Name: הפרדה של סוגי תאי Spermatogenic שימוש בשקיעה מהירות STA-PUT (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-10-09T21:20:00.000+00:00
Duration: 9 min 48 s
Description: למד להפריד תאי זרע שונים בשיטת STA-PUT לסדימנטציית מהירות. טכניקה זו מאפשרת בידוד אוכלוסיות תאים מבוסס גודל וצפיפות מבחני עכברים לחקר תהליכי סpermatogenesis.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

מחקר זה נתמך על ידי GM055360 NIH מענקים לSLB וU54HD068157 לRGM. JMB נתמכה על ידי T32 הגנטיקה הדרכה גרנט באוניברסיטת פנסילבניה (GM008216).

פרוטוקול STA-PUT כרוך בשלושה שלבים: 1) הגדרה של המנגנון וחומרים כימיים, 2) הכנה של השעיה תא מכל אשכים, ו3) טעינה סלולרי, שקיעה, ואיסוף שברים. כאשר היא מבוצעת על ידי צוות של שני חוקרים, הפרוטוקול לוקח שמונה שעות בממוצע. 1. הקמת מנגנון STA-PUT (איור 1) *** מנגנון STA-PUT צריך להיות ממוקם במקרר גדול 4 ° C או חדר קר שיכול גם להכיל אספן שבריר, אם שיטה זו של אוסף היא מועדפת. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בלילה שלפני (או לפחות כמה שעות לפני) שתבצע את השיטה, לשטוף את כל הציוד (בעיקר כלי הזכוכית וצינורות) ולחטא עם 70% אתנול. בואו יבש ציוד לחלוטין לפני הרכבת המנגנון כפי שמודגם באיור 1. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Secure שני צילינדרי 2 ליטר (איורים 1B ו-C) ותא העמסת תא ( <strאונג&gt; איור 1 א) לפלטפורמה העליונה ולחבר את כל עם שתי חתיכות קטנות של צינורות עם מהדק צינור. הצמידו כל הצינורות סגורים. חותם את הזרבובית על גליל L ​​ימני ביותר 2. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הנח בר קטן ומערבבים בתא טעינת תא (איור 1 א), ובר גדול ומערבבים בצילינדר L 2 השמאלי ביותר (איור 1) שיכיל BSA 2%. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הנח את תא שקיעת 2 L על הפלטפורמה (1D איור). הנח לבלבל המתכת (איור 1F) ישירות על גבי הפתח בחלק התחתון של חדר השיקוע (1D איור). זה הוא קריטי, שכן לבלבל מונע vortexing של הנוזל ושיבוש של שיפוע התא במהלך איסוף שברים. מניחים את המכסה על החלק העליון של חדר שקיעה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר מריחת כמות קטנה מאוד של שומן ואקום למפרק זכוכית קרקע של הסתום המשולש (איור 1G), מהדק את ברזלים לעומקו של seקאמרי dimentation, המחבר את מפרקי זכוכית קרקע של ברזלים וחדר שקיעה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חבר את התא לתא טעינה (איור 1 א) אל השקע הימני של ברזלים עם צינורות. סגור את ברזלים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צרף את צינורות חלוקה התא לשקע שמאל של ברזלים. צינורות חלוקה כוללים חתיכת הצינור עם זכוכית פיפטה פסטר מחוברת לסוף הפתוח. חתיכת צינור שעמם קטן יותר מחוברת לקצה הצר של פיפטה מזכוכית. פיפטה הצרה מגבילה את הזרימה של ההשעיה התא באיסוף שברים. הצמד הצינור הקטן הזה בתחתית מאוד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להכין 2 L קרבס (1x) חיץ היום של הניסוי (טבלת 1). לאחר מכן, להכין 550 BSA מיליליטר 2% ב1x קרבס, 550 מיליליטר BSA 4% ב1x קרבס, וארגון ה-BSA 50 מיליליטר 0.5% ב1x קרבס. לסנן ולצנן את הפתרונים הללו ל4 ° C. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> יוצקים את פתרון 4% BSA בצילינדר תקין 2 L (איור 1 ג) וBSA 2%פתרון בצילינדר L 2 שמאלה (איור 1). ודא שאין בועות גדולות בצינור שמחבר את הגלילים אלה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> יוצקים חיץ קרבס לתוך תא טעינת תא ולמלא את צינורות המחברים חדר זה עם חדר שקיעה, כדי לוודא שאין בועות גדולות, כמו אלה יכולים להפריע לשיפוע. לוחץ או מצליף את הצינור בעדינות מסייע להסיר את הבועות. ודא שכל של חיץ קרבס הוא בצינור ולא בתא התא. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאפשר כמות קטנה של חיץ קרבס לזרום לתוך תא השיקוע ולאחר מכן לנקז כמעט את כל החיץ לתוך צינורות חלוקה תא כדי למלא את הצינור ולהסיר את כל בועות גדולות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הנח את אספן שבריר ישירות תחת קאמרי שקיעה. ודא שכל צינורות שבריר נמצאים במקום ומכוסה בניילון הנצמד, כדי למנוע זיהום. </li></ol> 2. בידוד תאי Spermatogenic מאשכים שלמים <ol&gt; <li style=";text-align:right;direction:rtl"> לנתח אשכים מca 12 עכברים בוגרים (רצוי לפחות שמונה שבועות) ומקום בחיץ קרבס בטמפרטורת חדר כדי לשטוף את כל חומר מזהם. פרוטוקול זה שמפגינים כרוך בשימוש בעכברי מעבדה והוצא להורג בעמידה בקווים המנחים של אוניברסיטת הוועדה מוסדית טיפול בבעלי חיים ושימוש בפנסילבניה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוספת 45 collagenase מ&quot;ג למיליליטר 50 חיץ קרבס בצינור חרוטי ממש לפני שאתה מתכוון להוסיף tubules seminiferous. פתרון זה יאפשר לחום עד 33 מעלות צלזיוס במשך כמה דקות. לפצל באופן שווה לשני צינורות 50 חרוטי מיליליטר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Decapsulate האשכים בצלחת נפרדת המכילה 8 מיליליטר חיץ קרבס, השלכת albuginea Tunica ושחרור tubules seminiferous. Albuginea Tunica הוא הקרום הדק המקיף את tubules seminiferous. Tubules צריך בקלות להתנתק מalbuginea Tunica. כדי לעשות זאת, עושה חתך בalbuginea Tunica, החזק הקרום הזה עם פאיr של מלקחיים, ולדחוף את tubules מתוך ומחוץ לקרום עם זוג נוסף של מלקחיים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 4 מיליליטר חיץ קרבס מכיל את הצינוריות לכל צינור חרוטי המכיל 25 מיליליטר של תמיסת collagenase ודגירה, רועד, ב33 מעלות צלזיוס במשך 10 דקות. בסוף, צריך להיות לי tubules מראה &quot;דמוי ספגטי&quot;. