$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
טפל גם בזני חיידקים פיומלנין וגם בזני חיידקים שאינם מייצרים פיומלנין עם חומר בדיקה.
פיומלנין, פיגמנט חוץ-תאי, מספק הגנה מפני עקה חמצונית.
חומר הבדיקה משבש את הביוסינתזה של פיומלנין, ומפחית את ייצורו.
לאחר הדגירה, בצע דילול חיידקים סדרתי עם מאגר המכיל את חומר הבדיקה או ממס הרכב.
זיהוי דילול חיידקים על לוחות אגר עם ריכוזי מי חמצן משתנים - גורם לחץ חמצוני.
צלחות חסרות מי חמצן משמשות כבקרות.
דגירה. בצלחות בקרה, חיידקים יוצרים מושבות.
בזן המייצר פיומלנין שלא טופל, פיומלנין מגן על חיידקים מפני נזק חמצוני הנגרם על ידי מי חמצן, וכתוצאה מכך מושבות פיגמנטיות.
עם זאת, הזן המייצר פיומלנין שטופל בחומר הבדיקה, המציג פיומלנין מופחת, הופך לרגיש לעקה חמצונית, וכתוצאה מכך מוות של חיידקים.
ספור מושבות.
ספירת המושבה וגודלה המופחתת עם עלייה בריכוזי מי חמצן בזנים המטופלים המייצרים פיומלנין וגם מטופלים ולא מטופלים שאינם מייצרים פיומלנין מאשר בקרות מצביעים על רגישות מוגברת של חיידקים לעקה חמצונית.
כדי להתחיל בהליך זה, הגדר תרביות לילה של הזנים שייבדקו ב-LB, עם ובלי NTBC. למחרת, הכינו צלחות אגר LB המכילות מי חמצן כגורם לחץ חמצוני. ראשית, ממיסים את צלוחיות האגר LB ומקררים את המדיה לכ- 50 מעלות צלזיוס בטמפרטורת החדר.
לאחר מכן, הוסף מי חמצן ישירות למדיה המקוררת בריכוזים הרצויים. סובבו את הבקבוק לערבוב. טווח של ריכוזי מי חמצן בין 0 ל-1 מילימולר הוא נקודת התחלה טובה. יוצקים מיד את הצלחות ומדליקים את המשטח להסרת בועות. התשואה היא ארבע צלחות לכל 100 מילימטרים של אגר LB. סמן את הצלחות בריכוז מי החמצן.
הניחו את הצלחות ללא כיסוי במכסה המנוע הביולוגי, כשמאוורר פועל למשך 30 דקות כדי להסיר עודף לחות מהצלחות. יש להשתמש בצלחות באותו יום בו הן מוכנות. בזמן שהצלחות מתייבשות, יש לשטוף ולמדוד את ה-OD600 של תרביות הלילה.
נרמל את ה-OD600 של כל תרביות הלילה לערך הנמוך ביותר עבור קבוצת הזנים הנבדקים. לשם כך, קבע את נפח התרבות הדרוש לדילול התרבות ל- OD600 הנמוך ביותר בנפח כולל של 1 מיליליטר.
לדוגמה, אם לתרבית יש OD600 של 3 וה-OD600 הנמוך ביותר עבור קבוצת הזנים הוא 2.5, בצע את החישוב הבא, שיביא ל-0.833 מיליליטר כנפח התרבות הדרוש. מניחים 0.833 מיליליטר תרבית בצינור מיקרופוגה. לאחר מכן, חשב את כמות ה-LB בתוספת NTBC או LB בתוספת DMSO הדרושה כדי להביא את נפח התרבות ל-1 מיליליטר. בדוגמה זו, הכמות תהיה 0.167 מיליליטר. מערבבים על ידי מערבולת.
כדי לשמור על תרביות בריכוז קבוע של NTBC או DMSO, בצע דילול סדרתי פי 10 של תרביות הלילה המנורמלות ב-PBS בתוספת NTBC או PBS בתוספת DMSO. צור פתרונות מלאי של PBS בתוספת NTBC ו-PBS בתוספת DMSO להגדיל או להקטין, תלוי כמה זנים נבדקים.
עבור סט אחד של דילולים לזן אחד, ערבבו 300 מיקרומולר של NTBC או נפח שווה ערך של DMSO עם PBS כדי להפיק נפח כולל של 720 מיקרוליטר. הוסף 90 מיקרוליטר של PBS בתוספת NTBC או PBS בתוספת DMSO לצינורות המיקרופוגה המתאימים המסומנים עבור 10 למינוס 1 עד 10 למינוס 7 דילולים סדרתיים. הוסף 10 מיקרוליטר תרבית ל -10 המתאים לצינור הדילול מינוס 1.
מערבבים על ידי מערבולת, ומעבירים 10 מיקרוליטר מהדילול של 10 למינוס 1 לצינור הדילול של 10 למינוס 2. החלפת קצות פיפטה בין דילול, חזור על הפעולה עד לביצוע כל הדילול.
הבחין ב-5 מיקרוליטרים של 10 עד מינוס 3 עד 10 עד מינוס 7 דילולים על לוחות LB בתוספת מי חמצן בשכפול עבור כל זן. השתמש בקצה פיפטה אחד אם הכתמים מצופים לרוב לדלל עד הכי פחות מדולל. אין להטות או להטות את הצלחת, עד שהנוזל התייבש לצלחת. דגרו את הצלחות בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס. למשך 24 עד 48 שעות, תלוי בזן. לאחר שהופיעו מושבות בגודל טוב, צלם את הלוחות באמצעות מצלמת CCD מעל טרנס-מאיר.