Name: סרטן שלפוחית השתן לדגם orthotopic גין משלוח לימודים (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-12-01T22:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 48 s
Description: למד שיטת השתלת תאי MB49 לשלפוחית השתן בעכברים באמצעות קטטריזציה לבדיקת טיפולים בסרטן. הפרוטוקול כולל הזרקת אדנו-וירוס ובדיקת ביטוי גנים באמצעות לוציפראז לפיתוח טיפולים גניים יעילים.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

עבודה זו נתמכה על ידי NIH R21 CA143505 לכריסטינה Voelkel-ג&#39;ונסון.

כל ההליכים כרוכים בבעלי חיים כבר נבדקו ואושרו על ידי הוועדה המוסדית טיפול בבעלי חיים ושימוש באוניברסיטה הרפואית של דרום קרוליינה. הפרוטוקול אושר תחת הקטגוריה D-USDA לכאב. 1. השתלת תאים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> יומיים לפני ביצוע ההליך, צלחת 1 x 10 6 MB49 תאים לתוך T-25 צלוחיות. השתמש DMEM גלוקוז הגבוה בתוספת 10% FBS (ואנטיביוטיקה, אם רוצה). בקבוק אחד מספיק לכל קבוצה של עד חמישה עכברים שיהיו מורדמת ומושתלות במקביל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ביום של ההליך, להכין טריפסין להחדרה על ידי דילול 0.25% טריפסין הכיתה סטרילי רקמת התרבות ל0.125% עם מדיום סטרילי בסיס DMEM (1:2 דילול). 1.2 מיליליטר מספיק עבור 10 עכברים. הנח בwaterbath 37 ° C כדי לאזן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Prewarm כרית חימום ולמקם אותו מתחת לnosecones של מערכת ההרדמה שיהיה בשימוש, כדי לספק isoflurane. הנח כרית סופגת נקייה על כרית החימום. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הנח עכברים לתוך תא האינדוקציה של מערכת ההרדמה ולגרום הרדמה עם isoflurane 3%. כאשר העכברים איבדו את הכרתו, אשר מאומתת על ידי אובדן של הבוהן קמצוץ רפלקס, להעביר אותם לnosecones. ודא שכל בעלי חיים הוא במצב שכיבה וממוקמים כראוי על כרית החימום כדי לשמור על טמפרטורת גוף. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להפחית את ריכוז isoflurane עד 2% כדי לשמור על הרדמה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> החל משחת עיניים לשני העיניים כדי למנוע התייבשות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שלב אופציונאלי: הסרת שיער בבטן. שיער בבטן התחתונה יש להסיר את אם in vivo bioluminescent הדמיה תבוצע. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> למרוח שכבה נדיבה של קרם מקריח, כגון Veet, ל1 הנמוך ביותר בריבוע של פרווה על הבטן, נזהר שלא ליצור קשר עם אברי המין החיצוני. לחכות 3 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסרת שיער על ידי לשפשף את האזור עם ספוג יבש, ולאחר מכן להשתמש בספוג לח כדי לנקות את העור. חזור פעם אחת, במידת הצורך. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לצנתר בשלפוחית ​​השתן <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשמן צנתר חדש, סטרילי 24 G ילדים ורידים עם ג&#39;ל סיכה nonirritating כגון KY. להסיר ולסלק את המחט. אם דליפה של נוזל סביב הקטטר היא בעיה נפוצה, כלומר. היא מתרחשת בתדירות גבוהה יותר מאשר באחד מעשרה עכברים, צנתרים גדולים שעם (20 G) יכולים לשמש. זה עשוי להיות שיקול חשוב בעכברים מבוגרים מ -8 שבועות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מחזיק את הרכזת של קטטר, השתמש באגודל ואצבע מורה של היד הנגדית שלך כדי להפיץ את הרגליים האחוריות של העכבר ולחשוף את meatus השופכה. הכנס בעדינות את הקטטר לתוך השופכה בזווית של ° 45, שינוי הזווית למקביל אחד עם הספסל כדי להכניס אותו באופן מלא. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר כניסה מלאה, להרים את הקטטר בעדינות, להשאיר אותו במקביל לספסל, וחזותי לאשר שהיא ממוקמת בשופכה ולא הנרתיק, אשר מתחתיה. אם למקם אותו כראוי, קטטר יהיה מסוגל להיות בserted באופן מלא מאז הנרתיק הוא קצר יותר מהשופכה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להפחית את ריכוז isoflurane עד 1%. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צרף טיפ לpipettor P200 ולהסיר את שתן משלפוחית ​​השתן על ידי יישום יניקה עד הסוף החיצוני של הקטטר. הסר את כל שתן שנותר מהרכזת של הקטטר. בטל שתן ולהשאיר קטטר במקום. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> זהירות פיפטה 80 μl 0.125% פתרון טריפסין לרכזת של קטטר, הימנעות בועות אוויר. צרף מזרק המלא באוויר 1 מיליליטר לרכזת קטטר ולדכא באיטיות את הבוכנה 0.1-0.2 מיליליטר, כדי לספק את טריפסין לתוך שלפוחית ​​השתן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השאר את המזרק והרכבת הקטטר במקום במשך 15 דקות. חזור על שלבים 1.8-1.11 עבור כל אחד מהעכברים מורדמים הנותרים (עד 4). המשך לשלב הבא בתקופת ההמתנה. רמז: בתחילה זה עשוי להיות מועיל למישהו אחר להכין את התאים (שלב 1.12). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן את תאי MB49 להשתלה. תאים היו מצופים ב1 x 10 6 לT-25 בקבוק 48 שעות לפני ההשתלה (שלב 1.1). <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את המדיה ולהוסיף 500 μl של טריפסין 0.25% לבקבוק. כאשר תאים לנתק להוסיף 5 מיליליטר של DMEM להשלים resuspend תאים. הסרת aliquot 50 μl לספור, ו צנטריפוגות השאר על 1,000 סל&quot;ד למשך 5 דקות. במהלך שלב צנטריפוגה ימשיך צעדי 1.12.2 ו1.12.3. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ספירת התאים באמצעות hemocytometer. לחשב את התאים / מיליליטר. ואז לחשב את הנפח הדרוש כדי להביא את התא גלולה ל4 x 10 6 מיליליטר תאים / (2 x 10 5 תאים לכל 50 μl). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> יוצקים את supernatant מתאי centrifuged וresuspend את הכדור במדיום DMEM בסיס שימוש בנפח הנדרש ללהשעות תאים ל4 x 10 6 מיליליטר תאים / (כפי שמחושב בשלב 1.12.2). לשמור על תאים בטמפרטורת חדר. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כאשר מגיעה לנקודת זמן 15 דקות לטיפול טריפסין של שלפוחיות, לנתק את המזרק המלא באוויר מקטטר עוזב את הקטטר במקום. טריפסין בילה יהיה נורמליly יזרום חזרה החוצה באמצעות הצנתר. הסר את כל טריפסין שנותר משלפוחית ​​השתן על ידי שאיבה עם pipettor P200 כמו בשלב 1.9 לעיל וזורקים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מייד פיפטה 50 μl של השעיה תא MB49 לרכזת של הקטטר. צרף את המזרק המלא באוויר 1 מיליליטר לרכזת של קטטר ולספק את התאים לשלפוחית ​​השתן על ידי מדכא באיטיות את הבוכנה 0.1-0.2 מיליליטר. חזור על שלב זה עד ארבע פעמים נוספות כדי להשתיל את כל חמשת העכברים. לבטל את כל תאים שאינם בשימוש. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השארת ההרכבה קטטר-המזרק במקום, לאפשר לתאים לשכון בשלפוחית ​​השתן ל50 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעדינות למשוך את ההרכבה קטטר-מזרק מהשופכה. הפעל את ריכוז isoflurane לאפס ולעבור כל עכבר סנטימטר או שניים מnosecone להתאושש על כרית החימום. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כאשר עכבר חזר רפלקס ליישרו, להחזיר אותו לכלוב שלה. </li></ol> 2. משלוח שלפוחית ​​של adenovirus (8 ימים לאחר ההשתלה של תאים) </p&gt; זהירות: חלק זה של הפרוטוקול משתמש adenovirus, שהוא גורם מזהם וצריך להיות מטופלים תחת הנחיות קפדניות BSL2 (http://oma.od.nih.gov/manualchapters/intramural/3035/). כל הפעולה המתבצעת באמצעות חומרים מזהמים שאושרה על ידי ועדת בטיחות ביולוגית המוסדית של האוניברסיטה הרפואית של דרום קרוליינה. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שמונה ימים לאחר השתלה בעכברים עם תאי MB49, לבדוק להמטוריה. לאסוף את חיות פרט על פיסת נייר סופג לבנה ולחץ בעדינות על הבטן כדי למחוק טיפות של שתן על גבי הנייר. שתן שהוא ורוד לאדום מציין המטוריה והוא סימן לכך שגידולים הקימו. שיעור מיצוי גידול הוא 80% לפחות ועם טכניקה מצוינת יכול להיות גבוהה ככל 100%. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להפשיר מניית adenoviral על קרח ולדלל עד 10 9 PFU/50 μl (2 x 10 10 PFU / מיליליטר) בסטרילי, בטמפרטורת חדר PBS. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הרדימי עכברים כפי שמתואר ב1.3-1.6 שלבים שלעיל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לצנתר עכברים כמתואר בשלבי 1.8 ולהסיר שתן כמו בשלב 1.9 </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר השתן מוסר, פיפטה מייד 50 μl של השעיה וירוס לרכזת של הקטטר. צרף את המזרק המלא באוויר 1 מיליליטר לרכזת של קטטר ולספק את הווירוס לשלפוחית ​​השתן על ידי מדכא באיטיות את הבוכנה 0.1-0.2 מיליליטר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השארת ההרכבה קטטר-המזרק במקום, לאפשר לווירוס לשכון בשלפוחית ​​ל40 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעדינות למשוך את ההרכבה קטטר-מזרק מהשופכה, וזורקים ל10% פתרון אקונומיקה כדי להשבית כל וירוס שנותר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפעל את ריכוז isoflurane לאפס ולעבור כל עכבר סנטימטר או שניים מnosecone להתאושש על כרית החימום. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כאשר עכבר חזר רפלקס ליישרו, להחזיר אותו לכלוב שלה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מארק כלובים כדי לציין עכברים שכבר החדירו עם adenovirus. וירוס יהיה לשפוך לתוך כלי מיטה הכלוב במשך כמה ימים וכל הכלובים והמצעים חייבים להיותטיפל וחיטוי כראוי. </li></ol>