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאפשר tubules להסתפק ~ 5 דקות לחלק התחתון של הצינור. יוצקים את supernatant ולשטוף 2x ב25 מיליליטר חיץ קרבס (בטמפרטורת חדר), המאפשר tubules להתיישב לחלק התחתון של הצינור בכל פעם. השאר ~ 5 מיליליטר חיץ קרבס בצינור אחד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעוד כביסה, להוסיף 30 טריפסין מ&quot;ג למ&quot;ל 50 חיץ קרבס בצינור בז ממש לפני שאתה מתכוון להוסיף tubules seminiferous. פתרון זה יאפשר לחום עד 33 מעלות צלזיוס במשך כמה דקות. לפצל באופן שווה לשני צינורות 50 חרוטי מיליליטר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוסף 25 מיליליטר פתרון טריפסין לכל אחד משני הצינורות המכילים את הצינוריות. הוסף 3 DNAse מיקרוגרם (μg/10ml 1) על צינור אחד כדי למנוע תאים מהתקבצות. דגירה, טלטולים, ב-C ° 33 10 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש פיפטה שעם רחבה כדי להתסיס את התמיסה המכילה צינוריות, pipetting אותם פנימה והחוצה כ 10x. הפתרון צריך להתחיל להיראות יותר כמו השעיה תא בודדת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> דגירה, רועד, ב33 מעלות צלזיוס במשך נוספת 10 דקות. השתמש פיפטה שעם רחבה לפזר את הצינוריות לתוך השעיה תא בודדת, pipetting אותם פנימה והחוצה כ 25x. אם אתה עדיין רואה הרבה צינוריות או גושי תא, לפזר יותר עם פיפטה ו / או להוסיף עוד DNAse 3 מיקרוגרם לצינור אחד (ריכוז כפול ראשוני). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סנן את ההשעיה התא בודדת דרך מסננת תא רשת 100 מיקרומטר (אחד לכל שפופרת של 30 השעיה תא מיליליטר). מערבבים את השעיות התא ולספור את המספר הכולל של תאים (צריך להיות בין 7-8 x 10 8 תאים). *** אין לטעון יותר מ 800,000,000 תאים על גבי השיפוע. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בהתבסס על ספירת התאים שהושגה בשלב 2.10, גלולה approprנפח iate של תאים מסוננים ב450 RCF למשך 5 דקות ולשטוף עם 30 מיליליטר חיץ קרבס. חזור על פעולה. בדרך כלל *** 22 אשכים יניבו יותר מ 800,000,000 תאים, אבל לא להעמיס יותר ממספר זה של תאים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> resuspend תאים בזהירות ב25 BSA 0.5% מיליליטר מכיל בין 2.5 ו5 מיקרוגרם DNAse (תלוי במידת התקבצות תא) מבלי ליצור בועות. ודא שתאים לא גוש. סנן את ההשעיה התא בודדת דרך מסננת תא רשת 100 מיקרומטר. התאים מוכנים לטעון עכשיו. מערבבים היטב לפני הטעינה על ידי צינור היפוך כמה פעמים. </li></ol> 3. טוען תא ושקיעה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ודא כי ברזלים סגור, אבל במצב שיאפשר לי נוזל לזרום מהתא לתא (איור 1 א) לתוך תא השיקוע (1D איור). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפעל את שני צלחות בר ומערבב להגדרה נמוכה (כ 70 סל&quot;ד) על מנת לאפשר לברים ומערבבים לנוע ברציפות, אבל לאט לאט. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> יוצקים את ההשעיה התא לתוך תא התא (איור 1 א) ולפתוח את ברזלים כך שהתאים לזרום באיטיות אל תוך חדר שקיעה בשיעור של 10 מיליליטר / דקה (1D איור). סגור את ברזלים. שיעור זרימה ניתן לקבוע על ידי סימון מרווחי נפח בתא השיקוע. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> יוצקים 5 מיליליטר של .0.5% פתרון BSA לתוך תא התא ולנקז לתוך תא השיקוע בשיעור של 10 מיליליטר / דקה. סגור את ברזלים. צעד זה לשטוף את התאים מהתא לתא. חזור על 4x. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן את השיפוע: פתח את מהדק בין התא לתא (איור 1 א) ושני צילינדרי 2 ליטר (איור 1B ו-C), ולהתחיל לרוקן את הנוזל לתוך תא השיקוע בשיעור של 40 מיליליטר / דקה (איור 1D) באופן מיידי. התאם את קצב הזרימה ולכן זה לוקח בערך 20-30 דקות כדי לטעון את שיפוע BSA לתוך תא השיקוע. שכבה דקה, ללא הפרעה של תאים מונחת על גבישיפוע BSA צריך להיות גלוי. ברגע שרוב BSA נטען, סגור את הברז ופונה לעמדה שתאפשר לניקוז נוזלים מתא שקיעה לתוך צינור חלוקתו. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כבה את הצלחות ומערבבים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אפשר התאים למשקעים לשעה אחת ו45 דקות. לא להפריע למכשיר בתקופה זו. כל תסיסה מכאנית יכולה להפריע את השיפוע. </li></ol> 4. חלוקה וניתוח של שברים *** כפי שאתה לבצע את השלבים הבאים, יש להיזהר שלא להפריע את השיפוע. אם שיפוע BSA מופרע, ההליך לא יעבוד! <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ברגע שתאי משקעים, לנקז לאט 50 מיליליטר מתא שקיעה לתוך צינור חרוטי 50 מ&quot;ל ומניח בצד. חלק זה מכיל בדרך כלל גושים לא רצויים של תאים ופסולת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צרף את צינור החלק לאספן שבריר. *** אפשר גם לאסוף את השברים ביד אם Colle שברירctor אינו זמין. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> איסוף שברים: התאם את קצב הזרימה עם ברזלים כך ש10 מיליליטר (מילוי צינור איסוף אחד) נאסף כל שניות 45. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מכסה את צינורות איסוף שבריר ספין 5 דקות ב450 RCF ב 4 ° C. יוצקים את supernatant בעדינות, resuspend תאים בנוזל שנותר, ולשמור את התאים על קרח. