Name: שיטה פשוטה של אינטובציה ריאות המאוסות (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-03-21T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 6 s
Description: למד שיטה פשוטה לאינטובציה ריאות עכברים לצורך ונטילציה מכנית או התקנת נוזלים. השיטה משתמשת במקור אור סיב אופטי זול המאיר את הלוע ישירות ומאפשרת החלמה מהירה של העכברים לניסויים עתידיים.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

נתמך על ידי NIH HL-10342.

1. הכנה לנוהל אחד צריך לקבל 1 ולהכין את הפריטים הבאים: <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> קנולה. לאינטובציה של 20-35 עכברים גרמו, אנחנו משתמשים 1 אינץ או 1.5 ארוך, קטטר 20 המד הרביעי (BD Insylte, ניצוצות, MD או Jelco Optiva, קרלסבד, קליפורניה). קטטר סטרילי חדש יכול לשמש לכל עכבר, אבל גם צנתרים ניתן לעשות שימוש חוזר לאחר עיקור על ידי השרייה באתנול 70% בין הלילה. למרות שאף לא לוע קנה הנשימה של העכבר הוא נהלים סטריליים נאותים ניקיון, כולל שימוש בכפפות ומכשירים סטריליים, צריך להיות אחריו. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כבל הסיב האופטי. אנו משתמשים ≈ 70 סנטימטר של כבל אופטי 0.5 מ&quot;מ מאדמונד אופטיקה, אבל האורך הוא לא קריטי. חשוב לוודא סיבים יש מוחלק לקצה שלה, שכן לאחר חיתוך הכבל לאורך בתער, הקצה נשאר חד יחסית, וזה לא לוקח הרבה מאמץ כדי לחדור קיר של קנה הנשימה. עם זאת, זה אניקל מאוד להחליק קצה זאת על ידי לחיצה על סיבי 2 סנטימטר מקצה ואז עושה עיגולים קטנים לכמה שניות עם קצות הקצה לגעת בפיסת נייר 1000 לחרוק שמיר (ראה הדגמה בווידאו והאיור 1 של מקדונלד, et al. 10). הקצה השני מוחדר דרך פקק גומי. המטרה זו מושגת בקלות על ידי דחיפת 1 מחט 18-מד דרך הפקק, החדרת הסיב האופטי דרך קדח המחט, ואז משייכת המחט. פקק הגומי מחובר למקור אור הלוגן 150 ואט (למשל NCL-150, Volpi ארה&quot;ב, או מכל מקור אחר, או אור, אפילו פחות מ 150 ואט). חשוב להקפיד להשתמש בפקק עשוי מגומי סיליקון (או חומר עמיד חום אחר), שכן גומי או פקק רגיל עלול לשרוף כשנמצאים כל כך קרוב למקור האור החם. </li></ol> 2. ביצוע אינטובציה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ראה איורים 1 ו 2. הכנס כבל סיב אופטי לאhrough קטע קצר של צינור גומי סיליקון (≈ 0.8 המ&quot;מ x 4 מ&quot;מ מזהה OD, קול-פאלמר, EW-96410-13). לקשור את צינור הגומי הזה הדוק למדי, תוך מתן אפשרות לכבל הסיב האופטי להיות מותאם. החדרת צינורית סיליקון בנוחות בסוף luer של הצינורית פותרת את עמדת כבל הסיב האופטי בתוך הצינורית. להתאים את המיקום של כבל הסיב האופטי, כך שהוא מרחיב דרך צינורית ≈ 4 המ&quot;מ מול קצה הצינורית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הנח את העכבר מורדם בתמיכה אנכית, הושעה על ידי השיניים החותכות העליונות שלו (איור 3). רוב החוקרים למצוא את ההדמיה הטובה ביותר עם הצד הגחוני של העכבר מול עצמם. מאוד בעדינות לשלוף את הלשון ולהחזיק באגודל ובאצבע מורה. האצבע האמצעית מונחת בין הצוואר וגוף פלסטיק. מתיחה על הלשון עם האצבע ואגודל משמשת כדי לפתוח את הפה, וליישר את דרך אינטובציה, את הזווית של הראש מותאמת עם האצבע האמצעית מאחורי הצווארמוצג באיור 3. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> באמצעות כבל הסיב האופטי כמקור אור והיכרויות, לדחוף אותו דרך מייתרי קול באופן חזותי. אם את המייתרים אינם גלויים, משוך בעדינות קשה על הלשון בעזרת אצבע האמצעית כתמיכה. כאשר הוכנס, לקדם את צינורית ≈ 5 מ&quot;מ נוסף. ואז, נזהר מאוד שלא להעביר את הצינורית, לשלוף כבל הסיב האופטי. לשקר העכבר למטה ולאבטח את הצינורית עם חתיכת הסרט ולתמוך רכזת הצינורית על פיסת פלסטלינה (פלסטלינה), כפי שמוצג באיור 4. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ההליך בשלב 3 לא יכול להיות הפגין בקלות או אפילו למד, שכן הוא במבצע סולו. עם זאת, על ידי התאמות עדינות של המתיחה על הלשון והתמיכה מאחורי הראש כמעט כל מי שינסה את זה בקרוב תמצא את הדרך הנכונה למצב את העכבר כדי להמחיש את מייתרי קול. </li></ol>

