Name: העשרה וטיהור של תאי גזע עובריים אנושיים על ידי זיהוי אנטיגנים משטח התא באמצעות נוגדנים חד שבטיים TG30 ו GCTM-2 (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-12-06T17:30:00.000+00:00
Duration: 12 min 43 s
Description: למד שיטת מיון תאי גזע עובריים אנושיים באמצעות נוגדנים חד-שבטיים TG30 ו-GCTM-2 ו-FACS. טכניקה זו מאפשרת העשרת תאים פלוריפוטנטיים והסרת תאים מובדלים לחקר ביולוגיית תאי גזע.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

אנו מודים למתקן StemCore באוניברסיטת מונאש על אספקת קווי hESC ומתקן FlowCore באוניברסיטת מונאש עבור שירותי FACS. עבודה זו נתמכה על ידי מענקי מחקר ממרכז תאי הגזע האוסטרלי, ניו סאות' ויילס ותוכנית המענקים לחקר תאי הגזע של ממשלת ויקטוריה לכולם. ALL היא חוקרת שותפה של יוזמת המחקר המיוחדת של מועצת המחקר האוסטרלית (ARC) במדע תאי גזע, תאי גזע באוסטרליה.

הפרוטוקול הבא בוצע באמצעות hESC-MEL111 תרבויות בתפזורת סטנדרטיות המסופקות על ידי מתקן StemCore באוניברסיטת מונאש (מלבורן). קו תאים זה מתורבת באופן שגרתי על שכבה של פיברובלסטים עובריים של עכבר מומתים מיטוטיים (MEFs) ב- bFGF בתוספת hESC / KOSR מדיה7 ומתוחזק עם דיסוציאציה אנזימטית (Collagenase) כל 5-7 ימים8. hESC תרבויות גדל ~ 80% מפגש ב 75 ס"מ2 (T75) בקבוקונים משמשים אוכלוסיות קלט עבור פרוטוקול זה. כל הליכי מניפולציה התא המתוארים להלן צריך להתבצע בתנאים אספטיים בארון HEPA מסונן מחלקה II ביו בטיחות.
יומיים לפני ביצוע בדיקה של FACS TG30/GCTM-2, הכינו את לוחות התרבות T75 (המתוארים בסעיף 1) שישמשו להתרבות מחדש של תאים שנמצאו לאחר FACS (המתוארים בסעיף 4).
1. זריעת MEFs והכנת בינוני מותנה MEF
1.1 יום -2: ציפוי של MEFs לתוך בקבוקים T75
<ol><li>פיפטה 10 מ"ל של 0.1% w / v ג'לטין לתוך כל בקבוק T75 להטות את פני השטח באופן שווה.</li>
	<li>דגירה במשך 30 דקות בטמפרטורת החדר בארון biosafety.</li>
	<li>תמיסת ג'לטין שאיפה.</li>
	<li>הוסף 20 מ"ל MEF-בינוני לבקבוק טרום שיווי משקל ל 37 °C/5% CO2 במשך 30 דקות באינקובטור תרבות התא.</li>
	<li>Plate הפעיל באופן מיתוטלי קבצי MEFs על גבי בקבוקונים מוכנים בצפיפויות הבאות. עבור 1/3 זרעי צפיפות MEF 1.4 x 104 תאים / ס"מ2 (T75 = 1 x 106 MEFs). עבור זרעי MEF בצפיפות מלאה 5.3 x 104 תאים / ס"מ2 (T75 = 4 x 106 MEFs).</li>
</ol>הערה: אנו משתמשים באופן שגרתי ב- MEFs שהושבתו באופן מיטוטי על-ידי הקרנת γ. פרוטוקול להכנת MEFs מוקרן γ ניתן למצוא מיכלסקה12.
<ol start="6"><li>דגירה מוקרנת MEF תרבויות ב 37 °C /5% CO2 לילה. 1/3 צלושי ניתן לדגר במשך 1-4 ימים ללא שינוי MEF-בינוני. בקבוקונים אלה משמשים להזרמת תאים שלאחר FACS (כמו בפרוטוקול 4). צלושי MEF מלאים הם דגירה לילה כדי ליצור CM לפי להלן בשלב 1.2.</li>
</ol>1.2 יום -1: הכנת מדיום ממוזג MEF (CM)
<ol><li>לשאוף MEF-בינוני מבקבוקים מלאים MEF T75.</li>
	<li>הוסף בינוני 25 מ"ל hESC/KOSR 25 מ"ל בתוספת 5 ננוגרם/מיליליטר FGF-2 אנושי לכל בקבוק T75. דגירה ב 37 °C/5% CO2 עבור 24 שעות.</li>
	<li>לאסוף בינוני מותנה MEF (CM) לתוך צינור תרבית רקמה סטרילית, תוספת טרייה CM עם 10 ng/ml אדם FGF-2 ומסנן באמצעות מסנן פוליאתרסולפונה 0.22 מיקרומטר.</li>
	<li>כדי להפיק CM נוסף, חזור על שלבים 1.2.2 ו- 1.2.3 מדי יום באותה תרבות MEF למשך שבוע.</li>
</ol>ביום ביצוע בדיקה TG30/GCTM-2, להחליף MEF-בינוני ב 1/3 MEF T75 בקבוקונים עם CM ו pre-equilibrate לפחות 30 דקות לפני זריעת כל hESCs או תאים נגזרים hESC התאושש מההליך כמתואר להלן. CM משמש טרי או מאוחסן ב 4 מעלות צלזיוס עד 2 שבועות. CM משמש בפרוטוקול זה כמו בידיים שלנו זה מגביר את הכדאיות של התאים שלאחר FACS לעומת מדיה ללא תנאים (תוצאות לא מוצגות).
2. ביצוע TG30/GCTM-2 FACS Assay: ניתוק של תרביות בתפזורת hESC לתאים בודדים
הערה: Prechill 20% FBS / DMEM-F12 בינוני ב 4 °C (69 °F).
<ol><li>שאפתן את התקשורת hESC / KOSR משני בקבוקוני T75 עם קו hESC מתורבת.</li>
	<li>לשטוף את התאים בכל T75 עם 10 מיליליטר DPBS לשאוף להסיר.</li>
	<li>הוסף פתרון ניתוק של 3 מ"ל של TrypLE Express לכל בקבוק T75. דגירה ב 37 °C/5% CO2 במשך 5 דקות.</li>
	<li>להקפיץ את הצד של הבקבוקים כדי לקבל עקום מוחלט של התאים. בדוק תחת מיקרוסקופ. אם התאים אינם מתפזרים בקלות, דגירה למשך 2-3 דקות נוספות ב- 37 °C/5% CO2.</li>
	<li>הוסף 10 מ"ל 20% FBS / DMEM-F12 (נשמר ב 4 מעלות צלזיוס) לכל בקבוק T75. באמצעות פיפטה סטרילית 10 מיליליטר בעדינות triturate התאים מנותקים מספר פעמים על הקיר בקבוק כדי להשיג השעיה תא יחיד בעיקר.</li>
	<li>מניחים מסננת תאים 70 מיקרומטר על צינור פוליפרופילן סטרילי 50 מ"ל. השתמש פיפטה סטרילית 10 מיליליטר כדי לכפות את השעיות תא יחיד hESC במאגר משני צלושי T75 דרך מסננת.</li>
	<li>השלך מסננת תאים, החלף את מכסה הצינור וצנטריפוגה השעיית hESC במאגר ב 1,000 x g במשך 2 דקות.</li>
	<li>להשליך supernatant ולשטוף את התאים על ידי שימוש חוזר בעדינות גלולה ב 10 מיליליטר 20% FBS / DMEM-F12 (prechilled ב 4 מעלות צלזיוס).</li>
	<li>בצע צנטריפוגה שנייה ב- 1,000 x g במשך 2 דקות.</li>
	<li>השלך על-טבעי, הוסף 10 מ"ל 20% FBS/DMEM-F12 (מראש ב 4 °C (4 °C)) בעדינות triturate כדי resuspend תאים. מניחים את הצינור 50 מ"ל על קרח. צינור זה ישמש עבור הליך חיסון מדגם מיון המתואר להלן.</li>
	<li>קח 20 μl של השעיית תא יחיד hESC (שלב 2.10) לספירת מספר תא באמצעות hemotocytometer. אתה צריך לצפות לתשואה של 10-15 מיליון תאים לכל בקבוק T75.</li>
</ol>הערה: FBS משמש בחלק זה של הפרוטוקול כדי להגביר את הכדאיות של תאים לאחר FACS.
3. כתמים אימונופלואורסצנטיים של אנטיגנים משטח התא TG30 ו- GCTM-2
<ol><li>Aliquot 150 μl (~ 100,000 תאים) של השעיית תא יחיד hESC (משלב 2.11) לתוך כל אחד משישה צינורות microcentrifuge של 1.5 מ"ל. ששת aliquots אלה ישמשו עבור פקדי הכתם הנדרשים כדי לכייל את ההסתערות על מכונת FACS. הנותר ~ 9 מיליליטר השעיית תא יהיה מדגם המיון שלך שבו התרבות מנותק יהיה costained לגילוי של TG30 ו GCTM-2, על פי טבלאות 1 ו 2.</li>
	<li>בצע תגובות מחייבות של נוגדנים ראשוניים ב 20% FBS / DMEM-F12. אמצעי אחסון לתגובה סופית צריכים להיות ~ 9 מ"ל עבור מדגם המיון ו- 200 μl עבור הפקדים. כלול פקדי isotype כנוגדנים עיקריים. מניחים צינורות אופקית על קרח ומערבבים בעדינות במשך 30 דקות על פלטפורמת נדנדה.</li>
	<li>תגובות נוגדנים ראשוניות צנטריפוגה ב 1,000 x g במשך 2 דקות.</li>
	<li>השלך supernatant ולשטוף את התאים על ידי שימוש חוזר גלולה ב 20 מיליליטר 20% FBS / DMEM-F12 (prechilled ב 4 °C (4 °C (69 °F) עבור מדגם מיון ו 200 μl עבור הפקדים.</li>
	<li>בצע סיבוב שני ב- 1,000 x g למשך 2 דקות.</li>
	<li>בצע תגובות מחייבות של נוגדנים משניים ב 20% FBS / DMEM-F12. אמצעי אחסון לתגובה סופית צריכים להיות 2.5 מ"ל עבור מדגם המיון ו- 200 μl עבור הפקדים. הכן את צינור התגובה PE נגד עכבר CD90.2 בשלב זה. מניחים צינורות אופקית על קרח ומערבבים בעדינות במשך 30 דקות על פלטפורמת נדנדה.</li>
</ol>הערה: במהלך זמן דגירה זה, נוח לאסוף CM ולהכין 1/3 בקבוקונים MEF T75 עם CM כמו בסעיף 1.2.
<ol start="7"><li>תגובות נוגדנים משניות צנטריפוגה ב 1,000 x g במשך 2 דקות.</li>
	<li>השלך supernatant ולשטוף את התאים פעמיים על ידי שימוש חוזר גלולה ב 20 מיליליטר 20% FBS / DMEM-F12 (prechilled ב 4 °C (4 °C )) עבור מדגם מיון ו 200 μl עבור הפקדים.</li>
	<li>בצע סיבוב ב 1,000 x g במשך 2 דקות בעקבות כל לשטוף ומניחים צינורות על הקרח.</li>
	<li>השלך supernatants וכדורי תא resuspend ב 20% FBS / DMEM-F12 בתוספת יודיד propidium (PI) ב 0.3 מיקרוגרם / מיליליטר. השתמש 2-3 מיליליטר עבור מדגם מיון ו 300 μl עבור הפקדים.</li>
</ol>הערה: אין להוסיף PI לצינור הבקרה עם תאים לא מוכתמים.
<ol start="11"><li>השתמש במיקרופיפט P1000 כדי לכפות על כל תא בודד השעיה באמצעות מסננת תא מכסה 35 מיקרומטר, יחד עם 5 מ"ל צינור פוליסטירן מבחנות עגולות התחתון.</li>
	<li>צנטריפוגה ב 50 גרם / דקה לכפות דרך השעיית תא שיורית על מכסי מסננת.</li>
	<li>התחדשו בכל השעיה של תא בודד על ידי הקשה על דפנות הצינורות, והניחו על הקרח. התאים שלך מוכנים כעת עבור FACS. אנא המשיכו מיד.</li>
</ol>4. תרבות פוסט-FACS של תאי תת-שבר TG30/GCTM-2 ב-75 ס"מ2 (T75) בקבוקונים
<ol><li>דיווחנו בעבר כיצד להקים מכונת FACS עבור TG30/GCTM-2 immunoprofiling7. ההליך מאפשר התאוששות של hESCs יחיד קיימא, ללא MEFs, ובתוך השערים של P4 (TG30Neg-GCTM-2Neg),P5 (TG30נמוך-GCTM-2נמוך),P6 (TG30אמצע-GCTM-2Mid)ו P7 (TG30היי-GCTM-2היי)- ראה איור 1E. הגדר את מכונת FACS עבור FACS TG30/GCTM-2 כמו בדוח הקודם שלנו כדי לשחזר את תתי-fractions התא שישמשו הבא.</li>
	<li>הוסף 1 מיליליטר CM, מוכן כמו בשלב 1.2, לכל אחד משני מבחנות 5 מיליליטר עגול התחתון לפני איסוף תאים ממכונת FACS. מניחים על קרח.</li>
	<li>שחזר 400,000 תאים כל אחד מ- P4 מובחן (TG30Neg-GCTM-2Neg)ו- P7 פלוריפוטנטי (TG30Hi-GCTM-2Hi)תתי-פרקי תאים באמצעות TG30/GCTM-2 FACS.</li>
	<li>צנטריפוגה צינורות האיסוף ב 1,000 x g במשך 5 דקות.</li>
	<li>לשאוף את הנתנים העל-טבעיים. הוסף 1 מ"ל מראש 37 °C/5% CO2 CM לשימוש חוזר כל גלולה תא באמצעות מיקרופיפטור P1000. זרע את התאים עבור כל שבר על בקבוק 1/3 MEF T75 שווה מראש עם CM (מוכן לפי שלב 1.2)</li>
	<li>תרבות ב 37 °C/5% CO2 עבור 24 שעות באינקובטור תרבות התא.</li>
	<li>שאפת CM מדי יום ולהחליף עם CM מוכן טרי (כמו בשלב 1.2) במשך כשבועיים. תרבויות של תאים P7 pluripotent (TG30היי-GCTM-2Hi)להראות מושבות דמויי גזע אנושי לאחר שבוע אחד ולהגיע ~ 80% מפגש ב 9-11 ימים. תרבויות של P4 (TG30Neg-GCTM-2Neg)תאים גדלים בעיקר כמדשאה של תאים דמויי פיברובלסט שמגיע לעיסוק ב 11-13 ימים. בשלב זה, במידת הצורך, ניתן להשתמש בתרביות תאים P4 ו- P7 עבור FACS TG30/GCTM-2 בתיווך תיקון רצוף של תתי-שברי P4 או P7 (ראה איורים 2 ו- 3).</li>
</ol>

