RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
he_IL
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/50759-v
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
אנו מציגים הכנה להדמית מניפולציה סידן איתות בהאנדותל כלי הדם מקומי, ללא פגע. צינורות אנדותל מבודדים טריים מעורקי התנגדות עכבר אספקת שרירים שלד לשמור במורפולוגיה vivo ואיתות דינמית בתוך ובין תאי שכנים. ניתן להכין צינורות אנדותל מmicrovessels של רקמות ואיברים אחרים.
המטרה הכוללת של הליך זה היא לבודד צינורות תאי אנדותל מהעורק האפיגסטרי העליון של העכבר או SEA כדי לחקור את דינמיקת האיתות התוך-תאית והבין-תאית של אנדותל מיקרו-וסקולרי שלם מקומי. זה מושג על ידי בידוד ראשון של ה-SEA מדופן שרירי השלד בבטן העכבר. בשלב השני, הכלי מתעכל בעדינות ובאופן סומטי, ולאחר מכן עובר TATed בזהירות כדי לנתק את תאי השריר החלק והאדוונטיטיה מצינור תאי האנדותל.
בשלב האחרון, הצינור מאובטח בתא זרימה ומתמזג סופר עם תמיסת מלח פיזיולוגית. בסופו של דבר, ניתן להשתמש בהדמיה קונפוקלית כדי לדמיין איתות סידן בצינור האנדותל המיקרו-וסקולרי השלם המקורי. היתרון העיקרי של טכניקה זו על פני שיטות קיימות כמו תרבית תאי אנדותל, הוא שתאי האנדותל המרכיבים את הצינור ושומרים על המורפולוגיה הטבעית שלהם, ביטוי החלבון וההיענות שלהם, האנדותל הוא חלק בלתי נפרד מבקרת זרימת הדם בכל הגוף.
היישום של טכניקה זו מאפשר לנו לחקור אירועי איתות בין תאים המתווכים את בקרת זרימת הדם וכיצד הם עלולים להשתבש במהלך תפקוד לקוי של כלי הדם. כדי לבודד את ה-SEA תחילה, בצע חתך קטן דרך העור ממש מעל אזור אזור הערווה של עכבר מורדם, האריך את החתך לרוחב לכל כיוון לגפיים האחוריות המתאימות, ולאחר מכן המשך את סיבוב החתך לאורך קו האמצע הגחוני עד לראש כלוב הצלעות, והאריך עוד יותר את החתך לרוחב לכל כיוון לארבע הגפיים המתאימות. כעת הרם בעדינות את העור וחתוך את רקמת החיבור המחזיקה את העור לשריר הבסיסי, תוך חשיפת כל שטח שרירי הבטן.
להשקות את השריר החשוף בתמיסת מלח בטמפרטורת החדר. ואז תחת מיקרוסקופ סטריאו, הרם את כרית השומן הממוקמת בתחתית עצם החזה. בצע חתך דרך כרית השומן ולאורך הצלע התחתונה.
ה- SEA צריך להיות גלוי כעת, תוך הקפדה לא לפגוע בעורק, להשקות את הרקמה החשופה בטמפרטורת החדר יותר, תמיסת מלח. לאחר נסיגת השכבה העליונה של שרירי השלד, שימו לב לאורך ה-SEA ולאחר מכן כרתו בזהירות את שכבת השריר הדקה מתחת לעורק. לאחר מכן, השתמש במלקחיים זוויתיים כדי להעביר תפר משי באורך של שישה או מתחת ל-SCA.
לאחר מכן קשרו את העורק ואת הווריד הסמוך לו כדי לשמור עליו בלחץ ולשמור על הדם בתוך לומן הכלי. לאחר קשירת ה-SCA בצד הנגדי, בצע חתך לאורך קו האמצע של שרירי הבטן כדי להפריד בין הצדדים המתאימים, ולאחר מכן הארך את החתך לרוחב לכל כיוון כפי שנעשה לעור. המשך את החתך אנכית לאורך הקצה החיצוני כדי להפריד לחלוטין את שריר הבטן מהגוף.