<ol><li>Brown, R. H., Walters, D. M., Greenberg, R. S., Mitzner, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+method+of+endotracheal+intubation+and+pulmonary+functional+assessment+for+repeated+studies+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Appl.+Physiol%22%5BJournal%5D)">A method of endotracheal intubation and pulmonary functional assessment for repeated studies in mice.</a> J. Appl. Physiol. 87, 2362-2365 (1999).</li>
<li>Walters, D. M., Wills-Karp, M., Mitzner, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+cellular+profile+and+lung+function+with+repeated+bronchoalveolar+lavage+in+individual+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Genomics%22%5BJournal%5D)">Assessment of cellular profile and lung function with repeated bronchoalveolar lavage in individual mice.</a> Physiol. Genomics. 2, 29-36 (2000).</li>
<li>Rivera, B., Miller, S., Brown, E., Price, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+method+for+endotracheal+intubation+of+mice+and+rats+used+in+imaging+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Contemporary+Topics+in+Laboratory+Animal+Science+%2F+American+Association+for+Laboratory+Animal+Science%22%5BJournal%5D)">A novel method for endotracheal intubation of mice and rats used in imaging studies.</a> Contemporary Topics in Laboratory Animal Science / American Association for Laboratory Animal Science. 44, 52-55 (2005).</li>
<li>Hamacher, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microscopic+wire+guide-based+orotracheal+mouse+intubation%3A+description%2C+evaluation+and+comparison+with+transillumination%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animals%22%5BJournal%5D)">Microscopic wire guide-based orotracheal mouse intubation: description, evaluation and comparison with transillumination.</a> Laboratory Animals. 42, 222-230 (2008).</li>
<li>Spoelstra, E. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+and+simple+method+for+endotracheal+intubation+of+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animals%22%5BJournal%5D)">A novel and simple method for endotracheal intubation of mice.</a> Laboratory Animals. 41, 128-135 (2007).</li>
<li>Zhao, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+technique+for+retrograde+intubation+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Animal%22%5BJournal%5D)">A technique for retrograde intubation in mice.</a> Lab Animal. 35, 39-42 (2006).</li>
<li>Vergari, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+new+method+of+orotracheal+intubation+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22European+Review+for+Medical+and+Pharmacological+Sciences%22%5BJournal%5D)">A new method of orotracheal intubation in mice.</a> European Review for Medical and Pharmacological Sciences. 8, 103-106 (2004).</li>
<li>Vergari, A., Polito, A., Musumeci, M., Palazzesi, S., Marano, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Video-assisted+orotracheal+intubation+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animals%22%5BJournal%5D)">Video-assisted orotracheal intubation in mice.</a> Laboratory Animals. 37, 204-206 (2003).</li>
<li>Hastings, R. H., Summers-Torres, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+Laryngoscopy+in+Mice%5BTitle%5D)+AND+%22Contemporary+Topics+in+Laboratory+Animal+Science+%2F+American+Association+for+Laboratory+Animal+Science%22%5BJournal%5D)">Direct Laryngoscopy in Mice.</a> Contemporary Topics in Laboratory Animal Science / American Association for Laboratory Animal Science. 38, 33-35 (1999).</li>
<li>MacDonald, K. D., Chang, H. Y., Mitzner, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+improved+simple+method+of+mouse+lung+intubation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Appl.+Physiol%22%5BJournal%5D)">An improved simple method of mouse lung intubation.</a> J. Appl. Physiol. 106, 984-987 (2009).</li>
<li>Ewart, S. L., Levitt, R. C., Mitzner, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Respiratory+system+mechanics+in+mice+measured+by+end-inflation+occlusion%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Physiology%22%5BJournal%5D)">Respiratory system mechanics in mice measured by end-inflation occlusion.</a> Journal of Applied Physiology. 79, 560-566 (1995).</li>
<li>MacDonald, K. D., McKenzie, K. R., Mitzner, W., Zeitlin, P. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lung+Mechanics+in+Heterozygous+CF+Mice+after+Repeated+LPS+Dosing%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Respir.+Crit.+Care+Med%22%5BJournal%5D)">Lung Mechanics in Heterozygous CF Mice after Repeated LPS Dosing.</a> Am. J. Respir. Crit. Care Med. 175 (4), A930(2007).</li>
</ol>