<ol><li>Pera, M. F., Tam, P. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extrinsic+regulation+of+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Extrinsic regulation of pluripotent stem cells.</a> Nature. 10 (7299), 713-720 (2010).</li>
<li>Pistollato, F., Bremer-Hoffmann, S., Healy, L., Young, L., Stacey, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Standardization+of+pluripotent+stem+cell+cultures+for+toxicity+testing%5BTitle%5D)+AND+%22Expert+Opin.+Drug+Metab.+Toxicol%22%5BJournal%5D)">Standardization of pluripotent stem cell cultures for toxicity testing.</a> Expert Opin. Drug Metab. Toxicol. 8 (2), 239-257 (2012).</li>
<li>Miura, K., Okada, Y., Aoi, T., Okada, A., Takahashi, K., Okita, K., Nakagawa, M., Koyanagi, M., Tanabe, K., Ohnuki, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Variation+in+the+safety+of+induced+pluripotent+stem+cell+lines%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Variation in the safety of induced pluripotent stem cell lines.</a> Nat. Biotechnol. 27 (8), 743-745 (2009).</li>
<li>Polanco, J. C., Laslett, A. L. Safety Assessment of Reprogrammed Cells Prior to Clinical Applications: Potential Approaches to Eliminate Teratoma Formation. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPolanco%2C+JC+%22Pluripotent+Stem+Cells%22">Pluripotent Stem Cells</a>. Lenka, N. , InTech. (2013).</li>
<li>Laslett, A. L., Grimmond, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcriptional+analysis+of+early+lineage+commitment+in+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Transcriptional analysis of early lineage commitment in human embryonic stem cells.</a> BMC Dev. Biol. 7, 12(2007).</li>
<li>Kolle, G., Ho, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+human+embryonic+stem+cell+surface+markers+by+combined+membrane-polysome+translation+state+array+analysis+and+immunotranscriptional+profiling%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Identification of human embryonic stem cell surface markers by combined membrane-polysome translation state array analysis and immunotranscriptional profiling.</a> Stem Cells. 27, 2446-2456 (2009).</li>
<li>Zhou, Q., Chy, H., Laslett, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+defined+human+embryonic+stem+cell+populations+for+transcriptional+profiling%5BTitle%5D)+AND+%22Current+protocols+in+stem+cell+biology%22%5BJournal%5D)">Preparation of defined human embryonic stem cell populations for transcriptional profiling.</a> Current protocols in stem cell biology. Chapter 1, Unit1B 7(2010).</li>
<li>Stem Cell Protocols - WiCell. , WiCell. Available from: 
 <a target="_blank" href="http://www.wicell.org/home/support/stem-cell-protocols/stem-cell-protocols.cmsx">http://www.wicell.org/home/support/stem-cell-protocols/stem-cell-protocols.cmsx</a> (2013).</li>
<li>Fong, C. Y., Peh, G. S., Gauthaman, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Separation+of+SSEA-4+and+TRA-1-60+labelled+undifferentiated+human+embryonic+stem+cells+from+a+heterogeneous+cell+population+using+magnetic-activated+cell+sorting+%28MACS%29+and+fluorescence-activated+cell+sorting+%28FACS%29%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Rev%22%5BJournal%5D)">Separation of SSEA-4 and TRA-1-60 labelled undifferentiated human embryonic stem cells from a heterogeneous cell population using magnetic-activated cell sorting (MACS) and fluorescence-activated cell sorting (FACS).</a> Stem Cell Rev. 5, 72-80 (2009).</li>
<li>Schriebl, K., Satianegara, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+removal+of+undifferentiated+human+embryonic+stem+cells+using+magnetic+activated+cell+sorting+followed+by+a+cytotoxic+antibody%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng.+Part+A%22%5BJournal%5D)">Selective removal of undifferentiated human embryonic stem cells using magnetic activated cell sorting followed by a cytotoxic antibody.</a> Tissue Eng. Part A. 18, 899-909 (2012).</li>
<li>Adewumi, O., Aflatoonian, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+human+embryonic+stem+cell+lines+by+the+International+Stem+Cell+Initiative%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Characterization of human embryonic stem cell lines by the International Stem Cell Initiative.</a> Nat. Biotechnol. 25, 803-816 (2007).</li>
<li>Michalska, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+propagation+of+mouse+embryonic+fibroblasts+and+preparation+of+mouse+embryonic+feeder+layer+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Current+protocols+in+stem+cell+biology%22%5BJournal%5D)">Isolation and propagation of mouse embryonic fibroblasts and preparation of mouse embryonic feeder layer cells.</a> Current protocols in stem cell biology. Chapter 1, Unit1C 3(2007).</li>
<li>Hough, S. R., Laslett, A. L., Grimmond, S. B., Kolle, G., Pera, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+continuum+of+cell+states+spans+pluripotency+and+lineage+commitment+in+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">A continuum of cell states spans pluripotency and lineage commitment in human embryonic stem cells.</a> PLoS One. 4, e7708(2009).</li>
<li>Filipczyk, A. A., Laslett, A. L., Mummery, C., Pera, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differentiation+is+coupled+to+changes+in+the+cell+cycle+regulatory+apparatus+of+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Differentiation is coupled to changes in the cell cycle regulatory apparatus of human embryonic stem cells.</a> Stem Cell Res. 1, 45-60 (2007).</li>
<li>Polanco, J. C., Ho, M. S. H., Wang, B., Zhou, Q., Wolvetang, E., Mason, E., Wells, C., Kolle, G., Grimmond, S. M., Bertoncello, I., O'Brien, C., Laslett, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+unsafe+human+IPSC+lines+using+a+robust+surrogate+assay+for+pluripotency%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Identification of unsafe human IPSC lines using a robust surrogate assay for pluripotency.</a> Stem Cells. 31 (8), 1498-1510 (2013).</li>
<li>Sharpe, M. E., Morton, D., Rossi, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nonclinical+safety+strategies+for+stem+cell+therapies%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicol.+Appl.+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Nonclinical safety strategies for stem cell therapies.</a> Toxicol. Appl. Pharmacol. 262 (3), 223-231 (2012).</li>
</ol>