<ol><li>Siegel, R., Naishadham, D., Jemal, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cancer+statistics%2C+2012%5BTitle%5D)+AND+%22CA+Cancer.+J.+Clin%22%5BJournal%5D)">Cancer statistics, 2012.</a> CA Cancer. J. Clin. 62 (1), 10-29 (2012).</li>
<li>Seager, C. M., Puzio-Kuter, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intravesical+delivery+of+rapamycin+suppresses+tumorigenesis+in+a+mouse+model+of+progressive+bladder+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Prev.+Res%22%5BJournal%5D)">Intravesical delivery of rapamycin suppresses tumorigenesis in a mouse model of progressive bladder cancer.</a> Cancer Prev. Res. 2 (12), 1008-1014 (2009).</li>
<li>Chodak, G. W., Shing, Y., Borge, M., Judge, S. M., Klagsbrun, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Presence+of+heparin+binding+growth+factor+in+mouse+bladder+tumors+and+urine+from+mice+with+bladder+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Presence of heparin binding growth factor in mouse bladder tumors and urine from mice with bladder cancer.</a> Cancer Res. 46 (11), 5507-5510 (1986).</li>
<li>De Boer, E. C., Teppema, J. S., Steerenberg, P. A., De Jong, W. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retrovirus+type+C+in+the+mouse+bladder+carcinoma+cell+line+MBT-2%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Urol%22%5BJournal%5D)">Retrovirus type C in the mouse bladder carcinoma cell line MBT-2.</a> J. Urol. 163 (6), 1999-2001 (2000).</li>
<li>Lodillinsky, C., Rodriguez, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Novel+invasive+orthotopic+bladder+cancer+model+with+high+cathepsin+B+activity+resembling+human+bladder+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Urol%22%5BJournal%5D)">Novel invasive orthotopic bladder cancer model with high cathepsin B activity resembling human bladder cancer.</a> J. Urol. 182 (2), 749-755 (2009).</li>
<li>Jurczok, A., Fornara, P., Soling, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioluminescence+imaging+to+monitor+bladder+cancer+cell+adhesion+in+vivo%3A+a+new+approach+to+optimize+a+syngeneic%2C+orthotopic%2C+murine+bladder+cancer+model%5BTitle%5D)+AND+%22BJU+Int%22%5BJournal%5D)">Bioluminescence imaging to monitor bladder cancer cell adhesion in vivo: a new approach to optimize a syngeneic, orthotopic, murine bladder cancer model.</a> BJU Int. 101 (1), 120-124 (2008).</li>
<li>Brocks, C. P., Buttner, H., Bohle, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inhibition+of+tumor+implantation+by+intravesical+gemcitabine+in+a+murine+model+of+superficial+bladder+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Urol%22%5BJournal%5D)">Inhibition of tumor implantation by intravesical gemcitabine in a murine model of superficial bladder cancer.</a> J. Urol. 174 (3), 1115-1118 (2005).</li>
<li>Wu, Q., Esuvaranathan, K., Mahendran, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monitoring+the+response+of+orthotopic+bladder+tumors+to+granulocyte+macrophage+colony-stimulating+factor+therapy+using+the+prostate-specific+antigen+gene+as+a+reporter.+Clin%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Monitoring the response of orthotopic bladder tumors to granulocyte macrophage colony-stimulating factor therapy using the prostate-specific antigen gene as a reporter. Clin.</a> Cancer Res. 10 (20), 6977-6984 (2004).</li>
<li>Wu, Q., Mahendran, R., Esuvaranathan, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nonviral+cytokine+gene+therapy+on+an+orthotopic+bladder+cancer+model%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Nonviral cytokine gene therapy on an orthotopic bladder cancer model.</a> Clin. Cancer Res. 9 (12), 4522-4528 (2003).</li>
<li>Bonfil, R. D., Russo, D. M., Binda, M. M., Delgado, F. M., Vincenti, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Higher+antitumor+activity+of+vinflunine+than+vinorelbine+against+an+orthotopic+murine+model+of+transitional+cell+carcinoma+of+the+bladder%5BTitle%5D)+AND+%22Urol.+Oncol%22%5BJournal%5D)">Higher antitumor activity of vinflunine than vinorelbine against an orthotopic murine model of transitional cell carcinoma of the bladder.</a> Urol. Oncol. 7 (4), 159-166 (2002).</li>
<li>Bohle, A., Jurczok, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inhibition+of+bladder+carcinoma+cell+adhesion+by+oligopeptide+combinations+in+vitro+and+in%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Inhibition of bladder carcinoma cell adhesion by oligopeptide combinations in vitro and in.</a> 167 (1), 357-363 (2002).</li>
<li>Gunther, J. H., Jurczok, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimizing+syngeneic+orthotopic+murine+bladder+cancer+%28MB49%29%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Optimizing syngeneic orthotopic murine bladder cancer (MB49).</a> Cancer Res. 59 (12), 2834-2837 (1999).</li>
<li>Gunther, J. H., Frambach, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+acetylic+salicylic+acid+and+pentoxifylline+on+the+efficacy+of+intravesical+BCG+therapy+in+orthotopic+murine+bladder+cancer+%28MB49%29%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Urol%22%5BJournal%5D)">Effects of acetylic salicylic acid and pentoxifylline on the efficacy of intravesical BCG therapy in orthotopic murine bladder cancer (MB49).</a> J. Urol. 161 (5), 1702-1706 (1999).</li>
<li>Dobek, G. L., Godbey, W. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+orthotopic+model+of+murine+bladder+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">An orthotopic model of murine bladder cancer.</a> J Vis Exp. (48), (2011).</li>
<li>Tham, S. M., Ng, K. H., Pook, S. H., Esuvaranathan, K., Mahendran, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tumor+and+microenvironment+modification+during+progression+of+murine+orthotopic+bladder+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Dev.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Tumor and microenvironment modification during progression of murine orthotopic bladder cancer.</a> Clin. Dev. Immunol. 2011, 865684(2011).</li>