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ברגע שכל השברים נאספים, מיקרוסקופי לנתח את השברים לאוכלוסיות תאים שונים. ניתן להבחין בין סוגי תאים שונים המבוססים על גודל תא ומורפולוגיה גרעינית 8,15. איור 2 מדגים &quot;תוצאות נציג&quot; לשלושת שברים ונקוו שמועשרים לתאים וspermatogonia () גופניים וmeiotic, (ב) spermatids העגול, ו (ג) מתארך ועיבוי spermatids. <ul style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הקלד spermatogonia הם ca 12 14μm. קוטרו ויש לי גרעינים עגולים שהם הומוגני בהרכב הכרומטין. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סוג B spermatogonia הוא ca 8-9μm. קוטרו ויש לי לפהגרעיני ד המראים heterochromatin צפוף יותר לאורך הפריפריה הגרעינית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> spermatocytes טרום leptotene הוא ca 7.5-8.2μm. קוטרו, יש להם פחות מ ציטופלסמה סוג B spermatogonia, ויש להם גרעינים שנראים דומה לאלה בB spermatogonia סוג. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> spermatocytes העיקרי Leptotene הוא 8-10 ca מיקרומטר. בקוטר יש גרעינים שנראים דומה לאלה של spermatocytes מראש leptotene, אבל נראה שכדי לזכות בהכרומטין צפוף יותר בקרום הגרעין. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Zygotene spermatocytes העיקרי הוא 10-12 ca מיקרומטר. בקוטר יש גרעינים שנראים דומה לאלה של spermatocytes העיקרי leptotene. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> spermatocytes Pachytene הם בכל מקום בין 12-18 ca מיקרומטר. קוטר ומורכב של שפה דקה של ציטופלסמה סביב גרעין גדול. יותר גושים של הכרומטין צפוף ניתן לראות בגרעין. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> spermatids העגול 10 ca מיקרומטר. בקוטר יש גרעין עגול עם chromocenter צפוף מכתים באמצע. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שרידיםגופים הם ~ 6.5 מיקרומטר בקוטר, הם עגולים, וחסרי גרעין. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> spermatids מתארך והעיבוי דומה בגודלן לעגל spermatids, אבל יש גרעין ייחודי, בצורת מגל. </li></ul><ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> התחל עם חלק 15 ולנתח כל חמישה שברים עד 85. בדרך כלל, שברים מתחת 15 יהיו מעורבים וגבשושיים מדי, ושברים מעל 85 יכילו כמה לתאים לא שמישים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כדי לנתח כל חלק, לקחת 5ul של נוזל מצינור איסוף שבריר (פעם תאים כבר resuspended לאחר צנטריפוגה) ולהוסיף ל5ul של פורמלדהיד 8% בחיץ קרבס. אפשר התאים הקבועים לשבת בטמפרטורת חדר למשך חמש דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הוספת 5ul של .0.1% טריטון וDAPI (5 μ / מיליליטר חיץ קרבס) לתאים הקבועים. אפשר התאים לשבת בטמפרטורת חדר למשך 5 דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הנח 10 μl של הפתרון שהתקבל לשקופית, מכסה בלהחליק את מכסה, ולנתח באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנטי כדי לקבוע את טוהר של כל חלק. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שלב את השברים הדומים בגודלם ומורפולוגיה גרעינית (ראו &quot;נציג תוצאות&quot;) כדי ליצור האוכלוסיות של תאים הבאים: תאי דיפלואידי meiotic וסומטיים, spermatids העגול, וspermatids עיבוי / מתארך. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Wistuba, J., Stukenborg, J., Luetjens, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mammalian+Spermatogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Funct.+Dev.+Embryol%22%5BJournal%5D)">Mammalian Spermatogenesis.</a> Funct. Dev. Embryol. 1, 99-117 (2007).</li>
<li>Hess, R. A., Cooke, P. S., Hofmann, M. C., Murphy, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanistic+insights+into+the+regulation+of+the+spermatogonial+stem+cell+niche%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Cycle%22%5BJournal%5D)">Mechanistic insights into the regulation of the spermatogonial stem cell niche.</a> Cell Cycle. 5, 1164-1170 (2006).</li>
<li>Dores, C., Alpaugh, W., Dobrinski, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((From+in+vitro+culture+to+in+vivo+models+to+study+testis+development+and+spermatogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Tissue+Res%22%5BJournal%5D)">From in vitro culture to in vivo models to study testis development and spermatogenesis.</a> Cell Tissue Res. 349, 691-702 (2012).</li>
<li>Hayashi, K., Ohta, H., Kurimoto, K., Aramaki, S., Saitou, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reconstitution+of+the+mouse+germ+cell+specification+pathway+in+culture+by+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Reconstitution of the mouse germ cell specification pathway in culture by pluripotent stem cells.</a> Cell. 146, 519-532 (2011).</li>
<li>Easley, C. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+differentiation+of+human+pluripotent+stem+cells+into+haploid+spermatogenic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Rep%22%5BJournal%5D)">Direct differentiation of human pluripotent stem cells into haploid spermatogenic cells.</a> Cell Rep. 2, 440-446 (2012).</li>
<li>Bellve, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Purification%2C+culture%2C+and+fractionation+of+spermatogenic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Enzymol%22%5BJournal%5D)">Purification, culture, and fractionation of spermatogenic cells.</a> Methods Enzymol. 225, 84-113 (1993).</li>