אין מה לחשוף.

בהקשר הקליני, סוגי תאים סומטיים מובחנים הם המוצר הרצוי הסופי להשתלה ויישומים טיפוליים, ו- hPSC הם מקור לחידוש עצמי ומדרגי ליצירת אותם תאים סומטיים או אבותיהם במעבדה. נוכחותם של שאריות hESCs מובחנות עם פוטנציאל אינהרנטי להיווצרות טרטומה היא סיכון בטיחותי כאשר בוחנים תאים סומטיים שמקורם ב- hESC להשתלה בחולים. לסקירה של זה וסיכונים אחרים הקשורים לטיפול בתאים אנא ראה שארפ ואח '. 16 לכן, כדי לממש יישומים כאלה, זה הכרחי כי החוקרים שואפים ליצור אוכלוסיות תא היעד כי הם גם פלוריפוטנטי תאי גזע חינם. לקראת מטרה זו, אנו מראים כאן כי באמצעות מתודולוגיית TG30/GCTM-2 FACS שלנו ניתן לפקח על נוכחותם של תאים פלוריפוטנטיים (TG30Hi-GCTM-2Hi)באוכלוסיית תאים מבדילה ולקבל נגזרות מובנות hESC קיימא שניתן להעשיר ולשקול מחדש לאחר FACS. למרות שלא ניתן להשיג 100% דגימות ללא תאי גזע פלוריפוטנטיים עם מעבר אחד של הפרוטוקול שלנו, נגזרות hESC מועשר ניתן לחשב מחדש ולאחר מעבר רצוף 100% טוהר תא סומטי מושגת. הכדאיות המוכחה של תאים סומטיים להתרחבות שלאחר FACS גם מאפשרת ייצור של מספר מספיק של תאים המתאימים לטיפולי השתלה פוטנציאליים.
התוצאות המעודדות של מחקר פיילוט זה גרמו לנו לבצע חקירה מקיפה יותר באמצעות פרוטוקול TG30/GCTM-2 שלנו במחקר השוואתי עם מספר תאי גזע פלוריפוטנטיים המושרים על ידי בני אדם (hiPSC) קווים15. במחקר זה, מצאנו כי דגימות ללא תאי גזע פלוריפוטנטיים שהושגו באמצעות פרוטוקול FACS TG30/GCTM-2 שלנו לא יצרו טרטומות כאשר הושתלו בעכברים ללא חיסון. לכן, אנו יכולים לציין בביטחון כי עם השימוש בפרוטוקול זה במבחנה, בשלב מוקדם בידול תרביות התא נקבע להיות חופשי של תאי pluripotent TG30 Hi-GCTM-2 Hi אינם מפתחים טרטומות vivo. זה תומך מאוד את החוסן של ההסתערות שלנו, מתן גישה פוטנציאלית כדי למנוע את הסיכון של היווצרות טרטומה לפני השימוש בתאים שמקורם hPSC ביישומים קליניים.
לעומת זאת, אנו גם מראים כי TG30 / GCTM-2 FACS assay ניתן להשתמש כדי לאחזר אוכלוסיית תאים pluripotent עם רמה גבוהה של ביטוי של שני אנטיגנים אלה פני השטח (TG30היי-GCTM-2היי). מחקרים קודמים הראו כיתאי Hi-GCTM-2Hi של TG30 מציגים את המתאם הגבוה ביותר עם ביטויHI OCT4 ויוצרים את המספר הגבוה ביותר של מושבות דמויי hESC5,6,13,15. לכן אנו סיבה כי רשת pluripotency מופעלת ברמות המרביות שלה TG30היי-GCTM-2היי הבעת תאים. אנו רואים כי באמצעות פרוטוקול TG30/GCTM-2 FACS שלנו ואחזור תאי P7 (TG30Hi-GCTM-2Hi)עלולים לאפשר טיהור בקנה מידה גדול של תרבויות hESC חיות מועשרות, כמו תשומות למבחני בידול.
לסיכום, אנו מדגימים כאן את הפוטנציאל של מבחני FACS שלנו המבוססים על הביטוי המשולב של אנטיגנים משטח TG30 ו- GCTM-2 הן לטיהור והן להעשרה של hESCs. מחקרים עתידיים עם פרוטוקולים לבידול מכוון של hPSCs צפויים גם להיות אינפורמטיבי לגבי פוטנציאל זה. אנו מודעים לכך שבכמה מבחנים שבהם נגזרות hESC מובחנות מבטאות זמנית TG30 (CD9) או GCTM-2, שני נוגדנים אלה עשויים שלא להיות מתאימים או מספיקים כדי לטהר תאים פלוריפוטנטיים מאוכלוסייה מובחנת בנקודת זמן מסוימת ב- assay6. לכן, יש צורך מתמשך למצוא נוגדנים חדשניים המזהים במיוחד hESCs חיים כדי להתגבר על המגבלה האפשרית של תגובה צולבת עם כמה סוגי תאים מובחנים.

