שיבוט מולקולרי הוא קבוצה של טכניקות המשמשות להחדרת DNA רקומביננטי ממקור פרוקריוטי או אאוקריוטי לרכב משכפל כגון פלסמידים או וקטורים ויראליים. שיבוט מתייחס ליצירת עותקים רבים של שבר DNA של עניין, כגון גן. בסרטון זה תלמד על השלבים השונים של שיבוט מולקולרי, כיצד להגדיר את ההליך, ויישומים שונים של טכניקה זו.
לפחות שתי מולקולות דנ"א חשובות נדרשות לפני תחילת השיבוט. ראשית, והכי חשוב, אתה צריך את שבר ה- DNA שאתה הולך לשכפל, הידוע גם בשם להוסיף. זה יכול לבוא פרוקריוטה, אאוקריוטה, אורגניזם נכחד, או שזה יכול להיווצר באופן מלאכותי במעבדה. באמצעות שיבוט מולקולרי אנו יכולים ללמוד יותר על הפונקציה של גן מסוים.
שנית, אתה צריך וקטור. וקטור הוא DNA פלסמיד המשמש ככלי בביולוגיה מולקולרית כדי ליצור עותקים נוספים של חלבון או לייצר חלבון גן מסוים. פלסמידים הם דוגמה לווקטור, והם עגולים, כרומוזומליים נוספים, DNA המשוכפל על ידי חיידקים.
פלסמיד בדרך כלל יש אתר שיבוט מרובים או MCS, אזור זה מכיל אתרי זיהוי עבור אנדונקולאזים הגבלה שונים הידוע גם בשם אנזימי הגבלה. תוספות שונות ניתן לשלב לתוך plasmid על ידי טכניקה הנקראת קשירה. וקטור הפלסמיד מכיל גם מקור של שכפול, המאפשר לו להיות משוכפל בחיידקים. בנוסף, לפלסמיד יש גן אנטיביוטי. אם חיידקים משלבים את הפלסמיד, הוא ישרוד במדיה המכילה את האנטיביוטיקה. זה מאפשר את הבחירה של חיידקים שעברו שינוי בהצלחה.
ההוספה והווקטור משובטים לתוך אורגניזם של תאים מארחים, הנפוץ ביותר בשימוש בשיבוט מולקולרי הוא E. coli. E. coli גדל במהירות, זמין באופן נרחב ויש לו וקטורים שיבוט שונים רבים המיוצרים מסחרית. אוקריוטים, כמו, שמרים יכולים לשמש גם כאורגניזמים מארחים לווקטורים.
השלב הראשון של הליך השיבוט המולקולרי הכללי הוא להשיג את ההוספה הרצויה, אשר ניתן לגזור מ- DNA או mRNA מכל סוג תא. הווקטור האופטימלי והאורגניזם המארח שלו נבחרים לאחר מכן על בסיס סוג ההוספה ומה ייעשה בסופו של דבר עם זה. תגובת שרשרת פולימראז, או שיטה מבוססת PCR משמש לעתים קרובות כדי לשכפל את ההוספה.
לאחר מכן על ידי שימוש בסדרה של תגובות אנזימטיות, הכנס ועיכול מחוברים יחד ומוכנסים לאורגניזם המארח לשכפול המוני. וקטורים משוכפלים מטוהרים מחיידקים, ובעקבות עיכול מוגבל, מנותחים על ג'ל. שברים מטוהרים ג'ל נשלחים מאוחר יותר לרצף כדי לוודא כי הכניסה היא שבר ה- DNA הרצוי.