לאחר מכן חתכו את ה-SEA מעל הקשירה כדי לשמור על האיטום והניחו את השריר והעורק המבודדים בכוס של 50 מיליליטר המכילה 10 מיליליטר של מאגר דיסקציה של ארבע מעלות צלזיוס. לאחר בידוד השריר מהצד השני של הבטן, דגרו את הרקמות במאגר דיסקציה למשך 10 דקות. כעת, הנח את שריר הבטן המכיל את ה-SEA בצלחת פטרי של ארבע מעלות צלזיוס המצופה בשכבת מגן ציל ומכילה מאגר דיסקציה השתמש בסיכות חרקים של 0.15 מילימטר כדי למתוח את ה-SEA והשריר לאורכי ה-in vivo המשוערים שצוינו קודם לכן.
אבטח את ה-SEA למגן הגליל המכוון את השריר כך שהשכבה הדקה הפונה לצפק תהיה למעלה. לאחר מכן, בעבודה מאתר הקשירה במעלה הזרם לכיוון הקצה במורד הזרם, נקה כסנטימטר עד שני סנטימטר מה-SEA מהווריד הזוגי שלו והרקמה שמסביב עד לאתר הענף העיקרי הראשון. חותכים את ה-SEA ממש מעל אתר הסניף וממש מתחת לקשירה.
לאחר מכן, השתמש בחתיכת צינור אלסטי כדי לחבר את הקצה האחורי של פיפטה למזרק של חמישה מיליליטר המכיל מאגר חיתוך קר כקרח. אבטח את קצה פיפטת הקנולציה בתוך תא הדיסקציה וקנה את ה-SEA. לאחר מכן, לאחר שכל האריתרוציטים נשטפו החוצה, הסר את ה-SEA מפיפטת הקנולציה והסר את הפיפטה מצלחת הדיסקציה כדי לבודד את צינורות האנדותל.
ראשית, מלאו צינור תרבית זכוכית בגודל 12 על 75 מילימטר באמצע הדרך במאגר חיתוך קר כקרח. לאחר מכן, לאחר חיתוך ה-SEA לחתיכות של מילימטר עד שלושה מילימטרים, השתמש במלקחיים זוויתיים כדי להעביר את חלקי העורקים לתוך צינור התרבות ולהניח את הצינור על קרח. לאחר מכן, שלב אנזימי עיכול עם מאגר הדיסוציאציה לנפח סופי של מיליליטר אחד בצינור תרבית נפרד בגודל 12 על 75 מילימטר וחמם מראש את תמיסת האנזים ל -37 מעלות צלזיוס עם בלוק חימום.
הסר את צינור התרבית המכיל את חלקי העורקים מארבע מעלות צלזיוס והנח אותו בטמפרטורת החדר כדי להתחמם בזמן שתמיסת האנזים מתחממת ל-37 מעלות צלזיוס. שאפו בזהירות את מאגר החיתוך בטמפרטורת החדר מצינור התרבית, והשאירו נפח קטן המכיל את מקטעי הכלי. כעת הוסיפו לאט לאט את טמפרטורת החדר, מאגר דיסוציאציה ללא אנזימים לקטעי כלי הדם כך שחלקי העורקים יישארו בתחתית צינור התרבית כדי לשטוף את כל מאגר הדיסקציה שנותר.
לאחר שתמיסת האנזים הגיעה ל-37 מעלות צלזיוס, שאפו שוב את מאגר הדיסוציאציה מצינור התרבות המכיל את מקטעי הכלי, והשאירו נפח קטן המכיל את מקטעי הכלי. כעת העבירו את תמיסת האנזים של 37 מעלות לצינור התרבות ודגרו את צינור התרבות בגוש החימום למשך 30 דקות בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס. במהלך הדגירה, הכינו פיפטה אוריינית ממולאת בשמן מינרלי, קלעו את הפיפטה, עשו הפסקה נקייה, שברו את הפיפטה באש מלקחיים, לטשו את קצה הפיפטה ואבטחו אותה על מזרק מיקרו המותקן במניפולטור מיקרו
.לאחר מכן החזר את בוכנת המזרק המיקרו כדי למלא את הפיפטה בשני ננוליטר של מאגר דיסוציאציה ומקם את קצה הפיפטה מעל תא הזרימה בסוף הדגירה. לאחר שאיבת המאגר בזהירות כפי שהודגם זה עתה, שטפו את מקטעי העורקים בארבעה מיליליטר של מאגר דיסוציאציה בטמפרטורת החדר. לאחר מכן, שאפו בעדינות קטע כלי אחד עם מיקרו פיפטה של מיליליטר אחד והניחו את הכלי בתא זרימה עם מיליליטר אחד של מאגר הדיסוציאציה.