<li>Seow, S. W., Cai, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lactobacillus+rhamnosus+GG+induces+tumor+regression+in+mice+bearing+orthotopic+bladder+tumors%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Sci%22%5BJournal%5D)">Lactobacillus rhamnosus GG induces tumor regression in mice bearing orthotopic bladder tumors.</a> Cancer Sci. 101 (3), 751-758 (2009).</li>
<li>Mangsbo, S. M., Ninalga, C., Essand, M., Loskog, A., Totterman, T. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CpG+therapy+is+superior+to+BCG+in+an+orthotopic+bladder+cancer+model+and+generates+CD4%2B+T-cell+immunity%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunother%22%5BJournal%5D)">CpG therapy is superior to BCG in an orthotopic bladder cancer model and generates CD4+ T-cell immunity.</a> J. Immunother. 31 (1), 34-42 (2008).</li>
<li>Loskog, A. S., Fransson, M. E., Totterman, T. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((AdCD40L+gene+therapy+counteracts+T+regulatory+cells+and+cures+aggressive+tumors+in+an+orthotopic+bladder+cancer+model%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">AdCD40L gene therapy counteracts T regulatory cells and cures aggressive tumors in an orthotopic bladder cancer model.</a> Clin. Cancer Res. 11 (24 Pt 1), 8816-8821 (2005).</li>
<li>Loskog, A., Ninalga, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimization+of+the+MB49+mouse+bladder+cancer+model+for+adenoviral+gene+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim%22%5BJournal%5D)">Optimization of the MB49 mouse bladder cancer model for adenoviral gene therapy.</a> Lab Anim. 39 (4), 384-393 (2005).</li>
<li>Bockholt, N. A., Knudson, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anti-Interleukin-10R1+Monoclonal+Antibody+Enhances+Bacillus+Calmette-Guerin+Induced+T-Helper+Type+1+Immune+Responses+and+Antitumor+Immunity+in+a+Mouse+Orthotopic+Model+of+Bladder+Cancer%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Urol%22%5BJournal%5D)">Anti-Interleukin-10R1 Monoclonal Antibody Enhances Bacillus Calmette-Guerin Induced T-Helper Type 1 Immune Responses and Antitumor Immunity in a Mouse Orthotopic Model of Bladder Cancer.</a> J. Urol. 187 (6), 2228-2235 (2012).</li>
<li>Watanabe, F. T., Chade, D. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Curcumin%2C+but+not+Prima-1%2C+decreased+tumor+cell+proliferation+in+the+syngeneic+murine+orthotopic+bladder+tumor+model%5BTitle%5D)+AND+%22Clinics%22%5BJournal%5D)">Curcumin, but not Prima-1, decreased tumor cell proliferation in the syngeneic murine orthotopic bladder tumor model.</a> Clinics. 66 (12), 2121-2124 (2011).</li>
<li>Chade, D. C., Andrade, P. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Histopathological+characterization+of+a+syngeneic+orthotopic+murine+bladder+cancer+model%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+Braz.+J.+Urol%22%5BJournal%5D)">Histopathological characterization of a syngeneic orthotopic murine bladder cancer model.</a> Int. Braz. J. Urol. 34 (2), 220-226 (2008).</li>
<li>Luo, Y., Chen, X., O'Donnell, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+prostate+specific+antigen+to+measure+bladder+tumor+growth+in+a+mouse+orthotopic+model%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Urol%22%5BJournal%5D)">Use of prostate specific antigen to measure bladder tumor growth in a mouse orthotopic model.</a> J. Urol. 172, 2414-2420 (2004).</li>
<li>Zhang, Z., Xu, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+therapeutic+potential+of+SA-sCD40L+in+the+orthotopic+model+of+superficial+bladder+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Oncol%22%5BJournal%5D)">The therapeutic potential of SA-sCD40L in the orthotopic model of superficial bladder cancer.</a> Acta Oncol. 50 (7), 1111-1118 (2011).</li>
<li>Kohno, S., Luo, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Herpes+simplex+virus+type+1+mutant+HF10+oncolytic+viral+therapy+for+bladder+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Urology%22%5BJournal%5D)">Herpes simplex virus type 1 mutant HF10 oncolytic viral therapy for bladder cancer.</a> Urology. 66 (5), 1116-1121 (2005).</li>
<li>Kikuchi, E., Menendez, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Highly+efficient+gene+delivery+for+bladder+cancers+by+intravesically+administered+replication-competent+retroviral+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Highly efficient gene delivery for bladder cancers by intravesically administered replication-competent retroviral vectors.</a> Clin. Cancer Res. 13 (15 Pt 1), 4511-4518 (2007).</li>
<li>Siemens, D. R., Austin, J. C., See, W. A., Tartaglia, J., Ratliff, T. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+gene+transfer+efficiency+by+viral+vectors+to+murine+bladder+epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Urol%22%5BJournal%5D)">Evaluation of gene transfer efficiency by viral vectors to murine bladder epithelium.</a> J. Urol. 165 (2), 667-671 (2001).</li>
<li>Siemens, D. R., Crist, S., Austin, J. C., Tartaglia, J., Ratliff, T. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+viral+vectors%3A+gene+transfer+efficiency+and+tissue+specificity+in+a+bladder+cancer+model%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Urol%22%5BJournal%5D)">Comparison of viral vectors: gene transfer efficiency and tissue specificity in a bladder cancer model.</a> J. Urol. 170 (3), 979-984 (2003).</li>
<li>Black, P. C., Shetty, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Validating+bladder+cancer+xenograft+bioluminescence+with+magnetic+resonance+imaging%3A+the+significance+of+hypoxia+and+necrosis%5BTitle%5D)+AND+%22BJU+Int%22%5BJournal%5D)">Validating bladder cancer xenograft bioluminescence with magnetic resonance imaging: the significance of hypoxia and necrosis.</a> BJU Int. 106 (11), 1799-1804 (2010).</li>
</ol>