<li>Meistrich, M. L., Bruce, W. R., Clermont, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cellular+composition+of+fractions+of+mouse+testis+cells+following+velocity+sedimentation+separation%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Cellular composition of fractions of mouse testis cells following velocity sedimentation separation.</a> Exp. Cell Res. 79, 213-227 (1973).</li>
<li>Romrell, L. J., Bellve, A. R., Fawcett, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Separation+of+mouse+spermatogenic+cells+by+sedimentation+velocity.+A+morphological+characterization%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Separation of mouse spermatogenic cells by sedimentation velocity. A morphological characterization.</a> Dev. Biol. 49, 119-131 (1976).</li>
<li>Miller, R. G., Phillips, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Separation+of+cells+by+velocity+sedimentation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">Separation of cells by velocity sedimentation.</a> J. Cell Physiol. 73, 191-201 (1969).</li>
<li>Bastos, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flow+cytometric+characterization+of+viable+meiotic+and+postmeiotic+cells+by+Hoechst+33342+in+mouse+spermatogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry+A%22%5BJournal%5D)">Flow cytometric characterization of viable meiotic and postmeiotic cells by Hoechst 33342 in mouse spermatogenesis.</a> Cytometry A. 65, 40-49 (2005).</li>
<li>Getun, I. V., Torres, B., Bois, P. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flow+cytometry+purification+of+mouse+meiotic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Flow cytometry purification of mouse meiotic cells.</a> J. Vis. Exp. (50), e2602(2011).</li>
<li>Grabske, R. J., Lake, S., Gledhill, B. L., Meistrich, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Centrifugal+elutriation%3A+separation+of+spermatogenic+cells+on+the+basis+of+sedimentation+velocity%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">Centrifugal elutriation: separation of spermatogenic cells on the basis of sedimentation velocity.</a> J. Cell Physiol. 86, 177-189 (1975).</li>
<li>Meistrich, M. L., Trostle, P. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Separation+of+mouse+testis+cells+by+equilibrium+density+centrifugation+in+renografin+gradients%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Separation of mouse testis cells by equilibrium density centrifugation in renografin gradients.</a> Exp. Cell Res. 92, 231-244 (1975).</li>
<li>Gassei, K., Ehmcke, J., Schlatt, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+enrichment+of+undifferentiated+GFR+alpha+1%2B+spermatogonia+from+immature+rat+testis+by+magnetic+activated+cell+sorting%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Tissue+Res%22%5BJournal%5D)">Efficient enrichment of undifferentiated GFR alpha 1+ spermatogonia from immature rat testis by magnetic activated cell sorting.</a> Cell Tissue Res. 337, 177-183 (2009).</li>
<li>Bellve, A. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spermatogenic+cells+of+the+prepuberal+mouse.+Isolation+and+morphological+characterization%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Spermatogenic cells of the prepuberal mouse. Isolation and morphological characterization.</a> J. Cell Biol. 74, 68-85 (1977).</li>
<li>Handel, M. A., Schimenti, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetics+of+mammalian+meiosis%3A+regulation%2C+dynamics+and+impact+on+fertility%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Genet%22%5BJournal%5D)">Genetics of mammalian meiosis: regulation, dynamics and impact on fertility.</a> Nat. Rev. Genet. 11, 124-136 (2010).</li>
<li>Zhao, M., Shirley, C. R., Mounsey, S., Meistrich, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nucleoprotein+transitions+during+spermiogenesis+in+mice+with+transition+nuclear+protein+Tnp1+and+Tnp2+mutations%5BTitle%5D)+AND+%22Biol.+Reprod%22%5BJournal%5D)">Nucleoprotein transitions during spermiogenesis in mice with transition nuclear protein Tnp1 and Tnp2 mutations.</a> Biol. Reprod. 71, 1016-1025 (2004).</li>
<li>Manku, G., Mazer, M., Culty, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neonatal+testicular+gonocytes+isolation+and+processing+for+immunocytochemical+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Neonatal testicular gonocytes isolation and processing for immunocytochemical analysis.</a> Methods Mol. Biol. 825, 17-29 (2012).</li>
<li>Dehnugara, T., Dhar, S., Rao, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+in+vitro%2C+short-term+culture+method+for+mammalian+haploid+round+spermatids+amenable+for+molecular+manipulation%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Reprod.+Dev%22%5BJournal%5D)">An in vitro, short-term culture method for mammalian haploid round spermatids amenable for molecular manipulation.</a> Mol. Reprod. Dev. 79, 19-30 (1002).</li>
</ol>

