בדיקת היצמדות לשלב מוצק להערכת היווצרות ביופילם

0 צפיות4:07 דק' • July 8th, 2025

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

קח צלחת מרובת בארות עם תחתית שטוחה עם בארות המכילות חיידקים במצע גידול או חיידקים במצעי גידול בתוספת מלח מרה.

מלחי המרה גורמים ללחץ, גורמים לנזק לתאים ומשחררים DNA וחלבונים. ביומולקולות אלו מצפות את קרקעית הבאר, ומאפשרות לחיידקים השורדים להיצמד למשטח המוצק.

החיידקים המחוברים מתרבים, יוצרים מיקרו-מושבות ומייצרים משרה עצמית - או מולקולות איתות כימיות, המאפשרות תקשורת חיידקית.

תקשורת זו מעוררת חיידקים להתיישב וליזום ייצור של חומרים פולימריים חוץ-תאיים או EPS, וליצור ביופילם.

לאחר הדגירה, הסר את המדיה כדי לחסל חיידקים צפים חופשיים.

הכניסו כתם סגול קריסטל המקיים אינטראקציה עם הפפטידוגליקן של דופן התא החיידקי, ומעניק לו צבע סגול.

הסר כתם עודף וייבש. כיסוי עם אתנול כדי להמיס סגול קריסטל מדופן התא החיידקי, ולשנות את צבע התמיסה.

צבע עז יותר בבארות שטופלו במלח מרה מאשר בבארות לא מטופלות מאשר היווצרות ביופילם באמצעות היצמדות לשלב מוצק.

ראשית, סמן שני צינורות של 1.5 מיליליטר כ-TSB ו-TSB בתוספת BS. לאחר מכן, הוסף 1 מיליליטר של TSB או TSB בתוספת BS לצינורות המתאימים.

לאחר מכן, יש לחסן את הצינורות ב -20 מיקרוליטר תרבית לילה בדילול של 1:50. לאחר מכן, הוסף 130 מיקרוליטר של אמצעי בקרה לא מחוסנים לכל אחת משלוש הבארות בצלחת סטרילית, שקופה, בעלת תחתית שטוחה שטופלה בתרבית רקמות, 96 בארות. זה יהיה הפקד הריק.

הוסף 130 מיקרוליטר של תרבית מחוסנת לכל אחת משלוש הבארות. לאחר הוספת הבקרה והתרבית המחוסנת בבארות המתאימות, יש לדגור את צלחת 96 הבארות למשך 4 עד 24 שעות בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס באופן סטטי. לאחר סיום הדגירה, הגדר את הבקרה כריקה בקורא הצלחות.

לאחר מכן, שאפו את מדיום התרבות מכל באר. לאחר מכן שטפו בעדינות את הבארות פעם אחת עם 200 מיקרוליטר PBS סטרילי. לאחר הכביסה יש לשאוף את ה- PBS ולאחר מכן להפוך את הצלחת לייבוש למשך כ -20 דקות.

חשוב מאוד להקפיד על הסרה עדינה של המדיה ושטיפה עדינה כדי להבטיח שמטריצת ה-EPS לא תופרע.

לאחר מכן, הוסף 150 מיקרוליטר של 0.5% סגול קריסטל לכל אחת מבארות הניסוי והבקרה. לאחר מכן, דגרו את הצלחת למשך חמש דקות בטמפרטורת החדר. לאחר חמש דקות יש לשטוף את הבארות פעם אחת עם 400 מיקרוליטר מים מזוקקים. הוסף 200 מיקרוליטר מים מזוקקים כדי לשטוף את הבארות חמש פעמים. לאחר כל חמש השטיפות, הפוך את הצלחת ותן לה להתייבש לחלוטין, מוגן מפני האור.

על מנת להשיג תוצאות עקביות, חשוב שהדגימות ייבשו היטב לפני שתמשיך.

לאחר ייבוש הצלחת לחלוטין, השתמש ב -200 מיקרוליטר של אתנול 95% כדי להרחיק את הבארות. לאחר מכן השאירו את הצלחת על השייקר למשך 30 דקות בחום של 4 מעלות צלזיוס על מנת למנוע אידוי. לאחר 30 דקות, רשום את ה-OD540 בקורא הלוחות.

09:39

פלטפורמה של מבחנים אנטי biofilm המתאים לחקירת ספריות תרכובת טבעיות

סרטונים קשורים

0 צפיות

10:57

ייצור ביופילם ביומסה חיידקית גדולה יותר באמצעות מכשירי מיקרופלאט עמוק באר עמוקה צלחת PCR

סרטונים קשורים

0 צפיות

06:50

בדיקת הפחתה מסיסה המבוססת על טטרזוליום להערכת השפעת נוגדנים על ביופילמים של קנדידה טרופיקליס

סרטונים קשורים

0 צפיות

03:57

Biofilm microtiter תבשיל גיבוש Assay

סרטונים קשורים

0 צפיות

11:17

גישה חצי כמותי להערכת גיבוש biofilm באמצעות פיתוח המושבה מקומט

סרטונים קשורים

0 צפיות

01:19

הערכת היווצרות ביופילם חיידקי באמצעות מבחן קטיוני מבוסס צבע

סרטונים קשורים

0 צפיות

06:41

בדיקת ביופילם של צלחת יתד להקרנת חומרים אנטיבקטריאליים

סרטונים קשורים

0 צפיות

02:49

איתור פירוק ביופילם באמצעות בדיקת פיזור

סרטונים קשורים

0 צפיות

11:14

ויזואליזציה של ביופילמים ב קנדידה אלביקנס שימוש בהתקן Microfluidic אוטומטי

סרטונים קשורים

0 צפיות

10:05

מלח מרה-induced ביופילמים בתוך המעית פתוגנים: טכניקות וכימות

סרטונים קשורים

0 צפיות

עודכן לאחרונה: 22 אוגוסט 2026