HPSC (hPSC) כוללים תאי גזע עובריים אנושיים (hESC) ותאי גזע פלוריפוטנטיים הנגרמים על ידי בני אדם (hIPSC). HPSC יכול לחדש את עצמו ללא הגבלת זמן בתנאי תרבות מתאימים מבלי לאבד את יכולתם המכונה "pluripotency". Pluripotency מוגדר כפוטנציאל לתא להבדיל לתוך כל שושלת תאים סומטית כולל תאים המייצגים כל אחת משלוש שכבות תא נבט עוברי. הפוטנציאל המדהים של hPSC מספק אמצעי למגוון רחב של יישומים מבוססי תאים כולל אפשרויות טיפוליות. לדוגמה, ישנן הפרעות הכרוכות במוות תאי ונ ניוון, שבהן פונקציונליות תקינה של תאים בגוף האדם נפגעת, כמו באי ספיקת לב, פציעות בעמוד השדרה, סוכרת, מחלת פרקינסון, כמה סוגי סרטן ופתולוגיות קליניות אחרות. חולים הסובלים מתנאים אלה עלולים להיות מטופלים על ידי השתלת תאים סומטיים בריאים ותפקודיים שנגזרו מ- hPSC במעבדה. עם זאת, פרוטוקולי הבידול הנוכחיים של hPSC אינם יעילים ב -100% ומניבים תערובת של סוגי תאים מובחנים של יעדים וסוגי תאים מחוץ ליעד, כמו גם שאריות hPSCs שלא עברו בידול, במקום זאת ממשיכים לחדש את עצמם1-3. הנוכחות של אפילו מספר קטן של hPSC במדגם של תאים סומטיים שמקורם hPSC המיועד להשתלה לחולים מהווה סיכון קליני רציני כמו תאים אלה מטבעם הטבעי כדי ליצור רקמות של כל שלוש שכבות נבט עוברי, יכול להיווצר vivo סוג של גידול המכונה טרטומה. לכן, רק אוכלוסיות תאי יעד שנקבעו כנקיות מתאי גזע פלוריפוטנטיים יכולות להיחשב בטוחות להשתלה בחולים. ישנן מספר גישות שדווחו כדי להשיג פוטנציאל טיהור של hPSCs שיורית בעקבות בידול, (לסקירה ראה פולנקו ולאסלט4). דיווחנו בעבר על השימוש בנוגדנים חד שבטיים TG30 (CD9) ו- GCTM-2 יחד עם מיון תאים המופעל על ידי פלואורסצנטיות (FACS) כדי לזהות תאי גזע פלוריפוטנטיים ולהפלות אותם מתאים העוברים שלב מוקדם של בידול בתרבויות של קווי hESC5-7.
אחד היתרונות של שימוש בנוגדנים כדי לזהות אנטיגנים משטח התא הוא כי תאי היעד הם בדרך כלל קיימא לאחר איגוד נוגדנים ו / או תיוג. לכן, תאי היעד ניתן לאסוף לאחר תיוג נוגדנים recultured להתרחבות ויישומים נוספים לפני ההשתלה. אזהרה אחת עבור אנטיגנים משטח התא לידי ביטוי על hPSC היא כי הם אינם בלעדיים לשלב pluripotent והם במקרים רבים מחדש לידי ביטוי זמני במהלך הפיתוח ולכן יזוהו בכמה סוגי תאים מובחנים. לכן, אם המטרה היא להשתמש בנוגדנים כדי לזהות תאים פלוריפוטנטיים אנושיים ולנטהר אותם מדגם של תאים שמקורם ב- hPSC, נוגדנים נבחרים לא צריכים להגיב גם עם אנטיגנים על סוגי התאים המבודלים הספציפיים המיועדים להשתלה. למרבה הצער, ישנם מספר מוגבל של נוגדנים המזהים סמני משטח תא על hPSCs חי 4, מה שהופך מוגבל את האפשרויות לבחירה. בנוסף, מספר מחקרים הצביעו על כך שזיהוי של סמן אחד משטח תא יחיד אינו מספיק כדי לחסל את כל hPSC, מה שמרמז כי כל ניסיון לחסל את כל תת-אוכלוסיות ה- hPSC pluripotent צריך להסתמך על שיטות המשתמשות בשני נוגדנים או יותר המזהים אפיטופים שונים המבוטאים על ידי hPSCs 9-10. כפי שהוזכר לעיל, רק תאים שמקורם hPSC שניתן לקבוע כמו אוכלוסיות תאים ללא תאי גזע pluripotent מתאימים להשתלה אנושית. הגעה לרמה זו של ההקפדה לא ניתן להשיג עם מעבר אחד באמצעות טכנולוגיית מיון תאים בתיווך נוגדנים. Reculture של האוכלוסייה המועשרת של תאי יעד מובחנים וסבבים הבאים של מיון תאים עשויים להידרש כדי להשיג באופן סופי דגימות ללא תאי גזע פלוריפוטנטיים.
במעבדה שלנו, אפיינו בהרחבה שני נוגדני פני תא hES, TG30 (CD9) ו- GCTM-2, לגילוי תאים פלוריפוטנטיים חיים. המחקרים שלנו הראו כי זיהוי משולב של TG30 ו- GCTM-2 מאוד בקורלציה עם הביטוי של גנים הקשורים פלוריפוטנציה קנונית בשורות hESC 5-7. TG30/GCTM-2 חיסוני FACS הראה באופן עקבי כי תרבויות hESC מהוות שיפוע רציף כמותי של ביטוי TG30/GCTM-2 5-7. הקמנו באופן שרירותי ארבע אוכלוסיות (P) של תאים בתוך שיפוע TG30/GCTM-2 זה: P4 (TG30Neg-GCTM-2Neg),P5 (TG30נמוך-GCTM-2נמוך),P6 (TG30Mid-GCTM-2Mid)ו- P7 (TG30Hi-GCTM-2Hi) האפיון שלנו של אוכלוסיות אלה P4, P5, P6 ו- P7 תאים הראה כי P6 ו P7 תתי-שברים להביע מספר רב של גנים הקשורים pluripotency ביעילות ליצור מושבות דמויי גזע כאשר recultured שלאחר FACS 2-3. מצד שני, P4 (TG30Neg-GCTM-2Neg)תאים להביע מספר רב של סמני בידול ומהווים את סוגי התאים מובחנים באופן ספונטני המתרחשים בדרך כלל בהרחבת תרבויות של קווי hESC 5-6. החלטנו לבדוק את הפוטנציאל של FACS TG30/GCTM-2 שלנו לחיסול סלקטיבי של שאריות hPSCs לאחר בידול בשלב מוקדם, וגם להעשרה של אוכלוסיות תאי גזע פלוריפוטנטיים. הפרוטוקול המתואר להלן מראה כיצד לאסוף ולפתוח מחדש תאים מובחנים P4 (TG30Neg-GCTM-2Neg)לאחר FACS כדי להשיג טיהור של P7 פלוריפוטנטי (TG30Hi-GCTM-2Hi). יתר על כן, אנו מסבירים גם את האוסף וההתרבות של תאי P7 (TG30Hi-GCTM-2Hi)כדי להשיג תרבות מועשרת של תאים פלוריפוטנטיים, אשר לאחר מכן יכול לשמש כאוכלוסיית קלט מוגדרת כדי להגדיל את היעילות והעקביות של מבחני הבידול.