החוקרים מצהירים כי אין להם אינטרסים כלכליים מתחרים. פרוטוקול זה שמפגינים כרוך בשימוש בעכברי מעבדה ובוצע בהתאם לכל הנחיות הרלוונטיות, תקנות ורשויות רגולטוריות. בעלי חיים המשמשים בפרוטוקול זה נשמרים תחת הדרכתו ואישור מאוניברסיטת ועדת טיפול בבעלי חיים ושימוש המוסדי פנסילבניה (פרוטוקול # IACUC 804,284).

אלה שלומדים spermatogenesis להסתמך על מודלים של בעלי חיים לדגימות תאי spermatogenic, כמערכת תרבית תאים אמינה עדיין לא קיימת ליצירה כל סוגי תאי spermatogenic 3. למרות שתאי spermatogenic נאספים בקלות מכל אשכים, רק אוכלוסיית תוצאות מעורבת. זה מהווה בעיה למי שרוצה ללמוד תתי סוגים מסוימים של תאים אלה, כגון תאי meiotic, spermatids העגול, וspermatids עיבוי. שלוש שיטות שונות משמשות כיום להפריד בין תתי סוגים של תאי spermatogenic הבאים: STA-PUT, FACS, וelutriation 6-13.</sup...

תאי זרע של יונקים הוא תהליך התמיינות מורכב המתרחש במספר שלבים בtubules seminiferous של האשכים 1. בקצרה, הגזע דמוי spermatogonia שמתגורר בסמוך לאפיתל של מתרס אבובית seminiferous ולהתמיין לspermatocytes, אשר לאחר מכן יעבור חטיבות meiotic. לאחר מיוזה היא מוחלטת, וכתוצאה מכך התאים הפלואידים, או spermatids העגול, עוברים spermiogenesis, תהליך בידול המערב את שפיכת הציטופלסמה והדחיסה של הגרעין. Spermatids לפתח בהדרגה השוטון ועובר התארכות והתעבות של הגרעין, הפקת spermatids מתארך ולאחר מכן עיבוי, בהתאמה. מוצרי הקצה הם תאי זרע, המשתחררים ללומן של אבובית seminiferous וסופו של דבר ליותרת האשך שבו הם בוגרים יותר. בגלל התהליך של spermatogenesis מסתמך על תנאים הורמונליים ומולקולריים מיוחדים בהאשכים, מערכת תרבות אמינה במבחנה לכל התהליך של תאי זרע עדיין לא פותחו 2,3. שיטות תרבות פותחו ליצירה &quot;תאי נבט קדמוני דמוי תא&quot; ו &quot;תאים עגולים כמו spermatid-&quot; הפלואידים, מתאי גזע, אך שיטות אלה עדיין לא מסוגלים לייצר כמויות גדולות של תאים אלה ולא מצליחים לייצר תא spermatogenic מאוחר יותר סוגי 4,5. למרבה המזל, סוגי spermatogenic התא שונים באופן משמעותי בגודלם, המאפשר להשעית תא בודד המתקבלת מכל אשכים להיות מופרדים עם שיפוע נוזלי. שיטת STA-PUT, הפגין כאן, משתמשת בשיפוע BSA ליניארי ושקיעה פשוט להפריד תאי spermatogenic מבוסס על גודל והמסה 6-9. יש שיטת STA-PUT מספר יתרונות על פני שתי שיטות נפוצות ביותר האחרות כדי להפריד בין סוגי spermatogenic תא: FACS וelutriation 10-13. מנגנון STA-PUT דורש onlכמה חתיכות y של כלי זכוכית מתמחה התאספו בחדר קר או מקרר גדול. לכן, זה פחות יקר מאשר באמצעות סדרן תא או elutriator. שיטת STA-PUT מניבה כמויות גדולות יותר של תאים לכל סוג תא ואשך מאשר ניתן למיין על ידי FACS במסגרת זמן דומה, אם כי טוהר של כל אוכלוסיית תא הוא לא גבוה כמו אלו שהושגו עם 11 FACS. מיון תא ניצול חרוזים מגנטיים (מיון מגנטי מופעל סלולרי, מחשבי מקינטוש) לאחרונה מועסק בהצלחה להעשרת spermatogonia מאוכלוסיית תאי אשכים מעורבת, אבל זה כרגע לא מתאים להפרדת spermatocytes או spermatids בשל חוסר ידע של שטח מתאים סמני 14. יתרון נוסף של שיטת STA-PUT על FACS או MACS הוא היכולת לבודד תאי קיימא מתאימים לתרבות שלאחר מכן, כי, בניגוד לרוב פרוטוקולי FACS, היא אינה דורשת כל ה-DNA או סוגים אחרים של מכתים. למחקרים שדורשים lתשואות arge של סוגי תאי spermatogenic ב ~ טוהר 90%, STA-PUT היא שיטה אידיאלית.

<table><tbody><tr>ניתן להשתמש <td>ב-BSA</td><td>Affymetrix/USB</td><td>10857 100MG</td><td>Alternate.</td></tr><tr><td>תמיסות BSA של 0.5%, 2% ו-4%</td><td>ממיסים 0.25 גרם, 11 גרם ו-22 גרם (בהתאמה) בנפחים כוללים של 50 מ"ל, 550 מ"ל ו-550 מ"ל של 1x KREBS (בהתאמה).</td><td>יהפוך ליום של נוהל STA-PUT. מסננים לעקר.</td><td></td></tr><tr><td>KREBS (10x)</td><td>3.26 גרם KH2PO4 + 139.5 גרם NaCl +5.89 גרם MgSO4/7H20 + 40 גרם דקסטרוז + 3.78 גרם CaCl2/2H20 + 7.12 גרם KCl, להביא ל-2 ליטר עם ddH20</td><td>חיטוי/מסנן ולאחסן ב-4 מעלות; C למספר חודשים.</td><td></td></tr><tr><td>KREBS (1x)</td><td>ממיסים 4.24 גרם NaHCO3 in 100 מ"ל ddH20. יש להוסיף 200 מ"ל 10x KREBS. מביאים ל-2 ליטר עם ddH20.</td><td>יהפוך ליום של נוהל STA-PUT. מסננים לעקר.</td><td></td></tr><tr><td>קולגנאז</td><td>סיגמא</td><td>C9891-1G</td><td> </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>DNAse</td><td>סיגמא</td><td>DNEP-5MG</td><td> </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>טריפסין</td><td>סיגמא</td><td>T9201-1G</td><td> </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>DAPI</td><td>העדפה של החוקר</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Triton-X100</td><td>העדפת החוקר</td><td></td><td></td></tr><tr><td>פורמלדהיד (~37%)</td><td>העדפת החוקר</td><td></td><td></td></tr><tr><td> </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>טבלה 2:</td> קטלוג חברת ציוד <td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td>ציוד #</td><td>הערות</td></tr><tr><td>מכשיר STA-PUT מלא</td><td>חנות</td> <td>זכוכית ProScienceSTA-PUT (הליך זה משתמש בתא השיקוע הסטנדרטי: Cat. מס' 56700-500)</td><td>כולל את כל כלי הזכוכית והציוד למכשיר. כלי זכוכית חלופיים זמינים לביצוע STA-PUT עם מספרי תאים קטנים יותר.</td></tr><tr><td>10 &mu; מסנן רשת m</td><td>פישרברנד</td><td>22363549</td><td> </td></tr><tr><td>כלי חיתוך עכבר</td><td>העדפת החוקר</td><td></td><td></td></tr><tr><td>14 מ"ל צינורות איסוף שברים תחתונים עגולים עם כובעים</td><td>העדפת החוקר</td><td></td><td></td></tr><tr><td>זקוק לכ-100 צינורות</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>אספן שברים</td><td>GE Healthcare מדעי החיים</td><td>דגם: Frac-920, קוד מוצר: 18-1177-40</td><td>ניתן להשתמש בחלופה.</td></tr><tr><td>שקופיות מיקרוסקופ, כיסוי זכוכית</td><td>העדפת החוקר</td><td></td><td></td></tr><tr><td>מיקרוסקופ אור/פלואורסצנטי</td><td>העדפת החוקר</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

