$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
קח צינורות ציטומטריים המכילים תערובת צביעה הכוללת נוגדנים חד-שבטיים בעלי תווית פלואורסצנטית התלויים במאגר גירוי.
הוסף ריכוזים יורדים של אלרגן הבדיקה למספר צינורות. הוסף נוגדנים נגד IgE לשפופרת אחת כדי לשמש כבקרה חיובית בתיווך IgE, והוסף חוצץ לצינור אחר לבקרה השלילית.
הזרימו דם היקפי אנושי לתוך הצינורות. דגירה.
אם האדם רגיש לאלרגן הבדיקה, חשיפה זו גורמת לאלרגן להיקשר לנוגדני IgE הספציפיים לאלרגן הקשורים לקולטני Fc על פני השטח של הבזופיל.
אלרגנים מצלבים קולטני IgE הקשורים ל-IgE, וגורמים להפעלת בזופילים.
בזופילים עוברים דה-גרנולציה, ומשחררים גרגירים תוך-תאיים המכילים מתווכים דלקתיים, עם ויסות מוגבר של מולקולות CD63 ו-CD203c.
נוגדנים חד-שבטיים המסומנים באופן פלואורסצנטי נקשרים ל-CD63, CD203c ו-CCR3 על בזופילים, בהתאמה.
הורד את הטמפרטורה כדי לעצור את פירוט הבזופילים.
הוסף חיץ לאריתרוציטים ליז ותקן את התאים.
בעזרת ציטומטר זרימה, זהה את הבזופילים מאוכלוסיית הלימפוציטים.
באמצעות CD63 כסמן הפעלה, נתח את הפעלת הבזופיל בריכוזי אלרגנים פוחתים.
התחל באיסוף דם היקפי בצינורות הפריניזציה של 9 מיליליטר, והנח את הדגימות ברוטור כדי לשמור עליהן בטמפרטורת החדר עד שהן נדרשות לפרוטוקול הניסוי.
סמן שני צינורות ציטומטר של 5 מיליליטר כל אחד לבקרה שלילית ובקרה חיובית. כמו כן, סמנו שפופרת אחת עבור ריכוזי האלרגן או התרופה השונים הנבדקים. לאחר מכן, הניחו את הצינורות במתלה כך שהצינורות יתאימו בצורה מושלמת מבלי להחליק.
לבקרה החיובית הראשונה, הכינו תמיסה של 4 מיקרו-מולרית של N-Formylmethionyl-leucyl-phenylalanine, או fMLP, ב-0.05% PBST כדי לאשר את איכות הבזופילים. לבקרה החיובית השנייה, הכינו תמיסת אנטי-IgE של 0.05 מיליגרם למיליליטר באמצעות PBST. הכן את תערובת הצביעה על ידי הוספת 1 מיקרוליטר כל אחד של נוגדנים CCR3-APC, CD203c-PE ו-CD63-FITC לכל 20 מיקרוליטר של מאגר הגירוי. לאחר מכן, הוסף 23 מיקרוליטר מתערובת הצביעה הזו לכל צינור.
הוסף 100 מיקרוליטר של PBST לצינורות הבקרה השליליים, הוסף 100 מיקרוליטר של fMLP לאחד מצינורות הבקרה החיוביים, והוסף 100 מיקרוליטר של אנטי-IgE לשני. לשאר הצינורות מוסיפים 100 מיקרוליטר מריכוזי האלרגן או התרופות השונים, ודוגרים בחום של 37 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות. לאחר הדגירה, הוסף 100 מיקרוליטר דם לכל צינור בעדינות כדי למנוע המוליזה. לאחר מכן, מערבל בעדינות את הצינורות ודגר אותם למשך 25 דקות בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס באמבטיה התרמוסטטית עם תסיסה בינונית.
שמור את הצינורות על 4 מעלות צלזיוס למשך חמש דקות לפחות כדי לעצור את הגרנולציה. לכל צינור, הוסף 2 מיליליטר של מאגר ליזינג כדי ליז את האריתרוציטים. מערבל כל צינור, ולאחר מכן, דגר על הצינורות למשך 5 דקות בטמפרטורת החדר. צנטריפוגה את הצינורות ב-300 x גרם ב-4 מעלות צלזיוס למשך 5 דקות. לאחר מכן, הפוך את המתלה לכיור כדי לשפוך את הסופרנטנט בזמן שהתאים נשארים בתחתית הצינורות. הוסף 3 מיליליטר PBST לכל צינור כדי לשטוף את התאים, ולמערבל את הצינורות. בצע סיבוב שני של צנטריפוגה באמצעות אותה קבוצת פרמטרים ושפך את הסופרנטנט על ידי הפיכת המתלה לכיור. לאחר מכן, שמור את הדגימות בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס, מוגנות מפני אור עד לזרימה ציטומטרית.
חבר את ציטומטר הזרימה לתוכנת המחשב והמתן עד שהציטומטר יהיה מוכן. טען את הגדרות התבנית והמכשיר כמתואר בכתב היד של הטקסט. התחל בתהליך רכישת הדגימה.
כדי לבחור בזופילים מופעלים, ראשית, קבל את הלימפוציטים מהתרשים פיזור צדדי - פיזור קדימה. לאחר מכן קבל את הבזופילים מאוכלוסיית הלימפוציטים כתאים חיוביים ל-CD203c חיוביים ל-CCR3, ורכוש לפחות 500 בזופילים בכל צינור. הגדר את הסף השלילי CD63 לכ-2.5% באמצעות צינורות הבקרה השליליים, ונתח את הדגימות.