<table><tbody><tr><td>DMEM/F-12</td><td>Life Technologies</td><td>11320082</td><td>שם ארוך: הנשר השונה של Dulbecco מדיום: תערובת נוטריאנטים F-12</td></tr><tr><td>KOSR</td><td>Life Technologies</td><td>10828028</td><td>שם ארוך: החלפת סרום נוקאאוט</td></tr><tr><td>GlutaMAX</td><td>Life Technologies</td><td>35050061</td><td>שם ארוך: תוסף GlutaMAX</td></tr><tr><td>חומצות אמינו לא חיוניות</td><td>Life Technologies</td><td>11140050</td><td>שם ארוך: MEM תמיסת חומצות אמינו לא חיוניות</td></tr><tr><td>Mercaptoethanol</td><td>Life Technologies</td><td>21985023</td><td>שם ארוך: 2-Mercaptoethanol</td></tr><tr><td>DPBS</td><td>Life Technologies</td><td>14190250</td><td>שם ארוך: Dulbecco's Phosphate-Buffered Saline, ללא סידן, ללא מגנזיום</td></tr><tr><td>TrypLE Express</td><td>Life Technologies</td><td>12604039</td><td>שם ארוך: TrypLE Express (1x), ללא פנול אדום</td></tr><tr><td>AF-488</td><td>Life Technologies</td><td>A21131</td><td>שם ארוך: Alexa Fluor 488 עז נגד עכבר IgG2a</td></tr><tr><td>AF-647</td><td>Life Technologies</td><td>A21238</td><td>שם ארוך: Alexa Fluor 647 עז נגד עכבר IgM</td></tr><tr><td>PE-anti IgG2a</td><td>Life Technologies</td><td>P21139</td><td>שם ארוך: R-Phycoerythrin Goat Anti-Mouse IgG2a (&gamma; 2א) מצומד</td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Life Technologies</td><td>11965-092</td><td>שם ארוך: Modified Eagle Medium של Dulbecco, עט גלוקוז גבוה</td></tr><tr><td>/ Strep</td><td>Life Technologies</td><td>15140-122</td><td>שם ארוך: פניצילין-סטרפטומיצין,</td></tr><tr><td>טכנולוגיות חיים</td><td>במים מזוקקים</td> נוזליים <td>15230-089.</td><td>שם ארוך: מים מזוקקים סטריליים</td></tr><tr><td>PI</td><td>SIGMA</td><td>P4864</td><td>שם ארוך: תמיסת יודיד פרופידיום</td></tr><tr><td>FBS</td><td>SIGMA</td><td>12203C</td><td>שם ארוך: סרום בקר עוברי</td></tr><tr><td>ג'לטין</td><td>SIGMA</td><td>G-1890</td><td>שם ארוך: ג'לטין מעור חזיר</td></tr><tr><td>אנושי FGF-2</td><td>Millipore</td><td>GF003AF-100UG</td><td>שם ארוך: גורם גדילה פיברובלסט בסיסי, רקומביננטי אנושי, ללא בעלי חיים</td></tr><tr><td>מסנן 0.22 &mu; m</td><td>Millipore</td><td>SCGPU02RE</td><td>שם ארוך: Stericup-GP, 0.22 &mu; M, פוליאתרסולפון, 250 מ"ל, מעוקר ברדיו</td></tr><tr><td>70 &mu; m מסננת תאים</td><td>בקטון דיקינסון</td><td>352350</td><td>שם ארוך: מסננת תאים עם 70 &mu; m רשת ניילון</td></tr><tr><td>35 &mu; m מסננת תאי מכסה, שפופרת 5 מ"ל</td><td>Becton Dickinson</td><td>352235</td><td>שם ארוך: מבחנה תחתונה עגולה מפוליסטירן 5 מ"ל, עם מכסה מסננת תאים (35 &mu; מ)</td></tr> <tr><td>5 מ"ל מבחנה תחתונה עגולה מפוליסטירן</td><td>בקטון דיקינסון</td><td>352054</td><td>שם ארוך: 5 מ"ל מבחנה תחתונה עגולה מפוליסטירן,</td></tr><tr><td>בקרת איזוטיפ סטרילית IgG2a</td><td>בקטון דיקינסון</td><td></td><td>554126 שם ארוך: עכבר מטוהר IgG2a, &kappa; בקרת איזוטיפ</td></tr><tr><td>IgM בקרת איזוטיפ</td><td>בקטון דיקינסון</td><td>553472</td><td>שם ארוך: עכבר מטוהר IgM, &kappa; בקרת איזוטיפ</td></tr><tr><td>PE-CD90.2</td><td>בקטון דיקינסון</td><td>553014</td><td>שם ארוך: PE Rat Anti-Mouse CD90.2</td></tr><tr><td>כיול 8 פסגות</td><td>בקטון דיקינסון</td><td>559123</td><td>שם ארוך: חלקיקי כיול קשת בענן (8 פסגות)</td></tr> <tr><td>50 מ"ל צינור פוליפרופילן סטרילי</td><td>גריינר ביו-וואן</td><td>227261</td><td>שם ארוך: צינור פוליפרופילן 50 מ"ל עם תחתית חרוטית, בקבוק סטרילי</td></tr><tr><td>T75</td><td>גריינר ביו-וואן</td><td></td><td>658175 שם ארוך: מכסה מסנן CELLSTAR תרבית תאים 75 ס"מ2 צלוחיות</td></tr><tr><td>TG30</td><td>Merck Millipore</td><td>MAB4427</td><td>שם ארוך: נוגדן TG30, שיבוט TG30</td></tr><tr><td>GCTM-2</td><td>Merck Millipore</td><td>MAB4346</td><td>שם ארוך: GCTM-2 אינו זמין מסחרית אך TG343 ונוגדנים חד שבטיים מקבילים הוא</td></tr><tr><td colspan="4" ><חזק>טבלה 4.</חזק> רשימת חומרים ומגיב</td></tr><tr><td>מכונת FACS</td><td>Becton Dickinson</td><td></td><td>FACSVantage SE עם אפשרות FACSDiva</td></tr><tr><td>מיקרוסקופ הפוך</td><td>Olympus</td><td></td><td>IX71</td></tr><tr><td colspan="4">טבלה 5. רשימת ציוד.</td></tr></tbody></table>

העשרה וטיהור של תאי גזע עובריים אנושיים על ידי זיהוי אנטיגנים משטח התא באמצעות נוגדנים חד שבטיים tg30 ו gctm-2

Enrichment and Purging of Human Embryonic Stem Cells by Detection of Cell Surface Antigens Using the Monoclonal Antibodies TG30 and GCTM-2