הפרדה של סוגי תאי spermatogenic שימוש בשקיעה מהירות sta-put

Separation of Spermatogenic Cell Types Using STA-PUT Velocity Sedimentation

תאי זרע של יונקים הוא תהליך התמיינות מורכב המתרחש במספר שלבים בtubules seminiferous של האשכים. נכון לעכשיו, אין מערכת תרבית תאים אמינה המאפשרת בידול spermatogenic במבחנה, ורוב המחקרים ביולוגיים של תאי spermatogenic דורשים קציר רקמות ממודלים של בעלי חיים כמו העכבר והחולדה. בגלל האשך מכיל סוגים רבים של תאים - גם הלא spermatogenic (יידיג, Sertoli, מיאלואידית, ותאי אפיתל) וspermatogenic (spermatogonia, spermatocytes, spermatids העגול, עיבוי spermatids ותאי זרע) - מחקרים של המנגנונים הביולוגיים המעורבים בתאי זרע דורש הבידוד והעשרה של תאים מסוגים שונים. שיטת STA-PUT מאפשרת להפרדת אוכלוסייה הטרוגנית של תאים - במקרה זה, מהאשכים - דרך שיפוע BSA ליניארי. סוגי תאים בודדים משקעים עם מהירות שקיעה שונה בהתאם לספירהגודל ll, והשברים מועשרים לתאים מסוגים שונים יכולים להיות שנאספו ומנוצלים בניתוחים נוספים. בעוד שיטת STA-PUT לא לגרום לשברים טהורים מאוד של סוגי תאים, למשל כמו ניתן להשיג עם שיטות מיון תא מסוימות, הוא מספק תשואה גבוהה בהרבה של תאים הכולל בכל שבריר (~ 1 x 10 8 תאים / סוג spermatogenic תא מאוכלוסייה התחלתי של 7-8 x 10 8 תאים). שיטת תשואה גבוהה זה דורשת רק כלי זכוכית מתמחה ויכולה להתבצע בכל חדר קר או מקרר גדול, מה שהופך את שיטה אידיאלית למעבדות שיש להם גישה מוגבלת לציוד מיוחד כמו סדרן הקרינה הופעלה תאים (FACS) או elutriator.

התוצאה האידיאלית מהליך STA-PUT היא הפרדה די בולטת של תאים מהאשכים המבוססים על גודל תא וצפיפות. בעוד התאים מבודדים מאשכי סדימנטציה דרך שיפוע BSA, כמה להקות שונות של תאים יכולות להיות שנצפו. כל גושים של תאים נוטים לשקוע בתחתית של השיפוע ולא לזהם את השברים האחרים. עוד קצת במעלה השיפוע יהיה גופני הגדול ותאי meiotic. במעלה השיפוע עדיין יהיה spermatids העגול קטן יותר. בחלק העליון של השיפוע יהיה מרוכז spermatids, זרע, ומזהם תאי דם אדומים (מופיעים אלה להיות תאים עגולים קטנים ללא גרעין). <...

שיטת STA-PUT מאפשרת הפרדה של אוכלוסיות שונות של תאי spermatogenic בהתבסס על גודל וצפיפות.

הפרדה של סוגי תאי Spermatogenic שימוש בשקיעה מהירות STA-PUT

Mammalian spermatogenesis is a complex  differentiation process that occurs in several stages in the seminiferous  tubules of the testes. Currently, there ...