בואו נסתכל קצת יותר מפורט על אופן השיבוט המולקולרי. לפני שתתחיל, אתה רוצה לתכנן את אסטרטגיית השיבוט שלך, לפני ביצוע כל ניסיון שיבוט על הספסל. לדוגמה, כל וקטור plasmid נתון, יספק לך מספר סופי של אתרי הגבלה לשלב את ההוספה דרך אתר שיבוט מרובים. יהיה עליך לבחור אתרי הגבלה שלא נמצאו בהוספה שלך כדי שלא תדבק בה. אתה עלול להישאר עם מצב שבו אתה נאלץ להצטרף שבר קצה קהה עם אחד שיש לו overhang. אם כן, אז באמצעות קטע klenow כדי להגדיר קשירת קצה קהה עשוי להיות האפשרות היחידה שלך כדי לקבל את ההוספה לתוך הווקטור הרצוי שלך. הבנת כלי השיבוט המולקולריים השונים העומדים לרשותכם, כמו גם לבוא עם אסטרטגיה זהירה לפני שתתחיל שיבוט יכול להיות חיסכון זמן עצום.
מקור ה- DNA לשיבוט מולקולרי יכול להיות מבודד כמעט מכל סוג של דגימת תא או רקמה באמצעות טכניקות מיצוי פשוטות. לאחר בידוד, ניתן להשתמש ב- PCR כדי להגביר את ההוספה.
ברגע שהתוספת מוגברת הן היא והן הווקטור מתעכלים על ידי אנזימי הגבלה, הידועים גם בשם אנדונקולאזים מגבילים.
לאחר העיכול, ניתן להפעיל את ההוספה והווקטור על ג'ל ולטוהר על ידי תהליך הנקרא טיהור ג'ל. ביחס לווקטור, צעד זה יעזור לטהר פלסמיד ליניארי מפלסמיד לא מלוטש, אשר נוטה להופיע ככתם משקל מולקולרי גבוה על ג'ל.
לאחר ג'ל טיהור התקציר, התוסף הוא קשירה או מחובר plasmid, באמצעות אנזים הנקרא ligase DNA.
באופן כללי, זה תמיד רעיון טוב להגדיר קשירה, כך היחס של להוסיף לווקטור הוא 3 ל 1, אשר מבטיח כי רק כמות קטנה של וקטור יהיה ligate עצמית. לאחר שקשירת הקרח נקבעה על קרח, היא מדגירה בין 14-25 מעלות צלזיוס בין שעה ללילה.
לאחר מכן, טרנספורמציה מבוצעת כדי להציג את וקטור plasmid לתוך המארח כי ישכפל אותו.
חיידקי טרנספורמציה הבאים מצופים על צלחות אגר עם אנטיביוטיקה ודגרה לילה ב 37°C. מכיוון שהפלסטימיד מכיל גן עמיד לאנטיביוטיקה, טרנספורמציה מוצלחת תייצר מושבות חיידקיות כאשר יגדלו על לוחות אגר בנוכחות אנטיביוטיקה. לאחר מכן ניתן לקטוף מושבות בודדות מהצלחת שהשתנתה, להציב אותה למדיית צמיחה נוזלית בצינורות ממוספרים, ולהכניס אותה לאינקובטור רועד להתרחבות. נפח קטן של תרבות נוזלית מתווסף לצלחת אגר ממוספרת, בעוד שאר התרבות עוברת לטיהור פלסמיד. ערכת המספור המציינת את זהותן של מושבות חיידקים שמהן ינוצלו הפלסמידים בסופו של דבר נשמרת לאורך כל תהליך הטיהור של פלסמיד.
דגימה של פלסמיד מטוהר נחתכת לאחר מכן עם אנזימי הגבלה. לאחר מכן התקציר נטען ומופעל על הג'ל על מנת לבדוק את נוכחותו של הכנס, אשר יוודא כי מושבת החיידקים השתנתה עם plasmid המכיל תוספת ולא פלסמיד קשירה עצמית. חיידקים שאומתו כי השתנו עם plasmid המכילה, מורחבים לטיהור פלסמיד נוסף. רצף משמש כצעד אימות סופי כדי לאשר כי גן העניין שלך שוכפל.
שיבוט מולקולרי יכול לשמש עבור מספר כמעט בלתי מוגבל של יישומים. לדוגמה, כאשר תבנית mRNA מתומללת לאחור ליצירת cDNA, או DNA משלים, על-ידי אנזים הנקרא תעתיק הפוך ולאחר מכן PCR משמש להגברת ה- cDNA, ניתן להשתמש בשיבוט מולקולרי ליצירת ספריית cDNA – ספריה של כל הגנים המבוטאים על-ידי סוג תא נתון.