תאי גזע עובריים אנושיים (hESC) יכולים לחדש את עצמם ללא הגבלת זמן במבחנה, ועם הרמזים המתאימים ניתן לגרום להבדיל לתוך פוטנציאל כל שושלת התא סומטי. נגזרות hESC מובחנות יכולות לשמש באופן פוטנציאלי בטיפולי השתלה לטיפול במגוון מחלות ניווניות של תאים. עם זאת, פרוטוקולי בידול hESC בדרך כלל מניבים תערובת של סוגי תאים מובחנים של יעדים ומחוץ ליעד, כמו גם תאים לא מובחנים שיורית. לתרגום נגזרות hESC מובחנות מהמעבדה למרפאה, חשוב להיות מסוגלים להפלות בין תאים לא מובחנים (פלוריפוטנטיים) לבין תאים מובחנים, וליצור שיטות להפרדת אוכלוסיות אלה. יישום בטוח של סוגי תאים סומטיים שמקורם ב- hESC יכול להתבצע רק עם אוכלוסיות נטולות תאי גזע פלוריפוטנטיים, שכן שאריות hESCs יכולות לגרום לגידולים הידועים בשם טרטומות לאחר ההשתלה. לקראת מטרה זו, כאן אנו מתארים מתודולוגיה לגילוי אנטיגנים משטח תא הקשורים pluripotency עם נוגדנים חד שבטיים TG30 (CD9) ו GCTM-2 באמצעות מיון תאים המופעלים פלואורסצנטיות (FACS) לזיהוי של pluripotent TG30היי-GCTM-2היי hESCs באמצעות בחירה חיובית. באמצעות בחירה שלילית עם מתודולוגיית ה- FACS TG30/GCTM-2 שלנו, הצלחנו לזהות ולטהר HESCs לא מובחנים באוכלוסיות שעברו בידול בשלב מוקדם מאוד (TG30Neg-GCTM-2Neg). במחקר נוסף, דגימות ללא תאי גזע פלוריפוטנטיים של תאי TG30Neg-GCTM-2Neg מובחנים שנבחרו באמצעות פרוטוקול FACS TG30/GCTM-2 שלנו לא יצרו טרטומות שהושתלו בעבר בעכברים עם פגיעה במערכת החיסון, התומכים בחוזק הפרוטוקול שלנו. מצד שני, TG30 /GCTM-2 FACS בתיווך פסוקים רצופים של TG30 Hi-GCTM-2Hi hESCs מועשרים לא השפיעו על יכולתם לחדש את עצמם במבחנה או על הפלוריפוטנציה המהותית שלהם. לכן, המאפיינים של מתודולוגיית ה- FACS TG30/GCTM-2 שלנו מספקים מבחנים רגישים להשגת אוכלוסיות מועשרות מאוד של hPSC כתשומות למבחני בידול ולפטור hESC גידולי פוטנציאלי (או שיורית) מאוכלוסיות תאים נגזרים.