החוקרים מצהירים כי אין להם אינטרסים כלכליים מתחרים.

המתודולוגיה העיקרית שתוארה בפרוטוקול זה היא צנתור של שלפוחיות עכבר, שבה יש יישומים רחבים להחדרה של תאים, או כל סוכן שנועד למשלוח מקומי לאפיתל שלפוחית ​​השתן. הפרוטוקול הספציפי שתואר לעיל כבר מותאם למחקרים לטווח קצר (~ 10 ימים). להשתיל את המספר מדויק של תאים הוא קריטי, שכן מספר תא גבוה יותר יגרום ליותר צמיחה מהירה של גידול ואולי אובדן של בעלי חיים עקב נטל גידול גדול. באמצעות 200,000 MB49 תאים להחדרה עשויה לדרוש הרדמת חסד עד 25% מבעלי החיים על ידי היום 14 בשל נטל גידול מוגזם. מניסיו...

סרטן שלפוחית ​​השתן הוא הסרטן השני בשכיחותו בדרכי השתן ואברי מין עם כמעט 75,000 מקרים חדשים ו -15,000 מקרי מוות צפוי ב2012 1. שיעור גבוה של הישנות דורש מעקב לאורך כל חייהם, מה שהופך את סרטן שלפוחית ​​השתן אחד מסוגי הסרטן היקרים ביותר לטיפול. סרטן שלפוחית ​​השתן שפלש לשכבת השריר עלול לשלוח גרורות לכבד, ריאות או עצם באמצעות מערכת הלימפה. טיפול multimodal של תוצאות גידולים מתקדמים בהישרדות רק 20-40% אחרי 5 שנים. לכן, אסטרטגיות טיפול יעילות שנועדו להקטין את ההישנות והתקדמות של הסרטן השטחי של שלפוחית ​​השתן, כמו גם לשפר את התוצאות טיפוליות בחולים עם מחלה מתקדמת יש צורך דחוף. פיתוח הרפוי רומן מחייב מודלים פרה כדי להעריך את היעילות הבאה הערכה ראשונית במבחנה. Microenvironment הגידול משמעותי יכול להשפיע על התפתחות סרטן והיענות, אשר מדגישה את הצורך בpreclinicדגמי אל שבגידולים להתעורר או ניתן להקים באיבר המוצא. גישה אחת היא הפיתוח של מודלים מהונדסים שבו גידולים להתעורר באופן ספונטני או יכולים להיגרם באופן איבר ספציפי. לאחרונה פרוטוקול מצוין של מודל בסרטן שלפוחית ​​השתן מהונדס כבר פורסם 2. החסרון של מודלים מהונדסים הוא שגידולים נוטים להתפתח באיטיות ועם פחות אחיד מרצוי. בנוסף, העלות של שמירה על מושבת רבייה צריכה להילקח בחשבון. אלטרנטיבה למודלים מהונדסים היא השתלת orthotopic של תאים סרטניים, אשר יש את היתרון של מסגרות זמן קצר להקמת גידול בעכברים זמינים מסחרי. אמנם ניתן לגדל כמה שורות תאי סרטן שלפוחית ​​השתן אנושיות orthotopically (אנחנו השתמשנו בהצלחה UM-UC-3), זה עשוי להיות רצוי להקים גידולים בעכברים עם מערכת חיסון. שתי שורות תאי סרטן שלפוחית ​​השתן Murine, אשר גדלות orthotopically הן MBT-2 וMB49 3. מאז MBT-2 תאים מזוהמים במשכפליםהקלד רטרווירוס C 4, בחרנו MB49 תאים ללימודים שלנו. חשוב לציין כי MB49 תאים היו מבודדים מעכבר זכר והשתלות orthotopic הן מסיבות אנטומיות שבוצעו בעכברים ממין נקבה. זו יש את היתרון של זיהוי קל של התאים המושתלים על ידי סמנים של כרומוזום Y, אבל חוסר ההתאמה בין המינים יכול להיות חסרון ללימודים חיסוניים. אפיתל שלפוחית ​​השתן הוא בשורה של שכבת glycosaminoglycan (GAG), המתפקדת כמחסום לזיהום על ידי מיקרואורגניזמים. מכשול זה יכול גם להפריע להשתלה של תאי גידול ומספר שיטות פותחו כדי להתגבר על קושי זה (טבלת 1). Electrocautery כבר נעשה שימוש נרחב כאמצעי פיזי כדי לשבש את שכבת GAG 5-13 ולאחרונה electrocautery הוכחת בפרוטוקול שפורסמה ב14 יופיטר. עם זאת, יש יחידת electrocautery לא תהיה זמינה, אמצעים כימיים כדי להרוס את Gגם שכבת AG כגון כסף חנקה או פולי-L-ליזין ניתן להשתמש בם 15-24. גידולים מוקמים ביעילות על ידי חשיפה קצרה של שלפוחית ​​השתן לנפח קטן של כסף חנקתי (5-10 μl, 0.15-1.0 M, ~ 10 שניות) או קשר ארוך יותר עם ​​פולי-L-ליזין (של 0.1 מ&quot;ג / מיליליטר 100 μl עבור 20 דקות) (טבלה 1). כאן אנו מתארים שיטה שמשתמשת בטריפסין כדי להקל על השתלה של MB49 תאים. בניסיון לשפר את הגישות טיפוליות לטיפול בסרטן שלפוחית ​​השתן, טיפול גנטי צבר תשומת לב משמעותית. מנקודת המבט קלינית, סרטן שלפוחית ​​השתן הוא יעד אידיאלי לריפוי גנטי בשל נגישות קלה של האיבר והיכולת מקומי לספק את המטען. וקטורים ויראליים שנחקרו לריפוי גנטי של סרטן שלפוחית ​​השתן כוללים וירוס הרפס סימפלקס oncolytic 25, רטרווירוס 26, וירוס canarypox 27, וירוס vaccinia, AAV, וadenoviruזה 28. בחלקו השני של הפרוטוקול שלנו, אנו מתארים שיטה למסירת ויראלי כי הוא כמעט זהה להחדרה של התאים הסרטניים. עניין במעבדה שלנו הוא הפיתוח של גישות חדשות למסירת גן, אשר אנו מעריכים באמצעות פליטת אור באמצעות וקטור adenoviral שמבטא transgene לוציפראז. עם זאת, המתודולוגיה של צנתור שלפוחית ​​השתן יכולה לשמש למשלוח של סוכנים שונים, ולכן יש תחולה רחבה.

<table><tbody><tr><td> שם המגיב </td><td>החברה</td><td>מספר קטלוגי</td><td> הערות </td></tr><tr><td> 6-8 שבועות עכברים נקבות </td><td>מעבדות ג'קסון</td><td>שם זן: C57BL/6J מספר מלאי: 000664</td><td> </td></tr><tr><td> Trypsin* </td><td>MediaTech</td><td>MT25-053-CI</td><td> הושג באמצעות פישר</עמ> </td></tr><tr><td> DMEM* </td><td>MediaTech</td><td>MT10-017-CV</td><td> הושג באמצעות פישר</עמ> </td></tr><tr><td> FBS </td><td>Hyclone</td><td>SH30071.03</td><td> מופעל בחום </td></tr><tr><td> צלוחיות T25* </td><td>קורנינג קוסטאר</td><td>מס' קורנינג: 3056 פישר: 07-200-63</td><td> מתקבל באמצעות תאים של פישר </td></tr><tr><td> MB49 תאים </td><td>N/A</td><td>N/A</td><td> התקבל מד"ר בוהל (ראה הפניה11) </td></tr><tr><td> משחה וטרינרית Puralube* </td><td>Pharmaderm</td><td>Henry Schein Company No.:036090-6050059 Fisher: NC9676869</td><td> מושג באמצעות Fisher </td></tr><tr><td> קרם אפילציה: Veet </td><td>בית מרקחת מקומי</td><td></td><td> </td></tr><tr><td> חומר סיכה: K-Y ג'לי </td><td>בית מרקחת מקומי</td><td></td><td> </td></tr><tr><td> קטטרים* </td><td>Exel International</td><td>Exel International No.:26751; Fisher: 14-841-21</td><td> מתקבל באמצעות Fisher </td></tr><tr><td> Isoflurane </td><td>Terrell</td><td>NDC 66794-011-25</td><td> הושג באמצעות בית מרקחת של בית חולים </td></tr><tr><td> 1 מ"ל מזרקי שחפת עם קצה החלקה </td><td>Becton Dickinson</td><td>BD309659 Fisher: 14-823-434</td><td> </td></tr><tr><td> D-Luciferin </td><td>Gold Biotechnologies</td><td>L-123-1</td><td> </td></tr><tr><td> Ad-CMV-Luc </td><td>VectorBiolabs</td><td>1000; בקש הגברה בקנה מידה גדול וטיהור CsCl עבור שימוש בin vivo </td><td> חומר זיהומי הדורש הכלת BSL2 </td></tr><tr><td> Steady-Glo&nbsp; מערכת בדיקת לוציפראז </td><td>Promega</td><td>E2510 (10 מ"ל), E2520 (100 מ"ל), או E2550 (10 x 100 מ"ל)</td><td> </td></tr><tr><td colspan="4">*זמין דרך מספר ספקים</td></tr><tr><td colspan="4">EQUIPMENT</td></tr><tr><td> מערכת הרדמה </td><td>מערכות E-Z, Euthanex Corporation</td><td>מערכת הרדמה: EZ7000 מכשיר הנשמה של עכבר עם 5 יציאות: EZ109</td><td> מתקבל באמצעות Fisher </td></tr><tr><td> Xenogen IVIS 200 </td><td>Caliper Life Sciences</td><td>http://www.caliperls.com/products/preclinical-imaging/ivis-imaging-system-200-series.htm</td><td> </td></tr><tr><td> FLUOstar Optima </td><td>BMG Labtech</td><td>http://www.bmglabtech.com/products/microplate-reader/instruments.cfm?product_id=2</td><td> </td></tr></tbody></table>

