ניטור הפעלת תאי B עם ליפוזומים אנטיגניים באמצעות בדיקת שטף סידן

0 צפיות3:54 דק' • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

קח טחול מדולדל תאי דם אדומים במאגר המכיל צבע פלואורסצנטי רגיש לסידן, Indo-1 AM.

אסטרזות תוך-תאיות מבקעות את Indo-1 AM ל-Indo-1 אטום לממברנה, שנקשר ליוני סידן, ומשנה את אות הקרינה של Indo-1 מכחול לסגול.

הציגו נוגדנים ספציפיים לאנטיגן מצומדים פלואורופור הנקשרים במיוחד לאנטיגנים המתאימים בתאים.

באמצעות ציטומטריית זרימה, זהה תאי B המסומנים בפלואורופור ומדוד את יחס הקרינה הסגול לכחול שלהם בהודו-1.

כעת, טפל בתאים עם ליפוזומים אנטיגניים המורכבים מקטעי IgM Fab המצומדים לליפוזומים דו-שכבתיים.

קולטני תאי B נקשרים לאנטיגנים המחוברים לליפוזום, מפעילים את הטירוזין קינאזות הציטופלזמיות הקשורות ומפעילים את הפעלת פוספוליפאז-C גמא-2.

פוספוליפאז-C מופעל מבקע את הממברנה פוספוליפיד, פוספטידילינוזיטול 4,5-ביספוספט, ויוצר שליחים שניים, כולל אינוזיטול 1,4,5-טריפוספט, או IP3.

IP3 נקשר לתעלות סידן מגודרות IP3 ברטיקולום האנדופלזמי, ומשחרר יוני סידן לציטופלזמה.

יוני סידן אלה קושרים את מולקולות Indo-1 הבלתי קשורות, ומגבירים את הקרינה הסגולה.

יחס פלואורסצנטי גבוה יותר של הודו-1 סגול לכחול בתאי B מסומנים מאשר את הפעלתם המוצלחת על ידי ליפוזומים אנטיגניים.

כדי לעקוב אחר תגובת תאי B להפעלת ליפוזום אנטיגני, השהה מחדש 1.5 x 107 טחול במאגר העמסת שטף סידן, והוסף 1.5 אינדו-1 מיקרו-מולרי לתאים, והפוך את התמיסה בצינור מספר פעמים לערבוב. לאחר דגירה של 30 דקות באמבט מים בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס מוגנת מאור, הוסף פי 5 נפח מאגר העמסת שטף הסידן וצנטריפוגה את התאים המסומנים בהודו-1.

עבור שער תאי B, תאי כתמים עם נוגדנים נגד CD5 ואנטי B220 ב-0.5 מיליליטר של מאגר טעינה ב-4 מעלות צלזיוס למשך 20 דקות מוגנים מפני אור. בתום הדגירה, שטפו את התאים במאגר העמסת שטף סידן טרי, והשעו מחדש את הגלולה ב-1 עד 2 x 107 תאים למיליליטר של מאגר שטף סידן טרי לאחסון על קרח מוגן מפני אור, עד לניתוח.

לאחר מכן, הוסף 0.5 מיליליטר תאים לצינור פוליסטירן תחתון עגול בנפח 5 מיליליטר, וחמם את התאים ל -37 מעלות צלזיוס באמבט מים. לאחר 3 עד 5 דקות, העבירו את הצינור לתא מעטפת מים של 37 מעלות צלזיוס המחובר לאמבט מים מחזורי, והעבירו את הצינור במעטפת המים על ציטומטר הזרימה.

לאחר איסוף 5,000 עד 10,000 אירועים בשנייה, אפשר לתאים להתייצב במשך 15 עד 30 שניות, והתחל מחדש את רכישת הנתונים, תוך איסוף הנתונים למשך 10 שניות לפחות כדי ליצור קריאת רקע. בסימן 10 השניות, הסר במהירות את הצינור מציטומטר הזרימה, והוסף את הריכוז הניסיוני המתאים של ליפוזומים אנטיגניים. לאחר מכן, מערבולת דופק של התאים, וקרא את הצינור על הציטומטר למשך 3 עד 5 דקות נוספות.

08:07

זיהוי של אינוזיטול פוספט או זרחן אינטראקציה חלבונים על-ידי כרומטוגרפיה של אהדה מצמידים לאבן חשופה מערבית או ספקטרומטר המסה

סרטונים קשורים

0 צפיות

11:31

הכוונת תרופות לזחל מקרופאגים על ידי הזרקת סמים טעונים ליפוזומים

סרטונים קשורים

0 צפיות

08:46

ייצור ללא תאים של פרוטאוליפוזומים לניתוח פונקציונלי ופיתוח נוגדנים המכוונים לחלבוני ממברנה

סרטונים קשורים

0 צפיות

03:24

דינמיקה של אברונים בלימפוציטים מסוג B לאחר הפעלה עם חרוזים מצופים אנטיגן

סרטונים קשורים

0 צפיות

02:41

הפעלת תאי B על גבי כיסוי מצופה אנטיגן

סרטונים קשורים

0 צפיות

05:52

בדיקה סלולרית לזיהוי סוכנים בעלי אינטראקציה CXCR4

סרטונים קשורים

0 צפיות

08:14

הערכת זרימת סידן הנגרמת על ידי קולטן תאי T באמצעות צבע מחוון סידן

סרטונים קשורים

0 צפיות

19:05

מדידת TCR-pMHC כריכה באתר באמצעות assay מיקרוסקופית המבוסס על סריג

סרטונים קשורים

0 צפיות

07:41

קינטי מבוסס על-ידי קרינה פלואורסצנטית Ca2 + גיוס Assay לזהות את G-חלבון בשילוב קולטן אגוניסטים היריבים, מאפננים Allosteric

סרטונים קשורים

0 צפיות

10:31

ליפוזומים antigenic לדור של נוגדנים מחלות ספציפיות

סרטונים קשורים

0 צפיות

עודכן לאחרונה: 1 אוגוסט 2026