אף אחד מהמחברים יש ניגודי עניינים כדי לגלות.

ההליך המתואר כאן יש מספר יתרונות. ראשית המנגנון הוא פשוט וזול יחסית .. הייצור של המכשיר אינו דורש שום כלים מיוחדים או ציוד יקר. השימוש בקטטר שמציג גם הוא מקור האור אומר שלעולם אינו רואה את פתיחת קנה הנשימה כintroducer מתקרב פתיחת קנה הנשימה. השימוש בintroducer 0.5 מ&quot;מ משמש גם כדי למזער את הטראומה שעלולה להתרחש עם כניסה ראשונית של צינורית רחבה יותר. נשי לב שבדיקה אופטית דומה זמינה מספק מסחרי (Braintree Scientific, Braintree, MA). המכשיר שלהם משתמש במקור אור על מצברים וסיבים או...

בשנת 1999, בראון ואח&#39;. פרסם מאמר המתאר שיטה לאינטובציה של ריאת 1 עכבר. כגון טכניקה יש תועלת רבה בתפקוד הריאתי עושה חוזר או שטיפת רונכואלוואולרית בעכברים בודדים במחקרים ארוכי טווח 2. מאז אותו המאמר מקורי, יש כבר כמה עיתונים אחרים שתארו גישות שונות לאינטובציה העכבר 3-9. בעוד כל השיטות האלה יכולות לשמש בהצלחה, הם בדרך כלל דורשים הכשרה או בעלות ניכרת. אחד הנושאים העיקריים עם אינטובציה כזו היא שככל שמתקרבת לגישות צינורית אינטובציה החדרה ממתינה קנה הנשימה, הצינורית עוצמה חוסמת את האור ולכן ההדמיה של בו הוא צריך ללכת. לפיכך, ההכנסה הופכת לעיוורת בזמן הקריטי ביותר. במאמר זה אנו מראים כיצד פשוט וזולים למיגור בעיה להדמיה זו, ובכך להבטיח אינטובציה המוצלחת עם אימונים או מועטים יחסיתניסיון.