סרטן שלפוחית ​​השתן לדגם orthotopic ג&#39;ין משלוח לימודים

An Orthotopic Bladder Cancer Model for Gene Delivery Studies

סרטן שלפוחית ​​השתן הוא הסרטן השני בשכיחותו בדרכי השתן ואברי המין וגישות טיפוליות חדשניות שיכול להפחית את ההישנות והתקדמות נדרשות. Microenvironment הגידול יכול להשפיע באופן משמעותי את התפתחות גידול ותגובה לטיפול. לכן לעתים קרובות רצוי לגדל תאים סרטניים באיבר שממנו הם מקורו. פרוטוקול זה מתאר מודל orthotopic של סרטן שלפוחית ​​השתן, שבו תאי סרטן שלפוחית ​​השתן עכבריים MB49 הם החדירו לתוך שלפוחית ​​השתן באמצעות צנתור. השתלת תאים סרטניים מוצלחת במודל זה דורשת שיבוש של שכבת glycosaminoglycan מגן, שיכול להתבצע על ידי אמצעים פיזיים או כימיים. בפרוטוקול שלנו מטפל בשלפוחית ​​השתן עם טריפסין לפני החדרת תא. גם צנתור של שלפוחית ​​השתן יכול לשמש כדי לספק תרופות פעם הגידולים מבוססים. פרוטוקול זה מתאר את המסירה של מבנה adenoviral שמבטא את גן כתב לוציפראז. בעוד oפרוטוקול ur כבר מותאם למחקרים לטווח קצר ומתמקד במסירת הגן, יש לו את המתודולוגיה של צנתור שלפוחית ​​השתן עכבר יישומים רחבים.

המטוריה הוא ציין כמעט בכל עכברים תוך 8 ימים לאחר ההשתלה של 200,000 MB49 תאים. כפי שניתן לראות באיור 1, משקל שלפוחית ​​השתן יותר מאשר מכפיל מ34.7 ± מ&quot;ג 3.3 (טווח 31-37 מ&quot;ג, n = 4) בnontumor (טווח 77-120 מ&quot;ג, n = 10) נושאות עכברים ל87.5 ± 19.2 מ&quot;ג בעכברים ש כבר מושתל עם MB49 תאים. במונחים של משלוח הגן, מצאנו כי הדמיה עכברים 24 שעות לאחר החדרה נגיפית תשואות אות חזקה יותר לאחר 48 שעה (איור 2). משלוח adenoviral הוא משתנה מאוד בין בע...

השתלה של תאים סרטניים לתוך האיבר ממוצא יכולה לשמש מודל פרה שימושי כדי להעריך את הטיפולים חדשניים. ניתן לגדל תאי קרצינומה של שלפוחית ​​השתן MB49 בתוך שלפוחית ​​השתן בעקבות החדרת שלפוחית. פרוטוקול זה מדגים צנתור של שלפוחית ​​השתן בעכבר לצורך השתלת גידול ואספקת adenoviral.

Bladder cancer is the second most common cancer of the urogenital tract and novel therapeutic approaches that can reduce recurrence and progression are ...