שיבוט מולקולרי יכול לשמש גם כדי לקחת סדרה של גנים, או אשכול גנים מזן חיידקי אחד, לארגן אותם מחדש לפלסמידים שהופכים בזן אחר, כך שניתן ליצור מסלול ביוסינתזה שלם כדי לייצר מולקולה מורכבת.
באמצעות שיבוט מולקולרי, ניתן ליצור ספריית מוטציות על ידי הבעת פלסמיד מטרה בזן חיידקי מיוחד המשתמש בפולימראז נוטה שגיאה כאשר הוא מתרבת בטמפרטורות מסוימות. המוטציות יכולות להיות מאופיינות ברצף. חיידקים שעברו טרנספורמציה עם גנים מוטנטיים יכולים להיבדק עם תרופות או כימיקלים שונים כדי לראות אילו מושבות חיידקים התפתחו כדי להיות עמידות לתרופות.
הודות לשיבוט מולקולרי, ניתן לשלב גנים עיתונאיים בפלסטיות DNA, גן עיתונאי נפוץ הוא חלבון פלואורסצנטי ירוק או GFP, הפולט פלואורסצנטיות ירוקה כאשר הם נחשפים לאור UV. גן כתב יכול גם להיות מוכנס לתוך וירוס אלפא כדי להראות זיהום יתושים ו transmissibility בתאים.
הרגע צפית בסרטון של ג'ובים על שיבוט מולקולרי. עכשיו אתה צריך להבין איך שיבוט מולקולרי עובד ואיך הטכניקה יכולה לשמש בביולוגיה מולקולרית. כמו תמיד, תודה שצפית!
שיבוט מולקולרי הוא מערכת של שיטות, המשמשות להחדרת דנ"א רקומביננטי לווקטור - נשא של מולקולות דנ"א שישכפלו שברי דנ"א רקומביננטיים באורגניזמים מארחים. שב…
שיבוט מולקולרי הוא קבוצה של טכניקות המשמשות להחדרת DNA רקומביננטי ממקור פרוקריוטי או אאוקריוטי לרכב משכפל כגון פלסמידים או וקטורים ויראליים. שיבוט מתייחס ליצירת עותקים רבים של שבר DNA של עניין, כגון גן. בסרטון זה תלמד על השלבים השונים של שיבוט מולקולרי, כיצד להגדיר את ההליך, ויישומים שונים של טכניקה זו.
לפחות שתי מולקולות דנ"א חשובות נדרשות לפני תחילת השיבוט. ראשית, והכי חשוב, אתה צריך את שבר ה- DNA שאתה הולך לשכפל, הידוע גם בשם להוסיף. זה יכול לבוא פרוקריוטה, אאוקריוטה, אורגניזם נכחד, או שזה יכול להיווצר באופן מלאכותי במעבדה. באמצעות שיבוט מולקולרי אנו יכולים ללמוד יותר על הפונקציה של גן מסוים.
שנית, אתה צריך וקטור. וקטור הוא DNA פלסמיד המשמש ככלי בביולוגיה מולקולרית כדי ליצור עותקים נוספים של חלבון או לייצר חלבון גן מסוים. פלסמידים הם דוגמה לווקטור, והם עגולים, כרומוזומליים נוספים, DNA המשוכפל על ידי חיידקים.
פלסמיד בדרך כלל יש אתר שיבוט מרובים או MCS, אזור זה מכיל אתרי זיהוי עבור אנדונקולאזים הגבלה שונים הידוע גם בשם אנזימי הגבלה. תוספות שונות ניתן לשלב לתוך plasmid על ידי טכניקה הנקראת קשירה. וקטור הפלסמיד מכיל גם מקור של שכפול, המאפשר לו להיות משוכפל בחיידקים. בנוסף, לפלסמיד יש גן אנטיביוטי. אם חיידקים משלבים את הפלסמיד, הוא ישרוד במדיה המכילה את האנטיביוטיקה. זה מאפשר את הבחירה של חיידקים שעברו שינוי בהצלחה.
