22 ביוני 2012
שיטת לתרבות monolayer תא האנדותל לאורך כל פני השטח הפנימי של המכשיר 3D microfluidic עם כלי הדם בגודל הערוצים (<30 מיקרומטר) מתואר. זה במבחנה מודל microvasculature מאפשר לימוד אינטראקציות Biophysical בין כדוריות הדם, תאים אנדותל, וגורמים מסיסים מחלות המטולוגיות.
המטרה הכללית של פרוצדורה זו היא ליצור התקן מיקרופלואידי מצופה בתאי אנדותל. דבר זה מושג תחילה על ידי ייצור תבנית המיקרופלואידקה. השלב השני הוא יצירת תעלת ה-PDMS.
בשלב הבא, תאים אנדותליאליים נזרעים לתוך ההתקן. השלב הסופי הוא גידול התאים בתוך ההתקן. בסופו של דבר, התקני מיקרופלואידיקה מצופים בתאים אנדותליאליים משמשים להדגמת אינטראקציות בין-תאיות in vitro.
היתרון המרכזי של טכניקה זו על פני שיטות קיימות הוא שהיא מספקת לחוקר בקרה הדוקה על התנאים הביולוגיים והביופיזיקליים, והיא תואמת למיקרוסקופיה פלורסצנטית. למרות ששיטה זו יכולה לספק תובנות לגבי אינטראקציות ביופיזיקליות בין תאים במחלות המטולוגיות, ניתן להחילה גם על תופעות כגון ביולוגיה של לוקוציטים, גרורות סרטניות וביולוגיה של תאי גזע המטופויטיים. באופן כללי, אנשים שאינם מכירים את השיטה ייתקלו בקשיים, שכן יש לשלוט בתנאים באופן הדוק כדי להבטיח הצמדה מוצלחת של התאים.
כהכנה לייצור, נוצר מסך פוטומסקה על ידי הגשת תמונת תכנון בעזרת מחשב (CAD) של המכשיר המיקרופלואידי לספק מסכים חיצוני. עם קבלתו, המסך מורכב משכבת כרום על זכוכית סודה-סיד. במקרה זה, רוחב התעלה המיקרופלואידית הוא 30 microns.
כדי להתחיל בייצור של התקן המיקרופלואידי, נקו פרוסת סיליקון נקייה באמצעות תמיסת piranha למשך 15 דקות, ולאחר מכן שטפו במים דה-יוניים למשך 10 שניות. לאחר מכן, טבלו את פרוסת הסיליקון בחומצה הידרופלואורית למשך 30 שניות, ושטפו במים דה-יוניים למשך כ-10 שניות. בשלב הבא, באמצעות מכשיר spin coater, התיזו micro chem SU 8 20 25 photo resist על הפרוסה עד להגעה לגובה של 30 מיקרון, במהירות סיבוב של 3000 סל"ד.
הניחו את הפרוסה המצופה ב-SU 8 20 25 על פלטה חמה המכוונת ל-95 °C למשך חמש דקות כדי להסיר ממס עודף. לא מומלץ להשתמש בתנור בשלב זה. כעת, הניחו את מסכת הפוטו-ליתוגרפיה מעל הפרוסה וחשפו אותה לאור UV בתוך mask liner כדי לבצע קשירה צולבת (cross-link) של הפוטו-רזיסט SU 8 20 25.
לאחר הצלבת הקשירות, החזר את הפרוסה ללוח החימום בטמפרטורה של 95 °C למשך חמש דקות נוספות, כדי להאיץ עוד יותר את הפולימריזציה של הפוטורזיסט SU 8 20 25. לאחר מכן, טבול את הפרוסה במפתח SU eight, המורכב בעיקרו מ-P-G-M-E-A, למשך ארבע דקות.
פעולה זו תסיר את ה-SU 8 20 25 photoresist שאינו מקושר. שטפו את הפרוסה (wafer) שפותחה זה עתה ב-100% isopropyl alcohol למשך 10 שניות, ולאחר מכן יבשו באמצעות חנקן בלחץ, או על ידי השארת הממס להתאדות מהפרוסה במכסה מופעלת (fume hood) נקייה למשך מספר דקות. כעת, הדביקו את הפרוסה היבשה למרכז צלחת הפטרי באמצעות סרט הדבקה, תוך הקפדה להניח את הסרט בקצוות הפרוסה.
לבסוף, טפטפו בעזרת פיפט 500 µL של sigma coat על גבי הפרוסה. כסו את צלחת הפטרי במכסה, ולאחר מכן סובבו את הצלחת כדי להבטיח כיסוי מלא של הפרוסה. הסירו את המכסה והניחו לפרוסה להתייבש במשך מספר דקות עד שכל הממס יתאדה.