h נגזרות של hESC שהן נטולות תאי גזע פלוריפוטנטיים ניתן להשיג על ידי פסיעה רצופה של תאים מתת-השבירה P4 (TG30 Neg-GCTM-2Neg).
דיווחים קודמים קבעו כי בתרבויות תקן hESC תערובת של תתי-אוכלוסיות מתקיימות יחד המציגות שיפוע ביטוי של גנים הקשורים לפלוריפוטנציה5,6,13. זיהוי משולב של אנטיגנים משטח התא כמו TG30 (CD9) ו GCTM-2 מאפשר אפליה של מספר קבוצות משנה של תאים בשלב pluripotent ובשלבים שונים של בידול מוקדם, כפי שצוין על ידי הביטוי שלהם של סמני תאי גזע וגורמי שעתוק ספציפייםשושלת 5,6,13. בהסכמה עם דיווחים קודמים, הצלחנו להפלות P4 (TG30Neg-GCTM-2Neg),P5 (TG30נמוך-GCTM-2נמוך),P6 (TG30 Mid-GCTM-2Mid),ו P7 (TG30היי-GCTM-2Hi)בקו hESC-MEL1 המשמש למחקר זה (איור 1). עם תוצאה זו, המשכנו לאסוף P4 מובחן (TG30Neg-GCTM-2Neg)תאים P7 פלוריפוטנטי (TG30היי-GCTM-2היי)תאים עבור תרבות נוספת במחקרים המתוארים להלן.
חקרנו אם באמצעות גישת בחירה שלילית אנו יכולים לטהר hESCs מובחנים מאוכלוסיות תאים שעברו בידול בשלב מוקדם מאוד (TG30Neg-GCTM-2Neg). השתמשנו במספר מוגדר של תאי P4 (TG30Neg-GCTM-2Neg)שהיו מתורבתים ברצף לאחר FACS(איור 2A)במשך כשבועיים, ותיעזרנו מחדש באמצעות FACS TG30/GCTM-2 לפני ההזרמה מחדש בכל קטע. התוצאות הראו כי ה-P4-subfraction מועשר עבור TG30Neg-GCTM-2Neg סוגי תאים מובחנים לאחר מעבר רצוף, ונוכחות מינורית של תאי P7 (TG30Hi-GCTM-2Hi)במעבר הראשוני(איור 2A,מעבר 1) נעלמו בסופו של דבר לאחר מעבר נוסף, והפכו לדגימות נטולות תאי גזע פלוריפוטנטיים(איור 2A, מעבר 3).
העשרה של תאי hESC pluripotent ניתן להשיג על ידי אוסף של תאים TG30היי-GCTM-2 היי תאים.
בהתבסס על תצפיות קודמות באמצעות מבחנים אלה, היינו מצפים להעשרה של hESCs pluripotent על ידי איסוף P7 (TG30Hi-GCTM-2Hi)תאים שאמורים ליצור מושבות hESC. לכן, חקרנו גם TG30 / GCTM-2 FACS בתיווך העברה רצופה של תאים pluripotent P7 (TG30Hi-GCTM-2Hi). בתרבויות P7 אלה, חיסון FACS TG30/GCTM-2 בוצע לפני ריפוד תאים בכל קטע ורק תאיP7 (TG30 Hi-GCTM-2Hi)צולמו מחדש. בדרך זו, הבחנו כי רוב התאים היו ממוקמים בfractions הקשורים pluripotency (P6 ו P7), המציין העשרה של תאים פלוריפוטנטיים כי גם שמרה על היכולת להבדיל וליצור אחוז קטן של P4 (TG30Neg-GCTM-2Neg) תאים (איור 3A). יתר על כן, תרבויות של תאי P7 הראו מספר רב של מושבות דמויי hESC במהלך ההעברה (איור 3B), גם מצביע על תחזוקה של מצב pluripotency.
<img alt="Figure 1" fo:content-width="5.5in" src="/files/ftp_upload/50856/50856fig1.jpg"> איור 1. אסטרטגיית מיון מייצגת להשגת שברי משנה של FACS TG30/GCTM-2. (A): השעיות תאי hES מנותקות ממוינות כתאים בודדים וגושים או כפילויות פוטנציאליים מגודרים החוצה עם הפיזור הקדמי עבור גובה ואזור (FSC-H ו- FSC-A). (B): פסולת פוטנציאלית מוסרת עם FSC-A ו- SSC-A, ורק תאים שלמים ממוינים עוד יותר. (ג): תאים שאינם ברי קיימא אינם נכללים בהתבסס על פלואורסצנטיות פרופידיום יודיד (PI) (FSC-A ו- FL3-A). (ד): תאי מאכיל MEF היו מגודרים על-ידי בחירה שלילית בהתבסס על ביטוי של העכבר CD90.2-PE (FL2-A ו- SSC-A). (ה): שבר hESC קיימא מבודד, ללא מאכילי MEF, הוא סוף סוף מופרד לתוך P4 (TG30נג-GCTM-2נג),P5 (TG30נמוך-GCTM-2נמוך),P6 (TG30אמצע-GCTM-2אמצע),ו P7 (TG30היי-GCTM-2Hi)תת-אוכלוסיות. השער השלילי (TG30Neg-GCTM-2Neg, בשם P4) נקבע על פי שפעת אוטומטית ברקע עבור התאים מוכתמים וגם לבקרות isotype. (ו): אחוזים של תת-אוכלוסיות מגודרות שונות האופייניות לניתוח ציטומטריית זרימה TG30/GCTM-2. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/50856/50856fig1large.jpg" target="_blank"> לחץ כאן כדי להציג איור גדול יותר</a>.
<img alt="Figure 2" fo:content-width="5.75in" src="/files/ftp_upload/50856/50856fig2.jpg"> איור 2. תרבויות עוקבות מייצגות של תאי P4(TG30 Neg-GCTM-2Neg)המובחנים באופן ספונטני מקו hESC-MEL1. (A): ייצוגי TG30/GCTM-2 FACS התוויות המציגות תת-קבוצות מגודרות של תאים (P4, P5, P6 ו- P7) מופלים על-ידי רמת הביטוי שזוהה של סמני משטח תאים TG30 ו- GCTM-2. אוכלוסייה ראשונית של 400,000 hESC-נגזרות המציג P4 (TG30Neg-GCTM-2Neg)immunoprofiling נאסף מתרבויות בתפזורת של קו hESC-MEL1. תאים אלה P4 (TG30Neg-GCTM-2Neg)מועברים ברציפות לאחר FACS בתנאים התומכים בחידוש hESC בבקבוקי T75, עד להגעה לסיכום (11-13 ימים). לפני כל קטע, TG30 / GCTM-2 FACS מבוצע כדי לאסוף ולבת מחדש רק את P4 (TG30Neg-GCTM-2Neg) סוגי תאים מובחנים. (B): מורפולוגיה אופיינית של הדשא של P4 מובחן (TG30Neg-GCTM-2Neg)תאים לאחר 14 ימים. (ג): מושבות ספורדיות דמויי hESC שנראו לאחר 14 ימים התערבבו עם הדשא של P4 (TG30Neg-GCTM-2Neg)תאים במעבר 1 בלבד, נוצרים ככל הנראה על ידי מזהם P7 (TG30היי-GCTM-2היי)תאים. סרגל קנה מידה = 200 מיקרומטר. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/50856/50856fig2large.jpg" target="_blank">לחץ כאן כדי להציג איור גדול יותר</a>.
<img alt="Figure 3" fo:content-width="5.75in" src="/files/ftp_upload/50856/50856fig3.jpg"> איור 3. P7 (TG30Hi-GCTM-2Hi)תאים הנגזרים מקווי hESC ניתן להעביר ברציפות שלאחר FACS מבלי לאבד את המאפיינים pluripotent המהותיים שלהם. נציג TG30/GCTM-2 FACS immunoprofiling של קטעים רצופים שונים, מראה את קבוצות משנה מופלות של תאים (P4, P5, P6, ו P7) על פי רמת הביטוי של TG30 ו GCTM-2. (א): אוכלוסייה התחלתית של 400,000 תאים המציגים מאפייני P7 (TG30Hi-GCTM-2Hi)מאוחזרת מתרבויות בתפזורת של קו hESC-MEL1. תאים Pluripotent P7 (TG30Hi-GCTM-2Hi)מועברים ברציפות לאחר FACS בתנאים התומכים בחידוש hESC בבקבוקי T75, עד שהם מגיעים ~ 80% מפגש (9-11 ימים). TG30/GCTM-2 חיסוני FACS מבוצע לפני replating תאים בכל מעבר ורק תאים P7 (TG30Hi-GCTM-2Hi)הם recultured. התוצאות מראות שתאי P7 (TG30 Hi-GCTM-2Hi)משמרים את המאפיינים הפלוריפוטנטיים שלהם עם המעבר הבא, כולל שימור (TG30Hi-GCTM-2Hi)ביטוי, יצירת מושבות דמויי hESC (מוצג ב- B)ושמירה על היכולת להבדיל כפי שניתן להסיק מן הסיכום של חלק קטן של P4 מובחן (TG30Neg-GCTM-2Neg)בכל אחד ממדרגי FACS. סרגל קנה מידה = 200 מיקרומטר. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/50856/50856fig3large.jpg" target="_blank">לחץ כאן כדי להציג איור גדול יותר</a>.
<table border="1"><tbody>
<tr>
<td>דוגמה (אמצעי אחסון לתגובה)</td>
			<td>נוגדן ראשוני</td>
			<td>נוגדן משני</td>
			<td>עכברוש PE נגד עכבר CD90.2 b</td>
			<td>פרופידיום יודיד c</td>
		</tr>
<tr>
<td>דוגמת מיון (~ 9 מ"ל עבור ABS ראשי, 2.5 מ"ל עבור ABS משני)</td>
			<td>(TG30 + GCTM-2) א
</td>
			<td>AF 488 עז נגד עכבר IgG2a + AF 647 עז נגד עכבר IgM</td>
			<td>+</td>
			<td>+</td>
		</tr>
<tr>
<td>בקרה-1: TG30 (200 μl)</td>
			<td>TG30</td>
			<td>AF 488 עז נגד עכבר IgG2a</td>
			<td>-</td>
			<td>+</td>
		</tr>
<tr>
<td>בקרה-2: GCTM-2 (200 μl)</td>
			<td>GCTM-2</td>
			<td>AF 647 עז נגד עכבר IgM</td>
			<td>-</td>
			<td>+</td>
		</tr>
<tr>
<td>Control-3: CD90.2 נגד עכבר (200 μl)</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td>+</td>
			<td>+</td>
		</tr>
<tr>
<td>בקרה-4: פיקוריתרין (PE) (200 מיקרול)</td>
			<td>עכבר IgG2a איזוטיפ</td>
			<td>R-פיקוריתרין עז נגד עכבר IgG2a</td>
			<td>-</td>
			<td>+</td>
		</tr>
<tr>
<td>Control-5: איזוטיפ אימונוגלובולין עכבר (200 μl)</td>
			<td>עכבר IgG2a isotype + איזוטיפ IgM</td>
			<td>AF 488 עז נגד עכבר IgG2a + AF 647 עז נגד עכבר IgM</td>
			<td>-</td>
			<td>+</td>
		</tr>
<tr>
<td>Control-6: תאים לא מוכתמים (200 μl)</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
			<td>-</td>
		</tr>
</tbody></table>שולחן 1. מיין דוגמה ופקדים עבור מיון FACS. א דגימת מיון היא immunostained בו זמנית עם נוגדני TG30 ו- GCTM-2. b b CD90.2 נגד עכבר PE משמש לזיהוי תאי עכבר ולהסרת קבצי MEFs מ- HESCs במהלך FACS14. ג תאים שאינם ברי קיימא אינם נכללים באמצעות יודיד propidium בריכוז הסופי של 0.3 מיקרוגרם / מיליליטר. ריאגנט הוסיף (+), לא הוסיף (-) לצינור התגובה.
<table border="1"><tbody>
<tr>
<td>נוגדן </td>
			<td>מארח</td>
			<td>סוג נתונים</td>
			<td>דילול עבודה</td>
		</tr>
<tr>
<td>TG30 (1.4 מ"ג/מ"ל)</td>
			<td>עכבר</td>
			<td>IgG2a</td>
			<td>1:1,000</td>
		</tr>
<tr>
<td>GCTM-2 (היברידיומה על טבעית)</td>
			<td>עכבר</td>
			<td>IgM (IgM)</td>
			<td>1:5 ~ 1:10 a
</td>
		</tr>
<tr>
<td>AF 488 עז נגד עכבר IgG2a</td>
			<td>עז</td>
			<td>פוליקלונאלי</td>
			<td>1:500</td>
		</tr>
<tr>
<td>AF 647 עז נגד עכבר IgM</td>
			<td>עז</td>
			<td>פוליקלונאלי</td>
			<td>1:500</td>
		</tr>
<tr>
<td>R-פיקוריתרין (PE) עז נגד עכבר IgG2a</td>
			<td>עז</td>
			<td>פוליקלונאלי</td>
			<td>1:1,000</td>
		</tr>
<tr>
<td>CD90.2 נגד עכבר</td>
			<td>חולדה</td>
			<td>IgG2b</td>
			<td>1:100</td>
		</tr>
<tr>
<td>עכבר מטוהר IgG2a, κ בקרת איזוטיפ</td>
			<td>עכבר</td>
			<td>IgG2a</td>
			<td>1:200</td>
		</tr>
<tr>
<td>עכבר מטוהר IgM, κ בקרת Isotype</td>
			<td>עכבר</td>
			<td>IgM (IgM)</td>
			<td>1:200</td>
		</tr>
</tbody></table>שולחן 2. פרטי נוגדנים ודילולים למיון FACS. בשל הביטוי הגבוה מאוד של GCTM-2 על פני התא של hESCs לא ניתן להגיע רוויה עם נוגדן זה. כל אצווה של GCTM-2 היברידית supernatant חייב להיות titrated נגד פקד סטנדרטי או אצווה קודמת כדי להשיג תוצאות דומות עם hESCs בקנה מידה כדי למנוע כתמים.
<table border="1"><tbody>
<tr>
<td>שם המדיום</td>
			<td>הרכב</td>
		</tr>
<tr>
<td>hESC/קוסר בינוני</td>
			<td>הנשר שונה של Dulbecco בינוני:תערובת תזונה F-12 (DMEM / F-12) בתוספת 20% החלפת סרום נוקאאוט (KOSR), 2 mM GlutaMAX, 1% חומצות אמינו לא חיוניות MEM, 0.1 מ"מ 2-Mercaptoethanol, 10 ננוגרם/מיליליטר גורם גדילה פיברובלסט אנושי 2 (FGF-2) ועט/סטרפטוקוקוס ב 1x.</td>
		</tr>
<tr>
<td>מדיום MEF</td>
			<td>הנשר שונה בינוני של Dulbecco, גלוקוז גבוה (DMEM) בתוספת 10% סרום שור עוברי (FBS), 2 מ"מ GlutaMAX, ו עט / סטרפטוקוקוס ב 1x.</td>
		</tr>
</tbody></table>שולחן 3. הרכב של מדיה תרבותית.