המטרה הכללית של פרוצדורה זו היא להפיק באופן עקבי ומהיר גידולים בשלפוחית השתן של עכברים, שניתן להשתמש בהם לאחר מכן לבדיקת טיפולים לסרטן של השלפוחית. דבר זה מושג תחילה על ידי הזרקת תאי סרטן לשלפוחית השתן של העכברים באמצעות קטטרזציה. שמונה ימים לאחר מכן, הקטטרזציה חוזרת על עצמה כדי להחדיר אדנווירוס המבטא גן דגלים של לוקיפראז.לאחר מכן, בפרק זמן של 24 שעות, נמדדת ביטוי הגנים הויראלי באמצעות בדיקת לוסיפראז (luciferase assay). התוצאות המתקבלות מראות את התנאים שבהם ניתן להשיג ביטוי גנים אופטימלי. הדגמה חזותית של טכניקה זו היא קריטית כיוון ששלבי הצנתור וההחדרה קשים ללימוד, ובשל הפוטנציאל לנזק לשלפוחית השתן או לגרימת דליפה של החומר שהוחדר.יומיים לפני ביצוע השתלת התאים בבקבוקי T 25, זרע $1 \times 10^6$ תאי MB 49 במצע DMEM עם גלוקוז גבוה המועשר ב-10% FBS ביום הפרוצדורה. הכן טריפסין להסרה על ידי דילול טריפסין סטרילי בדרגת תרבית רקמה בריכוז 0.25% באמצעות מצע DMEM בסיסי. הנח את התמיסה באמבט מים בטמפרטורה של 37 °C להשגת שיווי משקל; חמם מראש פד חימום והצב אותו תחת קוני האף של מערכת ההרדמה שתשמש למתן איזופלורן.הנח רפידה סופגת נקייה מעל מדף החימום לאחר הרדמת העכברים באמצעות 3%isof fluorine. בצע צביטה של בהונות כדי לוודא את רמת הסדציה. הנח אותם במצב שכיבה על הגב (supine) על מדף החימום וחבר קונו אף עם 2%isof fluorine.השתמשו בג'ל סיכוך שאינו גורם לגירוי כדי לשמן קטטר ורידי פדיאטרי סטרילי חד במידה 20 4G. לאחר מכן, הסירו והשליכו את המחט המחזיקה את בסיס הקטטר. השתמשו באגודל ובאצבע המורה של היד השנייה כדי להרחיב את רגליו האחוריות של העכבר ולחשוף את רירית השופכה.הכנס בעדינות את הקטטר לשופכה בזווית של 45 מעלות, ושנה את הזווית כך שתהיה מקבילה למשטח העבודה כדי להכניסו במלואו לאחר ההחדרה הראשונית. הרם את הקטטר בעדינות תוך שמירה עליו במקביל למשטח העבודה, ואשר ויזואלית שהוא ממוקם בשופכה ולא בנרתיק, שנמצא מתחתיה. חזור על הפעולה עם שאר העכברים המורדמים.לאחר מכן, הפחית את ריכוז ה-isof fluorine ל-1%. חבר טיפ לפיפט P 200 ושאב את השתן מהשלפוחית על ידי הפעלת יניקה בקצה החיצוני של הקתטר. הסר כל שארית שתן מחיבור הקתטר, לאחר מכן השלך את השתן והשאר את הקתטר במקומו. טפטף בזהירות 80 µL של תמיסת trips חמה לתוך חיבור הקתטר, תוך הימנעות מהיווצרות בועות אוויר.חברו מזרק עם אוויר בנפח של 1 CC למחבר של הקטטר והפעילו את הבוחן באיטיות. השריצו 0.1 עד 0.2 ccs כדי להחדיר את ה-trypsin אל תוך השלפוחית. השאירו את המזרק והקטטר במקומם למשך 15 דקות.להכנת תאים להשתלה. הסירו את המצע מתאי MB 49 שהושלכו בעבר והוסיפו לבקבוק 500 µL של 0.25% trypsin. כאשר התאים ניתקים, הוסיפו חמישה מיליליטר של DMEM מלא כדי לסuspended את התאים; הוציאו מנה של 50 µL לספירה וסובבו את השאר בצנטריפוגה ב-1000 RPM למשך חמש דקות.השתמשו ב-hemo cytometer כדי לספור את התאים ולחשב את מספר התאים למיליליטר, כמו גם את נפח המצע הדרוש כדי להביא את משקע התאים לריכוז של ארבעה כפול 10⁶ תאים לליטר. שפכו את הנוזל העליון מהתאים שסונטריגוזו ותלו את המשקע במצע בסיס DMEM.שמור את התאים בטמפרטורה של החדר. לאחר 15 דקות של טיפול ב-tripsin, נתק את מזרק האוויר מהקטטר והשאר את הקטטר במקומו. השתמש בפיפט P 200 כדי להסיר את שאריות ה-tripsin מהשלפוחית באמצעות שאיבה והשלך אותן באופן מיידי. העבר בפיפט 50 µL של תרחיף תאי MB 49 אל תוך פיית הקטטר.לאחר מכן, חברו את המזרק המלא באוויר בנפח 1 cc לחיבור של הקטטר והעבירו את התאים לשלפוחית על ידי לחיצה איטית על הבוכנה. 0.1 עד 0.2 cc. השאירו את מכלול המזרק והקטטר במקומו.המתינו 50 דקות כדי לאפשר לתאים להתיישב בשלפוחית השתן. לאחר מכן, הוציאו בעדינות את מכלול מזרק הקטטר מהשופכה. הפחיתו את ה-isof fluorine ל-0% ואפשרו לעכברים להתאושש מההרדמה על משטח החמימה.כאשר העכבר מחזיר לעצמו את רפלקס הכתיבה, החזירו אותו לכלובו. זהירות, פרוטוקול זה משתמש באדנווירוס, שהוא גורם זיהומי ויש לטפל בו תחת הנחיות קפדניות של BSL 2. כל ההליכים שבוצעו עם גורמים זיהומיים אושרו על ידי הוועדה לבטיחות ביולוגית המוסדית של האוניברסיטה לרפואה של דרום קרוליינה.שמונה ימים לאחר השתלת תאי MB 49 בעכברים, יש לבדוק הימצאות של המטוריה על ידי הנחת כל בעל חיים בנפרד על דף נייר סופג לבן ולחיצה עדינה על הבטן כדי לספוג טיפות שתן על הנייר. שתן שצבעו ורוד עד אדום מעיד על המטוריה ומהווה סימן לכך שהגידולים התבססו. יש להפשיר את מלאי האדנו-וירוס על קרח ולהשתמש ב-PBS סטרילי בטמפרטורת החדר כדי לדלל אותו לריכוז של 10⁹ pfu ל-50 µL. לאחר הרדמה והחדרת קטטר לעכברים וריקון השתן כפי שמתואר קודם לכן בסרטון זה, יש להעביר מיד בפיפט 50 µL של תגלי הוירוס לתוך חיבור הקטטר, ולאחר מכן לחבר מזרק מלא באוויר וללחוץ על הבוכנה כדי להעביר את הוירוס לשלפוחית השתן. תוך השארת מכלול הקטטר והמזרק במקומו, יש לאפשר לוירוס להישאר בשלפוחית השתן למשך 40 דקות.לאחר מכן, הוצא בעדינות את מכלול המזרק והקטטר מהשופכה והשלח אותו למסגרת של תמיסת אקוצניום (bleach) בריכוז 10% כדי להשבית כל שאריות של נגיף. המתן שהעכבר יתעורר מההרדמה לפני החזרתו לכלוב; סמן את הכלובים כדי לציין כי הונחלו לעכברים אדנווירוס. נגיפים יופרשו אל מצע הכלוב למשך מספר ימים, ועל כן יש לטפל בכל הכלובים ובמצעים ולחטא אותם כראוי. המטוריה נצפית כמעט בכל העכברים בתוך שמונה ימים לאחר השתלה של 200,000 תאי MB 49, כפי שמוצג כאן.משקל השלפוחית עולה ביותר מפי שניים, מ-34.7 ± 3.3 מיליגרם בעכברים ללא גידולים ל-87.5 ± 19.2 מיליגרם בעכברים שהושתלו תאי MB 49. מבחינת הובלת גנים, הדמיית עכברים 24 שעות לאחר ההחדרה הוויראלית מניבה אות חזק יותר מאשר לאחר 48 שעות. הובלה אדנוויראלית היא תנודתית מאוד בין בעלי חיים, דבר שיש להביאו בחשבון בעת תכנון גודל הקבוצה למטרות סטטיסטיות.במידה ומערכת לדימוי בעלי חיים קטנים אינה זמינה, גישה חלופית למדידת הביטוי של הגן החולף של הלוסיפראז היא להוציא ולהומוגנז את השלפוחית לצורך אנליזה in vitro, כפי שמוצג כאן. השוואה בין אנליזה in vivo באמצעות מערכת IVUS 200 לבעלי חיים קטנים לבין אנליזה in vitro באמצעות ערכת steady glow מצביעה על מתאם מצוין בין מערכי הנתונים. לאחר צפייה בסרטון זה, תשיגו הבנה טובה של אופן ביצוע קטטריזציה לשלפוחית של עכבר והחדרת תאי גידול או סוכנים טיפוליים.