לאחר ערבוב הפולימר PDMS וחומר המקשה ביחס משקלי של 10 ל-1, יש להסיר בועות אוויר באמצעות דסיקטור ואקום למשך מספר דקות עד שעה, בהתאם לעוצמת מערכת הוואקום הזמינה. לאחר שכל בועות האוויר הוסרו, יש למזוג את התערובת לתוך הצלחת כך שהוופר ופני הצלחת יכוסו. זאת כדי ליצור שכבת PDMS בעובי של כחמישה מילימטרים.
בנוסף, צרו פיסת PDMS דקה וחלקה בעובי של מילימטר אחד. לאחר מכן, הרטיחו את התערובת בתנור בטמפרטורה של 60 °C למשך לילה. למחרת, השתמשו בסכין או בסקלפל כדי לחתוך מסביב לסיליקון (wafer) ולהוציא מספר התקני מיקרופלואידיקה מ-PDMS.
לאחר מכן, גזרו את הגיליון כדי לבודד את ההתקנים הבודדים. גזרו את גיליון ה-PDMS כך שיהיה מעט גדול יותר מההתקן המיקרופלואידי. כעת השתמשו במקדד ידני (pin vice), Harris unicorn או התקן דומה כדי ליצור חורי כניסה ויציאה בהתקן המיקרופלואידי.
בשלב הבא, נקה את פני השטח של ההתקן המיקרופלואידי ואת גליון ה-PDMS באמצעות סרט דביק (scotch tape). לאחר מכן, השתמש במנקה פלזמה כדי לחשוף את פני השטח של ההתקן המיקרופלואידי ואת גליון ה-PDMS לפלזמת חמצן למשך 30 שניות. פלזמת החמצן יוצרת מינים רהאקטיביים על פני השטח החשופים של ה-PDMS, אשר יוצרים קשר כימי כאשר הם מובאים למגע פיזי.
בשלב הבא, מלאו מזרק של 1 מיליליטר המצויד במחט קהה במידה 20 ב-50 מיקרוגרם למילליטר של Fibronectin מפלזמה אנושית ב-PBS, ולאחר מכן התאימו קטע צינורית מעל המחט. הכניסו פיסת צינורית דקה יותר לתוך הצינורית הראשונה כדי ליצור חיבור הדוק בלחץ בין שתי הצינוריות.
לאחר מכן, חברו את הקצה השני של צינורית הגומי הדקה יותר לכניסה של ההתקן המיקרופלואידי. הפילו לחץ על המזרק כדי למלא את התעלות לחלוטין בתמיסת פיברונקטין וליצור טיפה קטנה של 100 microliter בפתח היציאה, כדי להבטיח שהתעלות יישארו רטובות. כעת, הדגירו את ההתקן המיקרופלואידי באינקובטור לח בטמפרטורה של 37 degrees Celsius למשך 40 עד 60 דקות.
בעקבות הדגירה, חברו מזרק חדש מלא ב-PBS למחט בעלת הקצה התהום. הפעילו לחץ כדי לשטוף את המכשיר המיקרופלואידי ב-PBS. הכינו תרחיף של 500,000 עד 2 מיליון תאים למילליטר של תאי אנדותל של וריד טבורי אנושי, או hve, במצע גידול אנדותלי עם 8% dextran.
הוספה של dextran מגבירה את הסבירות שהתאים יהדבקו ויגדלו בהצלחה בתוך ההתקן המיקרופלואידי. מלאו מזרק נקי המצויד במחט בעלת קצה קהה ובצינור רחב יותר בתרחיף התאים, וחברו אליו קטע צינור ארוך יותר, באורך של כמעט מטר אחד. קריטי להבטיח שהצינור מותאם באופן הדוק כדי למנוע דליפות בחיבורים.
הזרמו את תמיסת התאים לתוך הפיתולים, תוך וידוא שאין בועות במזרק או באחד מהפיתולים, כדי למקסם את ביצועי המערכת. בשלב זה קריטי למנוע דליפות או חדירה של בועות למערכת. כל דליפה של תמיסה או נוכחות של בועות במצע תמנע התיישבות מוצלחת של תאי אנדותל.
לאחר שכל בועות האוויר הוסרו וכל אורך הפואובוּלה הוכשר עם תרחיף התאים, הניחו את המזרק על המשאבה וחברו את הקצה השני לכניסה של המיקרופלואידיקה. משאבת המזרקים ממוקמת באותו גובה של המכשיר המיקרופלואידי. קטע הפואובוּלה הארוך נגלגל בזהירות בתוך האינקובטור כדי להבטיח שהתאים והמצע יחוממו כראוי לפני הבאתם במגע עם המכשיר.