<table border="1" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td> חומר </td><td> חברה </td><td> קטלוג # </td><td> הערה </td></tr><tr><td> צינורית אינטובציה </td><td> BD Insylte, ניצוצות, MD או Jelco Optiva, קרלסבד, קליפורניה </td><td></td><td> , 20-1-מד קטטר פנימה ארוך תוך ורידים (IV) </td></tr><tr><td> כבל סיב אופטי </td><td> אופטיקה אדמונד, רינגטון, NJ </td><td> # NT02-542 </td><td> כ אורכו של סיב אופטי 0.5 המ&quot;מ 2-רגל (סיבי פלסטיק תקשורת כיתה). קצה קצה הסיב שמוכנס לתוך קנה הנשימה צריך להיות מעוגל בעדינות על ידי החזקת סיבי ≈ 2 סנטימטר מקצה ואז עושים עיגולים קטנים בעת גרירת הקצה לכמה שניות על 1000-לחרוק נייר אמורי. </td></tr><tr><td> מקור אור </td><td> Volpi </td><td> NCL-150 </td><td> למרות שאנו משתמשים מקור 150-W הלוגן אור, כל מקור אור מקביל, גם עם הספק נמוך בהרבהניתן להשתמש בו. </td></tr><tr><td> פקק גומי סיליקון </td><td></td><td></td><td> פקק גומי סיליקון # 1 מתאים את מקור האור המשמש בהפגנה הזאת. מקורות אור שונים עשויים לדרוש גודל שונה. </td></tr><tr><td> צינור גומי סיליקון קטן </td><td> קול-פאלמר </td><td> EW-96410-13 </td><td> ≈ פיסת 1.5 סנטימטר של צינור גומי סיליקון (0.8 קוטר פנימי, קוטר חיצוני 4 מ&quot;מ) </td></tr><tr><td> עמדת תמיכה זוויתי </td><td></td><td></td><td> הוא constucted מפלקסיגלס, אבל כל חומר שיכול להיות מודבק חוט או חוט כדי להחזיק את העכבר בזווית כמעט אנכית יכול להיות בשימוש. </td></tr></tbody></table>

שיטה פשוטה של ​​אינטובציה ריאות המאוסות

A Simple Method of Mouse Lung Intubation

הליך פשוט לצנרר עכברים למדידת תפקוד ריאתי הייתי כמה יתרונות במחקרים ארוכי טווח עם מספרים מוגבלים או בעלי חיים יקרים. אחת הסיבות לכך שזה לא נעשה באופן שגרתי יותר הוא שזה קשה יחסית, למרות שקיים מספר מחקרים שפורסם שמתארים דרכים להשגתה. במאמר זה אנו מדגימים הליך שמבטל אחד המכשולים העיקריים הקשורים באינטובציה זה, כי מלדמיין את קנה הנשימה במשך כל הזמן של אינטובציה. הגישה משתמשת במקור אור סיב אופטי 0.5 מ&quot;מ המשמש כintroducer לכוון את הצינורית לקנה נשימת אינטובציה העכבר. אנחנו מראים שאפשר להשתמש בהליך זה כדי למדוד מכניקת ריאות בעכברים בודדים לאורך מסלול זמן של לפחות מספר שבועות. הטכניקה יכולה להיות מוגדרת עם חשבון ומומחיות יחסית קטנים, וזה יכול להיות באופן שגרתי הושג עם הכשרה מועטת יחסית. זה צריך MAKדואר מאפשר לכל מעבדה לשגרה לבצע אינטובציה זו, ובכך לאפשר מחקרים ארוכים טווח בעכברים בודדים, ובכך לצמצם את מספר העכברים הנדרשים ולהגדיל את הכח הסטטיסטי באמצעות כל עכבר כשליטה שלו.

כהערכה של השיטה, השתמש ארבעה עכברי BALB / ג גבריים בן 20 בשבוע עם משקל ממוצע (± SEM) של 27.7 ± 0.40 גרם. הם למדו על חמישה שבועות רצופים, בי התנגדות הריאות נמדדה תוך שימוש במערכת כפי שתוארה קודם לכן 11. כל עכבר היה מורדם עם קטמין (100 מיקרוגרם / g BW) וxylazine (15 מיקרוגרם / g BW) בתמיסת מלח בהזרקת ה-IP. אז הם מחוברים לצינורות כמתוארים לעיל. אם יש ספק כלשהו אם הצינורית היא בקנה הנשימה ולא בוושט, זה יכול להיות מאומת באמצעות מראה שיניים קטן. שמור על המראה במקפיא, וכאשר יש...

מאמר זה מתאר שיטת striaghforward ויעילה של intubating עכברים למדידת תפקוד הריאתי או החדרה ריאתי, שמאפשרת לעכברים להתאושש ולהיחקר בתקופות מאוחרות יותר. ההליך כרוך מקור אור סיב אופטי יקר שמאיר ישירות לקנה נשימה.