ההוספה והווקטור משובטים לתוך אורגניזם של תאים מארחים, הנפוץ ביותר בשימוש בשיבוט מולקולרי הוא E. coli. E. coli גדל במהירות, זמין באופן נרחב ויש לו וקטורים שיבוט שונים רבים המיוצרים מסחרית. אוקריוטים, כמו, שמרים יכולים לשמש גם כאורגניזמים מארחים לווקטורים.
השלב הראשון של הליך השיבוט המולקולרי הכללי הוא להשיג את ההוספה הרצויה, אשר ניתן לגזור מ- DNA או mRNA מכל סוג תא. הווקטור האופטימלי והאורגניזם המארח שלו נבחרים לאחר מכן על בסיס סוג ההוספה ומה ייעשה בסופו של דבר עם זה. תגובת שרשרת פולימראז, או שיטה מבוססת PCR משמש לעתים קרובות כדי לשכפל את ההוספה.
לאחר מכן על ידי שימוש בסדרה של תגובות אנזימטיות, הכנס ועיכול מחוברים יחד ומוכנסים לאורגניזם המארח לשכפול המוני. וקטורים משוכפלים מטוהרים מחיידקים, ובעקבות עיכול מוגבל, מנותחים על ג'ל. שברים מטוהרים ג'ל נשלחים מאוחר יותר לרצף כדי לוודא כי הכניסה היא שבר ה- DNA הרצוי.
בואו נסתכל קצת יותר מפורט על אופן השיבוט המולקולרי. לפני שתתחיל, אתה רוצה לתכנן את אסטרטגיית השיבוט שלך, לפני ביצוע כל ניסיון שיבוט על הספסל. לדוגמה, כל וקטור plasmid נתון, יספק לך מספר סופי של אתרי הגבלה לשלב את ההוספה דרך אתר שיבוט מרובים. יהיה עליך לבחור אתרי הגבלה שלא נמצאו בהוספה שלך כדי שלא תדבק בה. אתה עלול להישאר עם מצב שבו אתה נאלץ להצטרף שבר קצה קהה עם אחד שיש לו overhang. אם כן, אז באמצעות קטע klenow כדי להגדיר קשירת קצה קהה עשוי להיות האפשרות היחידה שלך כדי לקבל את ההוספה לתוך הווקטור הרצוי שלך. הבנת כלי השיבוט המולקולריים השונים העומדים לרשותכם, כמו גם לבוא עם אסטרטגיה זהירה לפני שתתחיל שיבוט יכול להיות חיסכון זמן עצום.
מקור ה- DNA לשיבוט מולקולרי יכול להיות מבודד כמעט מכל סוג של דגימת תא או רקמה באמצעות טכניקות מיצוי פשוטות. לאחר בידוד, ניתן להשתמש ב- PCR כדי להגביר את ההוספה.
ברגע שהתוספת מוגברת הן היא והן הווקטור מתעכלים על ידי אנזימי הגבלה, הידועים גם בשם אנדונקולאזים מגבילים.
לאחר העיכול, ניתן להפעיל את ההוספה והווקטור על ג'ל ולטוהר על ידי תהליך הנקרא טיהור ג'ל. ביחס לווקטור, צעד זה יעזור לטהר פלסמיד ליניארי מפלסמיד לא מלוטש, אשר נוטה להופיע ככתם משקל מולקולרי גבוה על ג'ל.
לאחר ג'ל טיהור התקציר, התוסף הוא קשירה או מחובר plasmid, באמצעות אנזים הנקרא ligase DNA.
באופן כללי, זה תמיד רעיון טוב להגדיר קשירה, כך היחס של להוסיף לווקטור הוא 3 ל 1, אשר מבטיח כי רק כמות קטנה של וקטור יהיה ligate עצמית. לאחר שקשירת הקרח נקבעה על קרח, היא מדגירה בין 14-25 מעלות צלזיוס בין שעה ללילה.
לאחר מכן, טרנספורמציה מבוצעת כדי להציג את וקטור plasmid לתוך המארח כי ישכפל אותו.