המטרה הכללית של פרוצדורה זו היא להפריד בין סוגי התאים השונים הנמצאים באשכים. ראשית, יש לאסוף אוכלוסיית תאים מעורבת מהעכבר. טענו את התאים מהאשכים ואת מדרג ה-BSA למכשיר ה-stay put.כעת יש לאפשר לתאים לשקוע דרך מדרג ה-BSA. לאחר מכן, אספו את הפרקציות ושלבו אותן בהתבסס על הרכב התאים. בסופו של דבר, שיטת שיקוע במהירות (velocity sedimentation) עם ה-stay put משמשת להפרדת סוגים שונים של תאים מהאשכים בהתבסס על הבדלים בגודל ובצפיפות.היתרון העיקרי של טכניקה זו על פני שיטות קיימות כמו facts, הוא שניתן לבודד כמויות גדולות של סוגי תאים שונים בדרגת טוהר גבוהה למדי תוך שימוש בכלי זכוכית פשוטים ובכוח הכבידה. קבעו את שני הגלילים בנפח 2 ליטר ואת תא טעינת התאים לפלטפורמה העליונה וחברו את כולם באמצעות שתי חתיכות קטנות של צינורית עם תפסני צינור. סגרו את כל הצינורות באמצעות התפסנים ואטמו את הפיה בגליל ה-2 ליטר הימני ביותר.הנח מוט ערבוב קטן בתא טעינת התאים ומוט ערבוב גדול יותר בצילינדר השמאלי ביותר בנפח שני ליטר. לאחר מכן, הנח את תא השקיעה בנפח שני ליטר על הפלטפורמה. מקם את המחיצה המתכתית ישירות מעל הפתח בתחתית תא השקיעה כדי למנוע היווצרות מערבולת של הנוזל ושיבוש של מדרג התאים במהלך איסוף הפרקציות.כעת סגרו את תא השקיעה בעזרת המכסה. מרחו כמות קטנה מאוד של גריז ואקום על חיבור הזכוכית השחורה של ברז התריש התלת-דרכי. לאחר מכן, הדקו את ברז התריש לתחתית תא השקיעה, תוך חיבור חיבורי הזכוכית השחורה של ברז התריש ותא השקיעה.בשלב הבא, חברו את תא טעינת התאים ליציאה הימנית של ברז המעצור באמצעות צינורית. סגרו את ברז המעצור, לאחר מכן חברו את צינורית הפרקציונציה של התאים ליציאה השמאלית של ברז המעצור וסגרו בעזרת תפסן את הצינורית הקטנה בחלק התחתון ביותר. שפכו את תמיסת ה-2%BSA לתוך הצילינדר השמאלי בנפח שני ליטר.שפכו את תמיסת ה-4%BSA לתוך המבחנה בעלת שני הליטרים מימין. ודאו שאין בועות גדולות בצינורית המחברת בין המבחנות הללו. שפכו Krebs buffer לתוך תא טעינת התאים ומלאו את הצינורית המחברת בין תא זה לבין תא השקיעה.וודאו שאין בועות גדולות שעלולות להפריע למעבר המדרגה (gradient). במידת הצורך, לחצו בעדינות על הפקתית או הקפיצו אותה כדי להסיר את הבועיות. וודאו שכל תמיסות ה-crebs נמצאות בתוך הפקתית ולא בתא הדגימה (cell chamber).אפשרו לכמות קטנה של Krebs buffer לזרום אל תא השקיעה. לאחר מכן, רוקנו כמעט את כל ה-buffer אל צינורות הפרדת התאים. כדי למלא את הצינור ולהסיר בועות אוויר גדולות, הניחו את אספן הפראקציות ישירות מתחת לתא השקיעה.יש לוודא שכל מבחנות השברים נמצאות במקומן ולכסותן בניילון נצמד כדי למנוע זיהום. יש להוציא את האשכים מקפסולתם בצלחת נפרדת המכילה שמונה milliliters של Krebs. יש לבצע חתך בממברנה הדקה המקיפה את הרניבולים (seminiferous tubules) באמצעות זוג פינצטות.החזיקו כעת את הממברנה באמצעות זוג פינצטות נוסף. דחפו את הצינוריות החוצה והרחיקו אותן מהממברנה. העבירו ארבעה מיליליטר של Krebs המכיל את הצינוריות לכל מבחנה קונית המכילה 25 מיליליטר של תמיסת collagenase.נער בטמפרטורה של 33 °C למשך 10 דקות עד שהשפופיות יקבלו מראה דמוי ספגטי. לאחר מכן, המתן חמש דקות עד שהשפופיות ישקעו לתחתית המבחנה. שפוך את הנוזל העליון (supernatant) ושטוף פעמיים עם 25 milliliters של Krebs בטמפרטורת החדר, תוך מתן אפשרות לשפופיות לשקוע לתחתית המבחנה בכל פעם.השאירו כחמישה מיליליטר של Krebs בכל מבחנה. לאחר דגירה של השפופיות עם trypsin, השתמשו בפיפט עם פתח רחב כדי לערבב את התמיסה המכילה את השפופיות.שאיבה והזרקה (Pipetting) של התמיסה כ-10 פעמים. התמיסה אמורה להתחיל להיראות יותר כתליה של תאים בודדים (single cell suspension). כעת, סננו כל 30 milliliter של תליה של תאים בודדים דרך מסננת תאים עם רשת של 100 micron.לאחר שילוב תרחיפי התאים, ספרו את מספר התאים הכולל. ודאו שברז העצירה ממוקם כך שיכוון את הזרימה מתא התאים אל תא השקיעה. העבירו את שתי פלטות המגנטים להגדרה נמוכה.לאחר מכן, שפכו את תרחיף התאים אל תא התאים. פתחו את הברז כדי שהתאים יזרמו לאט אל תא השקיעה בקצב של 10 milliliters לדקה. לאחר מכן, סגרו את הברז כדי לשטוף את התאים אל מחוץ לתא התאים.שפכו חמישה מיליליטרים של תמיסת 0.5%BSA ונקזו לתא השקיעה בקצב של 10 מיליליטרים לדקה. סגרו את הברז וחזרו על שטיפת ה-BSA ארבע פעמים נוספות. כעת פתחו את התפסנים שבין תא התאים לשני הצילינדרים של שני ליטרים כדי לנקז מיד את הנוזל לתא השקיעה בקצב של 40 מיליליטרים לדקה, והתאימו את קצב הזרימה כך שטעינת מפל ה-BSA לתא השקיעה תארך כ-20 עד 30 דקות.יש לעקוב אחר היווצרותה של שכבה דקה ובלתי מופרעת של תאים המונחים מעל למדרג ה-BSA. לאחר טעינת רוב ה-BSA, סגרו את ברז העצירה וסובבו אותו למצב שיאפשר לנוזל להתנקז מתא השקיעה אל שפופרת הפרקציונציה. כעת כבו את לוחות הערבוב והניחו לתאים לשקוע במשך שעה ו-45 דקות.לאחר השלמת השקיעה, חבר את מבחנת השברים לאספן השברים. כוונן את קצב הזרימה באמצעות הברז כך שכל מבחנת איסוף תכיל 10 milliliters בכל 45 שניות. לאחר איסוף כל השברים, בצע אנליזה מיקרוסקופית של השברים כדי לזהות אוכלוסיות תאים שונות.ניתן להבחין בין סוגי תאים שונים על בסיס גודל התא ומורפולוגיית הגרעין כדי לקבוע את טוהר כל פראקציה. העברו 10 µL של תאים שנצבעו ב-DPI על גבי זכוכית כיסוי. הניחו למינציה (cover slip) ובצעו אנליזה באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנציה.שליפת הפרקציות הדומות בגודלן ובמורפולוגיה הגרעינית שלהן ליצירת אוכלוסיות של תאים. הכנה טיפוסית של כ-22 אשכים. פרוצדורה זו של השהיה (stay put) מניבה כ-10⁸ תאים.ניתן לנתח במהירות פראקציות של סוגי תאים מטגניים שונים באמצעות שילוב של מיקרוסקופיה של אור ופלואורסצנציה. תאי מיאוזיס, ספרמטוגוניה ותאים סומטיים דיפלואידיים הם התאים הגדולים ביותר שנמצאים באשכים, והם יכילו גרעינים גדולים שנצבעים באופן הומוגני יחסית ב-dpi. ספרמטידים עגולים הם תאים קטנים יותר עם גרעינים עגולים קטנים יותר, שבדרך כלל כוללים מרכז כרומטין שנצבע בצורה בהירה; ספרמטידים מוארכים המתעבים הם תאים קטנים בעלי גרעינים בצורת מגל.לאחר שילוב פראקציות התאים, ניתן לקבוע את רמת הניקיון באופן נוסף באמצעות ניתוח Western blot של ליזאטי התאים. סמנים נפוצים של תאי מיוזה הם חלבוני ה-Synaptonemal Complex 1. סמנים נפוצים של ספרמטידים בשלב העיבוי הם חלבוני מעבר (transition proteins) או פרוטמינים.ברגע שהטכניקה נלמדת היטב, ניתן לבצעה בשבע שעות אם היא מבוצעת כראוי לאחר פיתוחה. טכניקה זו סללה את הדרך עבור חוקרים בתחום הספרמטוגנזה לחקור תהליכים תאיים בסוגים שונים של תאים מהאשכים.