A  simple procedure to intubate mice for pulmonary function measurements would  have several advantages in longitudinal studies with limited numbers or  ...

המטרה הכללית של הליך זה היא לבצע אינטובציה לעכבר כדי לאפשר הנשמה מכנית או הזרקת נוזלים. הפעולה מבוצעת תחילה על ידי הרכבת הקנולה ומקור האור. השלב השני הוא תליית העכבר באופן אנכי באמצעות השיריים העליונים.לאחר מניפולציה של הראש והגוף כדי לאפשר נתיב ישר לאינטובציה, הכניסו את המוליך מסיב האופטי ואת הקנולה דרך מיתרי הקול. לבסוף, מוציאים את הסיב האופטי ומניחים את העכבר, כאשר הקנולה במקומה, בתנוחת שכיבה על הגב (supine) לצורך הנשמה או התקנה. אוקיי, היום נדגים פרוצדורה פשוטה לאינטובציה של ריאות עכבר.הוויזואליזציה חשובה מכיוון שמיקום העכבר הוא לעיתים קרובות שלב קריטי מבחינת החדרת הקנולה, ולכן הדבר דורש מעט תרגול. כל אחד אמור להיות מסוגל לבצע זאת שוב ושוב בפרק זמן קצר יחסית. את הפרוצדורה מדגימה היום ד"ר Sandy Doss, חברת סגל זוטרה בחטיבה לרפואת ריאות ובבית הספר לרפואה. השלב הראשון הוא ההכנה.הכינו את הקנולה עבור עכברים בוגרים; השתמשו בקטטר IV במידה 20 ובאורך של 1 עד 1.5 אינץ'. לאחר מכן, הכינו את כבל הסיב האופטי על ידי חיתוך קטע של 0.5 מילימטרים של כבל אופטי והחלקת הקצה. לאחר החיתוך, החזיקו את הסיב מקצהו ובצעו תנועות סיבוביות קטנות כך שהקצוות יגעו בפיסת נייר לטש בגרעיניות 1000.את הקצה השני מחדירים לתוך פקק גומי סיליקון שגודלו מתאים לפתח של מקור האור. ראשית, דוחפים דרכו מחט במידה 18 gauge. לאחר מכן, מחדירים את הסיב האופטי דרך חור המחט ושולפים את המחט.לאחר מכן, מחברים את פקק הגומי למקור אור הלוגן של 150 watt. בשלב הבא, מחדירים את כבל הסיב האופטי דרך קטע קצר של צינורית גומי סיליקון. מקבעים את הצינורית במקומה, תוך השארת אפשרות לכיוונו של כבל הסיב האופטי.לאחר ההצבה, הכנס את צינור הסיליקון בהתאמה הדוקה לקצה הפיתיון של הקנולה. כוונן את מיקומו של כבל הסיב האופטי כך שיהיה משתרע דרך הקנולה ובערך ארבעה מילימטרים לפני הקצה. לאחר שכל השלבים הושלמו, הנח עכבר תחת הרדמה על תמיכה אנכית על ידי תלייה זהירה של בעל החיים בשיניו החותכות העליונות.לאחר שהקיבוע הושלם, משוך בעדינות רבה את הלשון והחזק אותה באמצעות האגודל והאצבע המורה. מקם את האצבע האמצעית בין הצוואר לתמיכה הפלסטית, ומגורר את הלשון באמצעות האצבע המורה. האצבע והאגודל משמשים לפתיחת הפה ולהישור של נתיב האינטובציה.זווית הראש מכווננת באמצעות האצבע האמצעית מאחורי הצוואר כפי שמוצג כאן. לאחר מכן, יש להוציא למבט את מיתרי הקול. אם המיתרים אינם נראים, משוך בעדינות ובחוזקה רבה יותר את הלשון, תוך שימוש באצבע האמצעית כתמיכה.לאחר הוויזואליזציה, השתמש בכבל הסיב האופטי הן כמקור אור והן כמוליך והחדר אותו דרך מיתרי הקול. סימן אחד לכך שהקנולה נמצאת בקנה הנשימה הוא שהעכבר עשוי להפגין נשימה מאומצת (gasp) בעת ההחדרה הראשונית של הקנולה. לאחר ההחדרה, התקדם עם הקנולה כחמישה מילימטרים נוספים, ולאחר מכן, תוך הקפדה לא להזיז את הקנולה, שלוף את כבל הסיב האופטי, השכב את העכבר, קבע את הקנולה בעזרת חתיכת סרט דביק ותמוך בבסיס הקנולה באמצעות פיסת פלסטלינה.ניתן להשתמש במראה דנטלית קטנה שנשמרה במקפיא כדי לאשר שהקנולה נמצאת בקנה הנשימה ולא בוושט. מקמו את המראה לפני פיית החיבור של הקטטר. אם הקטטר נמצא במיקום הנכון, הנשיפה תיצור עיבוי על המראה.אם הליך האינטובציה מבוצע אך ורק לצורך התזת אירוסול של חומרים לתוך הריאה, ניתן לבצע זאת כאשר העכבר שוכב על גבו (supine). עם זאת, בתנוחה זו, התזות של נוזלים מבוצעות ביעילות רבה יותר כאשר העכבר עדיין תלוי בתנוחה אנכית, ולאחריה הוצאה מיידית של הקנולה לצורך מדידת תפקוד הריאות. העכבר המורדם והמאינטובה מחובר לאחר מכן למנשם מכני כפי שמוצג כאן.יש להגדיר את הגדרות המנשם לפני תחילת האינטובציה, כדי למנוע עיכוב באוורור. מוצג רישום של לחץ ונפח האוורור עבור עכבר זה שעבר אינטובציה. הערכנו את יכולתה של השיטה להשיג מדידות הדירות של התנגדות דרכי הנשימה לאורך תקופה של חמישה שבועות.הנתונים בגרף זה מראים כי אין השפעה לביצוע מדידות חוזרות, כיוון שההתנגדות הבסיסית נותרת קבועה יחסית. בכל אחת מארבע העכברים שנבדקו במרווחי זמן שבועיים, הערכנו את אטימות האיטום בין הקנה לבין קנולת האינטובציה על ידי הזרקת בולוסים של אוויר לריאות לאחר השחיטת העכבר. למרות שייתכן שישנה דליפה איטית מאוד לאחר הלחץ וההתאוששות מהרפיה (relaxation recovery), נראה כי דליפות הלחץ הן מינימליות.במהלך ביצוע פרוצדורה זו, חשוב מאוד לנהוג בזהירות בעת הוצאת העכבר ממעמד התמיכה, שכן קל מאוד לשלוף את הקנולה בטעות.