חיידקי טרנספורמציה הבאים מצופים על צלחות אגר עם אנטיביוטיקה ודגרה לילה ב 37°C. מכיוון שהפלסטימיד מכיל גן עמיד לאנטיביוטיקה, טרנספורמציה מוצלחת תייצר מושבות חיידקיות כאשר יגדלו על לוחות אגר בנוכחות אנטיביוטיקה. לאחר מכן ניתן לקטוף מושבות בודדות מהצלחת שהשתנתה, להציב אותה למדיית צמיחה נוזלית בצינורות ממוספרים, ולהכניס אותה לאינקובטור רועד להתרחבות. נפח קטן של תרבות נוזלית מתווסף לצלחת אגר ממוספרת, בעוד שאר התרבות עוברת לטיהור פלסמיד. ערכת המספור המציינת את זהותן של מושבות חיידקים שמהן ינוצלו הפלסמידים בסופו של דבר נשמרת לאורך כל תהליך הטיהור של פלסמיד.
דגימה של פלסמיד מטוהר נחתכת לאחר מכן עם אנזימי הגבלה. לאחר מכן התקציר נטען ומופעל על הג'ל על מנת לבדוק את נוכחותו של הכנס, אשר יוודא כי מושבת החיידקים השתנתה עם plasmid המכיל תוספת ולא פלסמיד קשירה עצמית. חיידקים שאומתו כי השתנו עם plasmid המכילה, מורחבים לטיהור פלסמיד נוסף. רצף משמש כצעד אימות סופי כדי לאשר כי גן העניין שלך שוכפל.
שיבוט מולקולרי יכול לשמש עבור מספר כמעט בלתי מוגבל של יישומים. לדוגמה, כאשר תבנית mRNA מתומללת לאחור ליצירת cDNA, או DNA משלים, על-ידי אנזים הנקרא תעתיק הפוך ולאחר מכן PCR משמש להגברת ה- cDNA, ניתן להשתמש בשיבוט מולקולרי ליצירת ספריית cDNA – ספריה של כל הגנים המבוטאים על-ידי סוג תא נתון.
שיבוט מולקולרי יכול לשמש גם כדי לקחת סדרה של גנים, או אשכול גנים מזן חיידקי אחד, לארגן אותם מחדש לפלסמידים שהופכים בזן אחר, כך שניתן ליצור מסלול ביוסינתזה שלם כדי לייצר מולקולה מורכבת.
באמצעות שיבוט מולקולרי, ניתן ליצור ספריית מוטציות על ידי הבעת פלסמיד מטרה בזן חיידקי מיוחד המשתמש בפולימראז נוטה שגיאה כאשר הוא מתרבת בטמפרטורות מסוימות. המוטציות יכולות להיות מאופיינות ברצף. חיידקים שעברו טרנספורמציה עם גנים מוטנטיים יכולים להיבדק עם תרופות או כימיקלים שונים כדי לראות אילו מושבות חיידקים התפתחו כדי להיות עמידות לתרופות.
הודות לשיבוט מולקולרי, ניתן לשלב גנים עיתונאיים בפלסטיות DNA, גן עיתונאי נפוץ הוא חלבון פלואורסצנטי ירוק או GFP, הפולט פלואורסצנטיות ירוקה כאשר הם נחשפים לאור UV. גן כתב יכול גם להיות מוכנס לתוך וירוס אלפא כדי להראות זיהום יתושים ו transmissibility בתאים.
הרגע צפית בסרטון של ג'ובים על שיבוט מולקולרי. עכשיו אתה צריך להבין איך שיבוט מולקולרי עובד ואיך הטכניקה יכולה לשמש בביולוגיה מולקולרית. כמו תמיד, תודה שצפית!
שיבוט מולקולרי הוא קבוצה של טכניקות המשמשות להחדרת DNA רקומביננטי ממקור פרוקריוטי או אאוקריוטי לרכב משכפל כגון פלסמידים או וקטורים ויראליים. שיבוט מתייחס ליצירת עותקים רבים של שבר DNA של עניין, כגון גן. בסרטון זה תלמד על השלבים השונים של שיבוט מולקולרי, כיצד להגדיר את ההליך, ויישומים שונים של טכניקה זו.