an-orthotopic-bladder-cancer-model-for-gene-delivery-studies

Research

JoVE Journal

Medicine

רפואה

גידולים בשלפוחית ​​השתן הן הוקמה בשנת נקבות העכברים בצורה פולשנית דרך צנתור, צריבה המקומי, בעקבות הידבקות של תאים קרצינומה לאתרים לשרוף.

דגם orthotopic של סרטן שלפוחית ​​השתן Murine

הקמת מודל orthotopic גידול בשלפוחית ​​השתן להעריך את ההשפעות נוגדות הגידולים של סרנה נמסר intravesically וצמיחה ניטור הגידול והדמיה על ידי אולטרסאונד bioluminescent.

שלפוחית ​​השתן Orthotopic גידול דגם ואת הערכת טיפול סרנה השלפוחית

בסרטון זה אנו מתארים השתלה אורתוטופית של אורגנואידים מגידול בשלפוחית השתן בתרבית לתוך שלפוחית השתן כדי לחקור את תפקידה של סביבת האיברים בהתפתחות גידולים.

מודל אורגנואיד של גידול בשלפוחית השתן: שיטה להשתלה אורתוטופית של אורגנואידים משלפוחית השתן למושתלת שלפוחית השתן

בסרטון זה, אנו מתארים את ההליך התוך-שלפוחית של העברת תאים סרטניים לשלפוחית השתן של מודל עכבר. הליך זה מסייע ליצור מודל גידול אורתוטופי בשלפוחית השתן שניתן להשתמש בו לפיתוח אסטרטגיות טיפוליות.

מידול גידול אורתוטופי בשלפוחית השתן במודל עכבר: הליך למתן תוך שלפוחית של תאים סרטניים לשלפוחית השתן

הטכניקה המבוססת לחסן xenografts orthotopic פולשנית העיקרית לסרטן שלפוחית ​​השתן דורשת laparotomy והתגייסות של שלפוחית ​​השתן. הליך זה גורם תחלואה משמעותית בעכברים, הוא מאתגר מבחינה טכנית ודורש זמן רב. לפיכך, אנו פיתחנו דיוק גבוה, בגישה מלעורית ניצול הנחיית אולטרסאונד.

פולשנית הקמת Murine Orthotopic שלפוחית ​​השתן xenografts

פרוטוקול זה מתאר את הדור של גידולים בשלפוחית ​​השתן בעכברים orthotopic אצל נקבות עכברים C57BL / 6J ועל ניטור של הגידול.

מודל גידול Murine Orthotopic שלפוחית ​​השתן סרטן מערכת איתור

אנו מתארים שיטה למסירה של הדנ א פלסמיד לתאים urothelial של העכבר שלפוחית השתן ויוו דרך השופכה צנתור אלקטרופורציה. הוא מציע דרך נוחה ומהירה ליצירת מודלים העכבר autochthonous של מחלות שלפוחית השתן.

הרומן שיטת המסירה דנ א פלסמיד העכבר Urothelium שלפוחית השתן על ידי אלקטרופורציה

פרוטוקול זה מתאר את הדור של החולה הנגזר הנושא מודלים מבע על ידי פנים-ומבחינה משפטית הקניית תאים קרצינומה של תא ברמה גבוהה urothelial או פנים-rectally הזרקת תאים סרטניים המעי הגס לתוך סוכרת שמנים/חמור משולב כשל חיסוני (הנהון/SCID) עכברים לגידול הגידול הראשוני גרורות מתחת להשפעה של תאים סטרומה בצומת הלימפה, אשר מחקה את ההתקדמות של מחלות גרורתית האדם.

מטופל-נגזר אורתוטופית מודלים של תאים האדם Urothelial קרצינומה של סרטן המעי הגס ואת הגידול גרורות ספונטנית

פרוטוקול זה מספק צעדים ניסיוני מפורט כדי ליצור תלת מימדי תרבות מבחנה של אורגנואידים גידול שלפוחית השתן נגזר מסרטן שלפוחית השתן מורטין ממורדית. שיטות תרבות כולל פאסאייג ', הנדסה גנטית, והשתלת אורתוטופית של אורגנואידים הגידול מתוארים.

תרבות, מניפולציה, והשתלת אורתוגרטופית של שלפוחית השתן של העכבר הגידול אורגנואידים

פרוטוקול זה מתאר את תהליך הייצור והאפיון של אורגנואידים אורותליאליים של עכברים, תוך מחיקות בגנים בעלי עניין. השיטות כוללות קצירת תאי אורותל של עכבר, התמרת ex vivo עם אדנו-וירוס המניע את ביטוי Cre עם מקדם CMV, ואפיון in vitro כמו גם in vivo .

אקס ויוו מודל אורגנואידי של מחיקות גנים בתיווך אדנו-וירוס-Cre בתאי אורותל של עכבר

למד שיטת השתלת תאי MB49 לשלפוחית השתן בעכברים באמצעות קטטריזציה לבדיקת טיפולים בסרטן. הפרוטוקול כולל הזרקת אדנו-וירוס ובדיקת ביטוי גנים באמצעות לוציפראז לפיתוח טיפולים גניים יעילים.

סרטן שלפוחית השתן לדגם orthotopic ג'ין משלוח לימודים

גלה סרטונים נוספים

סרטן שלפוחית ​​השתן לדגם orthotopic ג'ין משלוח לימודים

גלה סרטונים נוספים

סרטן שלפוחית השתן לדגם orthotopic ג'ין משלוח לימודים