10 מיליליטר PBS ולצנטריפוגה שוב את התאים.
השעו מחדש את הגלולה בשני מיליליטר PBS טריים לספירה, והניחו בצד 6 x 106 תאים לניתוח ציטומטרי של זרימה במורד הזרם. לאחר מכן, השתמש בערכת טיהור תאים זמינה מסחרית כדי לרוקן מגנטית את תאי ה-T החיוביים ל-CD90.2 מתרחיף התא הבודד של מח העצם בהתאם להוראות היצרן, והניחו בצד 1 x 106 תאים של הפליטה המדולדלת של תאי T לניתוח ציטומטרי במורד הזרם של טוהר התא והרכבו לפני ואחרי ההפרדה.
לאחר מכן, השתמש במזרק של מיליליטר אחד המצויד במחט בגודל 30 כדי להזריק 5 x 105 תאי T מדוללי תאי T ו-100 מיקרוליטר של PBS תוך ורידי לתוך החלל הרטרובולברי של הסינוס הוורידי של כל בעל חיים מוקרן.
למחרת, הניחו טחול שנקטף מבעל חיים תורם על מסננת רשת של 40 מיקרומטר בצינור איסוף של 50 מיליליטר, והשתמשו בבוכנה מזרק כדי ללחוץ את רקמת הטחול דרך המסננת לתוך הצינור. שטפו את המסננת והבוכנה עם PBS כדי לאסוף את כל הטחול, וגלו את התאים על ידי צנטריפוגה, לאחר ליזה של כדוריות דם אדומות כפי שהודגם. השעו מחדש את תאי הדם הלבנים לספירה, והניחו בצד 6 x 106 תאים לניתוח ציטומטרי של זרימה במורד הזרם.
לבידוד כולל של תאי T חיוביים ל-CD3 מהטחול הכולל, השתמש בערכת טיהור תאים זמינה מסחרית בהתאם להוראות היצרן, והניח בצד 1 x 106 תאי T חיוביים ל-CD3 משבר התא החיובי לניתוח ציטומטרי במורד הזרם של טוהר התא והרכבו, לפני ואחרי ההפרדה. לאחר מכן, הזרקו 7 x 105 תאי T חיוביים ל-CD3 ו-100 מיקרוליטר PBS תוך ורידי לתוך החלל הרטרובולברי של כל עכבר נמען כדי לגרום ל-GvHD.