לפחות שתי מולקולות דנ"א חשובות נדרשות לפני תחילת השיבוט. ראשית, והכי חשוב, אתה צריך את שבר ה- DNA שאתה הולך לשכפל, הידוע גם בשם להוסיף. זה יכול לבוא פרוקריוטה, אאוקריוטה, אורגניזם נכחד, או שזה יכול להיווצר באופן מלאכותי במעבדה. באמצעות שיבוט מולקולרי אנו יכולים ללמוד יותר על הפונקציה של גן מסוים.
שנית, אתה צריך וקטור. וקטור הוא DNA פלסמיד המשמש ככלי בביולוגיה מולקולרית כדי ליצור עותקים נוספים של חלבון או לייצר חלבון גן מסוים. פלסמידים הם דוגמה לווקטור, והם עגולים, כרומוזומליים נוספים, DNA המשוכפל על ידי חיידקים.
פלסמיד בדרך כלל יש אתר שיבוט מרובים או MCS, אזור זה מכיל אתרי זיהוי עבור אנדונקולאזים הגבלה שונים הידוע גם בשם אנזימי הגבלה. תוספות שונות ניתן לשלב לתוך plasmid על ידי טכניקה הנקראת קשירה. וקטור הפלסמיד מכיל גם מקור של שכפול, המאפשר לו להיות משוכפל בחיידקים. בנוסף, לפלסמיד יש גן אנטיביוטי. אם חיידקים משלבים את הפלסמיד, הוא ישרוד במדיה המכילה את האנטיביוטיקה. זה מאפשר את הבחירה של חיידקים שעברו שינוי בהצלחה.
ההוספה והווקטור משובטים לתוך אורגניזם של תאים מארחים, הנפוץ ביותר בשימוש בשיבוט מולקולרי הוא E. coli. E. coli גדל במהירות, זמין באופן נרחב ויש לו וקטורים שיבוט שונים רבים המיוצרים מסחרית. אוקריוטים, כמו, שמרים יכולים לשמש גם כאורגניזמים מארחים לווקטורים.
השלב הראשון של הליך השיבוט המולקולרי הכללי הוא להשיג את ההוספה הרצויה, אשר ניתן לגזור מ- DNA או mRNA מכל סוג תא. הווקטור האופטימלי והאורגניזם המארח שלו נבחרים לאחר מכן על בסיס סוג ההוספה ומה ייעשה בסופו של דבר עם זה. תגובת שרשרת פולימראז, או שיטה מבוססת PCR משמש לעתים קרובות כדי לשכפל את ההוספה.
לאחר מכן על ידי שימוש בסדרה של תגובות אנזימטיות, הכנס ועיכול מחוברים יחד ומוכנסים לאורגניזם המארח לשכפול המוני. וקטורים משוכפלים מטוהרים מחיידקים, ובעקבות עיכול מוגבל, מנותחים על ג'ל. שברים מטוהרים ג'ל נשלחים מאוחר יותר לרצף כדי לוודא כי הכניסה היא שבר ה- DNA הרצוי.
בואו נסתכל קצת יותר מפורט על אופן השיבוט המולקולרי. לפני שתתחיל, אתה רוצה לתכנן את אסטרטגיית השיבוט שלך, לפני ביצוע כל ניסיון שיבוט על הספסל. לדוגמה, כל וקטור plasmid נתון, יספק לך מספר סופי של אתרי הגבלה לשלב את ההוספה דרך אתר שיבוט מרובים. יהיה עליך לבחור אתרי הגבלה שלא נמצאו בהוספה שלך כדי שלא תדבק בה. אתה עלול להישאר עם מצב שבו אתה נאלץ להצטרף שבר קצה קהה עם אחד שיש לו overhang. אם כן, אז באמצעות קטע klenow כדי להגדיר קשירת קצה קהה עשוי להיות האפשרות היחידה שלך כדי לקבל את ההוספה לתוך הווקטור הרצוי שלך. הבנת כלי השיבוט המולקולריים השונים העומדים לרשותכם, כמו גם לבוא עם אסטרטגיה זהירה לפני שתתחיל שיבוט יכול להיות חיסכון זמן עצום.