לאחר מכן, תרחיף התאים מוזרם אל תוך המכשיר המיקרופלואידי בקצב זרימה נפחית של 1.23 µL לדקה למשך שעתיים בטמפרטורה של 37 °C ו-5% CO2 במערכת שלנו. קצב זרימה נפחית של 1.23 µL לדקה תואם למהירות זרימה מרכזית של 1 mm/s בערוצים הקטנים ביותר. בשימוש בדם מלא, נתון זה מקריב מאמץ גזירה על הדופן של 1 dyne/cm² באותם ערוצים.
לאחר השלמת עירוי תרחיף התאים, השתמש באותה משאבת מזרקים ובצינור הארוך עם מזרק גדול יותר כדי להזרים מצע גידול טרי למשך שני עד שמונה ימים בקצב של 1.23 microliters per minute. כאשר השכבה החד-תאיית (monolayer) של התאים מגיעה לרמת ההצפיפות (confluence) הרצויה, הזרק דם או תרחיף תאים למערכת לצורך הניסוי. כאן מוצג ההתקן המיקרופלואידי לפני תהליך האנדותליזציה.
ההתקן המיקרופלואידי הוזן בצבע מאכל כדי להדגים את הגודל, קנה המידה והתכנון הכללי של ההתקן המדמה את פיזיולוגיית כלי הדם. מיקרוסקופיה בשדה בהיר חושפת אנדותליזציה של התקן מיקרופלואידי. תמונה זו צולמה פחות מ-48 שעות לאחר הזריעה באמצעות הפרוטוקול המתואר; טכניקת הפרפוזיה האופטימלית מאפשרת לתאי אנדותל לגדול באופן קונפלואנטי על פני כל השטח הפנימי של המערכת המיקרופלואידית.
בתוך 24 עד 48 שעות לאחר זריעת התאים. כפי שמוצג בתמונה קונפוקלית זו, גידול מיקרו-וסקולרי על שבב עם מיקרו-ערוצים מדמה את הגודל של 30 micron של ורידי פוסט-קפילריים, האתר שבו מתרחשים מרבית אירועי החסימה המיקרו-וסקולריים של אנמיה חלייתית. בניסוי זה, דם שלם מחולים בריאים מוזרם לתוך התקן של מיקרו-וסקולטורה על שבב בתנאים חסרי חמצן.
סרטון זה מראה כי זרימת הדם השלם במערכת המיקרופלואידיקה האנדותליאלית שלנו היא סדירה, חלקה ורציפה, ללא אזורים של חסימה במיקרו-תעלות. כאן, דם שלם מחולים עם מחלת אנמיה חרשית (sickle cell disease) מוזרק למכשיר שבב המדמה כלי דם זעירים (micro vasculature on a chip). בתנאי חסר חמצן (deoxygenated), נצפים שינויים משמעותיים בזרימת הדם, הכוללים חסימות מלאות במספר תעלות.
בעת ביצוע פרוצדורה זו, חשוב לזכור להימנע מהחדרת בועות אוויר בעת החלפת הפיתולות. המכשיר המוגמר תואם למיקרוסקופיה פלואורסצנטית וניתן להתאימו לבדיקות פלואורסצנציה מסורתיות. טכניקה זו סוללת את הדרך עבור המטולוגים ניסויים לביצוע ניסויים באמצעות תאים בודדים בסביבה ביופיזית והמודינמית מבוקרת.
ללא בועות.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מאמר זה מתאר שיטה לגידול שכבה אחת של תאי אנדותל במכשיר מיקרופלואידי עם תעלות בגודל של כלי דם מיקרווסקולריים. מודל in vitro זה מאפשר לחקור אינטראקציות בין תאי דם, תאי אנדותל וגורמים ממיסים במחלות המטולוגיות.
פלטפורמה מיקרופלואידית אנדותליאלית זו נותנת מענה לפער קריטי במחקר של מחלות המטולוגיות על ידי מתן שליטה מדויקת בתנאים המודינמיים וביופיזיקליים של מיקרו-כלי דם. היא מספקת מערכת in vitro הניתנת לשחזור לחקר אינטראקציות פתוגניות בין תאים לאנדותל תחת זרימה, ובכך תומכת בהסרת סיכונים מכניסטיים (de-risking) בתהליכי תיקוף מטרות ופיתוח בדיקות. המודל מגביר את הביטחון החזוי עבור מועמדים לטיפולים המטולוגים על ידי שחזור פתופיזיולוגיה בקנה מידה של וריקוציות פוסט-קפילריות הרלוונטית למשברים וסוקלוסיביים.
השיטה משתלבת ברצף הגילוי, החל מסריקת השערות על יעדים ועד לבדיקות יעילות פרה-קליניות, ובמיוחד עבור סוכנים המטולוגיים המכוונים להדבקה מיקרו-וסקולרית או להפעלה אנדותליאלית.