מקם את קצה פיפטת הטאטציה ליד קצה אחד של קטע הכלי, ולאחר מכן שאב את מקטע הכלי לתוך פיפטת הטאטציה במהירות של כ-225 ננוליטר לשנייה, כדי לא לגרום לעומס מכני לתאי האנדותל, פלט את הכלי בחזרה לתא. אם העיכול הצליח, תאי השריר החלק והאדוונטיטיה ינותקו מצינור האנדותל. הרחיקו את האדוונטיטיה מצינור האנדותל בהקדם האפשרי כדי למנוע ממנה לסבך את הצינור, ולאחר מכן חזרו על הפעולה כפי שהודגם זה עתה עד שכל תאי השריר החלק מתנתקים.
לאחר האיטרציה הסופית, ASEE והציב את צינור האנדותל המבודד במרכז תא הזרימה, מיושר לאורך כיוון הזרימה והסיר את הפיפטה המפעילה. אבטח פיפטות הצמדה במניפולטורים מיקרו המותקנים בשני קצות תא הזרימה ולאחר מכן מקם את קצותיהם בקצוות המתאימים של צינור האנדותל. הורד את פיפטות ההצמדה, אחת בכל פעם על קצוות מנוגדים של הצינור, ולחץ את הצינור על תחתית החדר, כ- 50 מיקרומטר מכל קצה הצינור.
בדיוק כאשר פיפטת ההצמדה נוגעת בצינור, משוך אותה לאט לאורך ציר הצינור, והאריך אותה לאורכה המשוער in vivo. לחץ את הפיפטה על תחתית התא כדי לאבטח את הצינור, ולאחר מכן התחל את זרימת תמיסת הסופר-פיוז'ן באמצעות משאבה פריסטלטית כדי לשמור על זרימה קבועה של תמיסת הסופר-פיוז'ן על פני צינור האנדותל. בתמונת ניגודיות הפרעות דיפרנציאליות זו, מוצג צינור תא אנדותל מבודד מ-SEA עוקב, היתוך על של שעה אחת עם מאגר היתוך בשלושה מיליליטר לדקה בטמפרטורת החדר.
סרט זה מדגים את תגובות הסידן של צינור תאי אנדותל טעון שפעת בתגובה לגירוי אצטילכולין מיקרו-מולרי אחד. תמונות פלואורסצנטיות מייצגות אלה נאספו בנקודות זמן שונות לאחר גירוי צינור האנדותל עם אצטילכולין. שימו לב כיצד הסידן התוך-תאי מתנדנד עם הזמן.
בעת ניסיון הליך זה, חשוב לזכור להימנע מפגיעה מכנית בצינור האנדותל במהלך מיקום משולש והצמדה מכיוון שתאי האנדותל עדינים ביותר ונפגעים בקלות. לאחר צפייה בסרטון זה, אמור להיות לך מושג טוב כיצד לבודד צינורות אנדותל מהעורק האפיגסטרי העליון של העכבר, ובכך לחקור אנדותל מיקרו-וסקולרי שלם.
Related Videos
03:41
Related Videos
496 Views
09:34
Related Videos
14.8K Views
08:20
Related Videos
32.8K Views
08:09
Related Videos
8.6K Views
10:28
Related Videos
9.8K Views
09:45
Related Videos
8.7K Views
09:12
Related Videos
3.8K Views
06:41
Related Videos
6.9K Views
06:40
Related Videos
4.3K Views
05:52
Related Videos
2.7K Views