מקור ה- DNA לשיבוט מולקולרי יכול להיות מבודד כמעט מכל סוג של דגימת תא או רקמה באמצעות טכניקות מיצוי פשוטות. לאחר בידוד, ניתן להשתמש ב- PCR כדי להגביר את ההוספה.
ברגע שהתוספת מוגברת הן היא והן הווקטור מתעכלים על ידי אנזימי הגבלה, הידועים גם בשם אנדונקולאזים מגבילים.
לאחר העיכול, ניתן להפעיל את ההוספה והווקטור על ג'ל ולטוהר על ידי תהליך הנקרא טיהור ג'ל. ביחס לווקטור, צעד זה יעזור לטהר פלסמיד ליניארי מפלסמיד לא מלוטש, אשר נוטה להופיע ככתם משקל מולקולרי גבוה על ג'ל.
לאחר ג'ל טיהור התקציר, התוסף הוא קשירה או מחובר plasmid, באמצעות אנזים הנקרא ligase DNA.
באופן כללי, זה תמיד רעיון טוב להגדיר קשירה, כך היחס של להוסיף לווקטור הוא 3 ל 1, אשר מבטיח כי רק כמות קטנה של וקטור יהיה ligate עצמית. לאחר שקשירת הקרח נקבעה על קרח, היא מדגירה בין 14-25 מעלות צלזיוס בין שעה ללילה.
לאחר מכן, טרנספורמציה מבוצעת כדי להציג את וקטור plasmid לתוך המארח כי ישכפל אותו.
חיידקי טרנספורמציה הבאים מצופים על צלחות אגר עם אנטיביוטיקה ודגרה לילה ב 37°C. מכיוון שהפלסטימיד מכיל גן עמיד לאנטיביוטיקה, טרנספורמציה מוצלחת תייצר מושבות חיידקיות כאשר יגדלו על לוחות אגר בנוכחות אנטיביוטיקה. לאחר מכן ניתן לקטוף מושבות בודדות מהצלחת שהשתנתה, להציב אותה למדיית צמיחה נוזלית בצינורות ממוספרים, ולהכניס אותה לאינקובטור רועד להתרחבות. נפח קטן של תרבות נוזלית מתווסף לצלחת אגר ממוספרת, בעוד שאר התרבות עוברת לטיהור פלסמיד. ערכת המספור המציינת את זהותן של מושבות חיידקים שמהן ינוצלו הפלסמידים בסופו של דבר נשמרת לאורך כל תהליך הטיהור של פלסמיד.
דגימה של פלסמיד מטוהר נחתכת לאחר מכן עם אנזימי הגבלה. לאחר מכן התקציר נטען ומופעל על הג'ל על מנת לבדוק את נוכחותו של הכנס, אשר יוודא כי מושבת החיידקים השתנתה עם plasmid המכיל תוספת ולא פלסמיד קשירה עצמית. חיידקים שאומתו כי השתנו עם plasmid המכילה, מורחבים לטיהור פלסמיד נוסף. רצף משמש כצעד אימות סופי כדי לאשר כי גן העניין שלך שוכפל.
שיבוט מולקולרי יכול לשמש עבור מספר כמעט בלתי מוגבל של יישומים. לדוגמה, כאשר תבנית mRNA מתומללת לאחור ליצירת cDNA, או DNA משלים, על-ידי אנזים הנקרא תעתיק הפוך ולאחר מכן PCR משמש להגברת ה- cDNA, ניתן להשתמש בשיבוט מולקולרי ליצירת ספריית cDNA – ספריה של כל הגנים המבוטאים על-ידי סוג תא נתון.