Research

JoVE Journal

Medicine

רפואה

מדידות חוזרות של הפיזיולוגיה מכרסם הנשימה דגימה של תאים דלקתיים בדרכי האוויר רצויות, אבל בדרך כלל לא ריאלי. כאן אנו מתארים את שיטת הדיר עבור בעל פה intubating עכברים המאפשר מדידות חוזרות של דרכי הנשימה ואת hyperreactivity דגימה של תאים דלקתיים בדרכי האוויר.

הפיך, לא פולשני שיטת ההתנגדות מדידות דרכי הנשימה ואת נוזל שטיפה ברונכואלוואולרית דגימה של עכברים

סרטון זה מתאר שיטה פשוטה ואמינה להחדרת נוזלים לקנה הנשימה לצורך החדרת ריאות, קיבוע ומדידת נפח ריאה.

החדרת ריאות וקיבוע: החדרת נוזלים לקנה הנשימה ותיקון ריאות למדידת נפח הריאה הקבוע

אנחנו פיתחנו שיטה פשוטה, אמינה, וזולה יחסית לאינטובציה endotracheal בעכברים באמצעות laryngoscopy הישיר באמצעות אוטוסקופ עם ספקולום 2.0 מ"מ. טכניקה זו היא atraumatic ויכולה לשמש למדידות חוזרות בניסויים כרוניים. אנחנו מוצאים את זה מעולה להנשמה או בעבר דיווח טכניקות נזקקה לניתוח.