separation-spermatogenic-cell-types-using-sta-put-velocity

Research

JoVE Journal

Biology

ביולוגיה

שיטה יעילה להשגת מטוהרים שברים meiotic קיימא מהעכבר testis מתואר, המשלבת תא מעודן דיסוציאציה פרוטוקול עם מיון פלורסנט התא הפעיל (FACS). שיטה זו מנצלת את ההבדלים בתוכן דנ"א צפיפות גרעינית של שברים meiotic בדידים.

Cytometry זרימה טיהור תאים עכבר meiotic

סרטון זה מדגים את הליך הבידוד של תאי סרטולי מצינוריות זרע של עכברים, מרכיב באשכים. עיכול אנזימטי ושטיפות חוזרות ונשנות מקדמים את שחרורם של תאי סרטולי לתמיסה, אשר ניתן לגדל בתרבית נוספת לצורך התרבות וצמיחה.

בידוד תאי סרטולי בקרה חיסונית מצינוריות זרע עכבר

פרוטוקול חדש להכנה מכאנית של השעיות אשכים סלולריים מחומר מכרסם, הימנעות אנזימים וחומרי ניקוי, מתואר. השיטה היא מאוד פשוטה, מהירה, לשחזור, והופכת השעיות תא באיכות טובות, אשר מתאימות למיון זרימה ומיצוי RNA.

טכניקה פשוטה ויעילה להכנת השעיות תא אשכים

אנו מתארים אסטרטגיית מיון עבור זרעונים של עכברים באמצעות זרימה ציטומטרית. הזרעונים ממוינים לארבע אוכלוסיות טהורות ביותר, כולל עגולות (שלבי זרע 1-9), התארכות מוקדמת (שלבי זרע 10-12), התארכות מאוחרת (שלבי זרע 13-14) וזרעונים מוארכים (שלבי זרע 15-16). צביעת DNA, גודל וגרגיריות משמשים כפרמטרים לבחירה.

שלב מסוים מיון של Spermatids העכבר על ידי cytometry הזרימה

מיוזה הוא תהליך התפתחותי שבו נוצרות גמטות דרך סבב אחד של שכפול ה-DNA, שני סיבובים רצופים של כרומוזום סגרגציה. מיוזה יונקים יכולים להיבדק על ידי ניצול טכניקה כדי להכין ממרחים כרומוזום meiotic. . הנה, נדגים שיטה של הכנת השטח-התפשטות גרעינים של העכבר spermatocytes.

הכנה של כרומוזום Meiotic מתפשטת העכבר Spermatocytes

עבודה זו מתארת ​​את סטנדרטיזציה של שיטה להשיג אוכלוסיות תאים נבט מטופלים מרקמת האשכים של מינים שונים של יונקים. זהו פרוטוקול פשוט המשלב דיסוציאציה פשוטה מכנית, מכתים עם Hoechst-33342 ו propidium iodide, ו FACS מיון, עם יישומים רחב במחקרים השוואתיים של ביולוגיה הרבייה הגברית.

גישה סטנדרטית עבור multispecies טיהור תאים יונקים זכר יונקים על ידי דיסוציאציה רקמות מכנית זרימת cytometry

מטרת טכניקה זו סקווש צנורית הוא להעריך במהירות תכונות cytological של פיתוח העכבר spermatocytes תוך שמירה על תקינות הסלולר. שיטה זו מאפשרת הלימוד בכל שלבי יצירת זרע, ניתן ליישם בקלות לצד הביוכימי והמולקולרי ביולוגי גישות אחרות לצורך המחקר של העכבר מיוזה.

טכניקה סקווש צנורית וכמה לניתוח Cytological של יצירת זרע שימוש במודל עכבר

בנייר זה, אנו שואפים לתאר את הביצועים של הטכניקה צנטריפוגה הדרגתיות צפיפות ויישומו בחקר הפיזיולוגיה של זרע.

אוסף זרע באיכות דיפרנציאלית בעזרת צנטריפוגה הדרגתיות צפיפות

מוצג כאן הוא פרוטוקול עבור העשרת החומר העשיר pachytene, עגול spermatocytes, ו להאריך spermatocytes מתוך האשכים עכבר למבוגרים באמצעות סרום מתמשך פרה אלבומין הדרגתי עם מעבדה סטנדרטית ציוד.

העשרה של פכיטנא ספרציטים וספרטידים מאשכים עכבר באמצעות ציוד מעבדה סטנדרטית

כאן אנו מציגים שיטה פשוטה ויעילה לבודד תאי חיידקים מיוטיים ופוסט-מיוטיים חיים מערכי עכבר בוגרים. באמצעות ציטוקסיות נמוכה, צבע מחייב DNA סגול-נרגש ומיון תאים המופעלים על-ידי פלואורסצנה, ניתן לבודד אוכלוסיות תאי זרע מועשרים מאוד עבור יישומים רבים במורד הזרם.

בידוד של תאי זרע מורין באמצעות צבע מחייב DNA סגול-נרגש תא חרוש

כאן, אנו מציגים שיטה לביצוע הזרקת זרע עגולה (ROSI) בעכברים, טכניקה עם יישומים קליניים מבטיחים ותועלת לחקר המנגנונים העומדים בבסיס התפתחות עוברית.

הזרקת זרע עגולה לעכבר

למד להפריד תאי זרע שונים בשיטת STA-PUT לסדימנטציית מהירות. טכניקה זו מאפשרת בידוד אוכלוסיות תאים מבוסס גודל וצפיפות מבחני עכברים לחקר תהליכי סpermatogenesis.

הפרדה של סוגי תאי Spermatogenic שימוש בשקיעה מהירות STA-PUT

גלה סרטונים נוספים