שיבוט מולקולרי יכול לשמש גם כדי לקחת סדרה של גנים, או אשכול גנים מזן חיידקי אחד, לארגן אותם מחדש לפלסמידים שהופכים בזן אחר, כך שניתן ליצור מסלול ביוסינתזה שלם כדי לייצר מולקולה מורכבת.
באמצעות שיבוט מולקולרי, ניתן ליצור ספריית מוטציות על ידי הבעת פלסמיד מטרה בזן חיידקי מיוחד המשתמש בפולימראז נוטה שגיאה כאשר הוא מתרבת בטמפרטורות מסוימות. המוטציות יכולות להיות מאופיינות ברצף. חיידקים שעברו טרנספורמציה עם גנים מוטנטיים יכולים להיבדק עם תרופות או כימיקלים שונים כדי לראות אילו מושבות חיידקים התפתחו כדי להיות עמידות לתרופות.
הודות לשיבוט מולקולרי, ניתן לשלב גנים עיתונאיים בפלסטיות DNA, גן עיתונאי נפוץ הוא חלבון פלואורסצנטי ירוק או GFP, הפולט פלואורסצנטיות ירוקה כאשר הם נחשפים לאור UV. גן כתב יכול גם להיות מוכנס לתוך וירוס אלפא כדי להראות זיהום יתושים ו transmissibility בתאים.
הרגע צפית בסרטון של ג'ובים על שיבוט מולקולרי. עכשיו אתה צריך להבין איך שיבוט מולקולרי עובד ואיך הטכניקה יכולה לשמש בביולוגיה מולקולרית. כמו תמיד, תודה שצפית!
View the full transcript and gain access to JoVE Science Education videos
Q1: What are the two main DNA molecules required to begin molecular cloning?
Molecular cloning requires an insert—the DNA fragment you want to copy, which can come from prokaryotes, eukaryotes, or be artificially created—and a vector, typically plasmid DNA that replicates in host cells. The vector carries recognition sites for restriction enzymes and contains an origin of replication and antibiotic resistance gene for selection.
Q2: How does a plasmid vector help identify successfully transformed bacteria?
Plasmids contain an antibiotic resistance gene that allows bacteria carrying the plasmid to survive on antibiotic-containing media. When transformed bacteria are plated on agar with antibiotics and incubated overnight at 37°C, only colonies with the plasmid survive, making antibiotic selection an effective screening method for successful transformation.
Q3: What is the purpose of gel purification in the molecular cloning procedure?
Gel purification separates and isolates desired DNA fragments after restriction enzyme digestion. For plasmids, this step removes uncut circular plasmid that appears as high molecular weight smear, leaving only linearized plasmid ready for ligation with the insert. This ensures clean, pure DNA for downstream steps.
Q4: Why is planning a cloning strategy important before starting the procedure?
Planning ensures you select restriction sites absent from your insert to avoid cutting it during digestion. You must also verify that your chosen sites exist in the plasmid's multiple cloning site. This strategy prevents failed cloning attempts and saves time by identifying potential issues like needing blunt-end ligation before beginning.
Q5: What is the optimal insert-to-vector ratio for DNA ligation reactions?
A 3-to-1 insert-to-vector ratio is recommended for DNA ligation reactions. This ratio ensures minimal self-ligation of the vector alone. After setup on ice, the ligation is incubated between 14-25°C for 1 hour to overnight to allow DNA ligase to join the insert and plasmid.
Q6: How is sequencing used to verify successful molecular cloning?
Sequencing serves as the final verification step to confirm that the gene of interest has been correctly cloned into the plasmid. After restriction digestion confirms insert presence on a gel, bacteria are expanded and plasmids purified. Sequencing then verifies the insert sequence matches the desired DNA fragment.
Q7: What are some practical applications of molecular cloning in research?
Molecular cloning enables creation of cDNA libraries from mRNA, reconstruction of biosynthetic pathways by reorganizing gene clusters between bacterial strains, generation of mutant libraries using error-prone polymerases, and incorporation of reporter genes like green fluorescent protein into plasmids to visualize gene expression and viral infection.
פרקים בסרטון זה
0:00
Overview
0:42
Basic Principles
3:47
Procedure
7:45
Applications
9:34
Summary