Endotracheal אינטובציה בעכברים<em&gt; דרך</em&gt; ישיר laryngoscopy באמצעות אוטוסקופ

השימוש במודל המחקה את המצב של מחלות ריאה בבני האדם הוא קריטי ללימוד הפתופיזיולוגיה ו / או אטיולוגיה של מחלה מסוימת ולפתח התערבות טיפולית. הנה שיטת אינטובציה intratracheal לא פולשנית שיכול ישירות לספק חומרים אקסוגניים לריאות עכבר מוצגת.

פולשנית Intratracheal אינטובציה ללמוד פתולוגיה והפיזיולוגיה של עכבר ריאות

intratracheal החדרת תיווך אינטובציה (IMIT) של חומרים כימיים היא שיטה מצוינת, לא פולשנית ללימוד מחלות בדרכי הנשימה, כמו גם שיטה להחדרת חומרים כימיים טיפוליים ישירות לתוך הריאות. זוהי שיטה מהירה ושחזור ביותר אשר מתאימה לניסויים פרה-קליניים.

Intratracheal החדרת תיווך אינטובציה (IMIT): מערכת לא פולשני, ריאות ספציפי משלוח

המטרה של מאמר זה היא לתאר שיטות פשוטות שיסייעו מאוד בהגדרה והניתוח של ריאות עכבר עם סרטן ריאות או פתולוגיות אחרות. אנו מציגים 3 פרוטוקולים פשוט ואמין לביצוע instillations ריאות, קיבעון, ומדידות נפח ריאות.

שיטות החדרה וקיבוע שימושיות בחקר סרטן ריאות עכבר

מאמר זה מציג שיטה מהירה ופשוטה לניהול בליאומיצין ישירות לתוך קנה הנשימה העכבר באמצעות אינטובציה. יתרונות עיקריים של שיטה זו הם כי הוא מאוד לשחזור, קל לשלוט, ואינו דורשים ציוד מיוחד או פעמי החלמה ממושכות.

שיטה משופרת עבור אינטובציה מהירה של קנה הנשימה של עכברים

Intratracheal (IT) המינהל של סוכנים ניסיוניים בעכברים לעתים קרובות מביא משלוח אסימטרי הריאות המרוחק.  בדוח זה, אנו מתארים גישה ישירה בלתי-מרורונצ'יאל (ליברות) כדי לאגור כל ריאה בעכברים חיים שאינם מבצעית.  גישה זו יכולה לשמש באופן סלקטיבי לניהול סוכנים לריאה אחת או להתאים כדי לשפר את מסירת הסוכן הסימטרי לשתי הריאות.

מינהל הארגון הישיר כדי לשפר את הסוכן הסלקטיבי התצהיר בתוך הריאה של העכבר

המטרה של מאמר זה היא לתאר שיטה מעודנת של צנרור העכבר המעבדה. השיטה אינה פולשנית, ולכן אידיאלית למחקרים הדורשים ניטור סדרתי של תפקודי הנשימה ו/או הערכת טיפולים בריאה.

וחזר אורוקנה אל בעכברים

מודל ניתוחי בעכבר ליצירת פגיעה באיסכמיה של הריאה השמאלית (IR) תוך שמירה על אוורור והימנעות מהיפוקסיה.

מודל עכברי של אינטובציה אורוטרכאלית וניתוח איסכמיה ריאה מונשמת

פרוטוקול זה מציג כיצד מיקום אופטימלי של עכבר והחדרת אוטוסקופ מבוסס מצלמה באופן טרנסאורלי מאפשר הדמיה של הגלוטיס, אינטובציה מהירה עם טראומה מינימלית לרקמות ואספקת נוזלים עקבית לריאות.

מתודולוגיה משופרת לאספקת נוזלים לריאת העכבר: אינטובציה באמצעות אוטוסקופ צרכני

למד שיטה פשוטה לאינטובציה ריאות עכברים לצורך ונטילציה מכנית או התקנת נוזלים. השיטה משתמשת במקור אור סיב אופטי זול המאיר את הלוע ישירות ומאפשרת החלמה מהירה של העכברים לניסויים עתידיים.

שיטה פשוטה של ​​אינטובציה ריאות המאוסות

גלה סרטונים נוספים

שיטה פשוטה של אינטובציה ריאות המאוסות