אנו מתארים את השימוש בנוגדנים חד שבטיים TG30 (CD9) ו- GCTM-2 לגילוי משולב של אנטיגנים משטח התא באמצעות מיון תאים המופעל על ידי פלואורסצנטיות (FACS) לזיהוי והעשרה של תאי גזע עובריים אנושיים חיים (hESC) באמצעות בחירה חיובית וגם שימוש בבחירה שלילית כדי לטהר hESCs מאוכלוסיית תאים מעורבת.

העשרה וטיהור של תאי גזע עובריים אנושיים על ידי זיהוי אנטיגנים משטח התא באמצעות נוגדנים חד שבטיים TG30 ו GCTM-2

Human embryonic stem cells (hESC) can self-renew indefinitely in vitro, and with the appropriate cues can be induced to differentiate into potentially all ...

המטרה הכוללת של הליך זה היא למיין תת-קבוצות של תאי גזע עובריים אנושיים על ידי קשירת האנטיגן שלהם על פני התא של שני הנוגדנים החד-שבטיים TG 30 ו-GC TM. זה מושג על ידי פירוק תאי גזע עובריים אנושיים או תרביות HESC לתרחיפים של תא בודד. בשלב השני, ה-HESC מוכתמים בנוגדנים חד-שבטיים, TG 30 ו-GCTM 2.לבסוף, התאים מופרדים על ידי מיון תאים מופעל פלואורסצנטי ומוחזרים לתרבית. בסופו של דבר, ניתן להעריך את יכולת יצירת המושבה של התאים הממוינים על ידי ציטומטריית זרימה ומיקרוסקופ ניגודיות פאזה. הדימוי העיקרי של טכניקה זו על פני שיטות קיימות כמו תצפית חזותית, הוא שהיא מספקת מדד אובייקטיבי של פלוריפוטנטיות על בסיס תא אחר תא עבור מספר רב של תאים, וזה מקל על הפרדת תאי הגזע העובריים מהתאים הממויינים.שיטה זו יכולה לעזור לענות על שאלות מפתח בתחום הפלוריפוטנטיות, כגון כיצד שינויים בתנאי התרבית משפיעים כמותית על תאי גזע עובריים אנושיים שונים וקווי תאי גזע פלוריפוטנטיים מושרים על ידי בני אדם. ידגימו את ההליך היום מדעני מחקר מהמעבדה שלי, ג'ורג' זואי הון צ'י וביי וואנג, כדי ליצור תרחיף של תא בודד הס להתחיל בשאיבת מצע תרבית הס משתי צלוחיות T 75 המכילות קו תאי הס מתורבת. שטפו כל בקבוק עם 10 מיליליטר DPBS ולאחר מכן דגרו על כל תרבית עם שלושה מיליליטר של תמיסת דיסוציאציה משולשת E ב-37 מעלות צלזיוס ו-5% CO2.לאחר חמש דקות, חבט בצד הבקבוק כדי לעקור את התאים ואז אשר את הניתוק במיקרוסקופ. לאחר מכן, הוסף 10 מיליליטר של אמצעי תרבית קרה לכל בקבוק בעזרת פיפטה סטרילית של 10 מיליליטר. טרטר בעדינות את התאים המנותקים מספר פעמים כנגד דופן הבקבוק כדי להשיג תרחיף של תא בודד בעיקר.כעת אגד את מתלי התא הבודד דרך מסננת תאים של 70 מיקרון לתוך צינור פוליפרופילן סטרילי של 50 מיליליטר כדי להכתים את האנטיגנים של פני השטח של תאי הס. ראשית, Eloqua כ-100,000 תאים ב-150 מיקרוליטר של מדיה בכל אחד מששת צינורות מיקרו-צנטריפוגה של 1.5 מיליליטר. לאחר מכן, דגרו את צינורות הבקרה ואת דגימת המיון הנותרת עם הנוגדנים העיקריים המעניינים בנפחי תגובה סופיים של 200 מיקרוליטר וכ-9 מיליליטר בהתאמה באמצעי תרבית כולל בקרות האיזוטיפ.מניחים את הצינורות בצורה אופקית על קרח ומערבבים אותם בעדינות במשך 30 דקות על משטח נדנדה. לאחר סיבוב התאים, השליכו את הסופרנטנט ולאחר מכן שטפו את דגימת המיון ב-20 מיליליטר של מצע תרבית קרה ואת דגימות הבקרה ב-200 מיקרוליטר מאותו הדבר. כעת דגרו את דגימת המיון בנפח סופי של 2.5 מיליליטר עם הנוגדנים המשניים המתאימים באמצעי תרבית קרה והבקרות בנפח סופי של 200 מיקרוליטר של אותו הדבר, הוסיפו נוגדן PE אנטי-US CD 90.2 שהוכן לאחרונה גם לצינור הבקרה המתאים בשלב זה.שוב, ערבבו בעדינות את הצינורות אופקית על קרח למשך 30 דקות על משטח נדנדה. לאחר סיבוב התאים, השעו שוב את דגימת המיון ב-20 מיליליטר של מצע תרבית קרה ואת הבקרות ב-200 מיקרוליטר ושטפו את התאים פעמיים במדיה. השעו מחדש את דגימת המיון בשניים עד שלושה מיליליטר של אמצעי תרבית קרה בתוספת יודיד פרופידיום וכל אחד מהבקרות למעט התאים הלא מוכתמים ב-300 מיקרוליטר מאותו הדבר.לאחר מכן מסננים כל מתלה תא בודד דרך מסננת תאי מכסה של 35 מיקרון המחוברת למבחנות תחתונות עגולות מפוליסטירן בנפח חמישה מיליליטר וצנטריפוגה את הצינורות כדי לאלץ כל מתלה תאים שיורי על מכסי המסננת לתוך הצינורות. לאחר מכן הקש על דפנות הצינורות כדי להשעות מחדש כל תרחיף תא בודד ולהניח את התאים על קרח. הגדר את ציטומטר הזרימה למיון תאים מופעלים בשני פלואורסצנטיים TG 30 GCTM כך שמתלי תאי הס המנותקים מגודרים כתאים בודדים כדי למנוע גושים וכפילים פוטנציאליים.לאחר מכן, הסר את הפסולת הפוטנציאלית עם שערי הפיזור הקדמיים והצדדיים כך שרק התאים השלמים ימוינו. לאחר מכן אל תכלול את התאים שאינם ברי קיימא על סמך ביטוי הפרופידיום יודיד שלהם. הוצא את הפיברובלסטים העובריים של העכבר או תאי הזנת המת' על ידי ברירה שלילית על סמך הביטוי שלהם של CD 90.2 pe.הגדר את ה-TG 30 G CTM שתי הליכה שליליות בהתאם לאוטופלואורסצנציה של הרקע עבור התאים הלא מוכתמים וגם בקרות האיזוטיפ. לאחר מכן ניתן סוף סוף לחלק את שבר ה-HESC המבודד ללא מזיני מת' ל-TG 30, GCT M שלילי, שני TG 30 נמוך, GCT M נמוך, שני TG 30 נמוך, אמצע GCT, TM, שניים בינוניים ו-TG 30 גבוהים, שתי תת-אוכלוסיות גבוהות. לאחר הגדרת ציטומטר הזרימה, הוסף מיליליטר אחד של מדיה ממוזגת מת' לכל אחת משתי מבחנות פוליסטירן עגולות של חמישה מיליליטר והנח אותן על קרח.לאחר מכן שחזר 400,000 תאים כל אחד מה-TG 30 שלילי GC TM המובחן, שני שליליים וה-TG 30 הפלוריפוטנטי GCTM גבוה שני תת-חלקיקי תאים גבוהים. לאחר סיבוב צינורות האיסוף, יש להשעות כל כדור תא במיליליטר אחד של מדיה מותנית MEF מאוזנת מראש. לאחר מכן זרע בקבוק אחד בשיווי משקל מראש, שליש צפיפות MEF T 75 עם ה-HESC מכל שבר במדיה מותנית מת' מדגרים את תרביות התאים ב-37 מעלות צלזיוס ב-5% CO2, ומרעננים את המדיה מדי יום במשך כשבועיים.תרביות של TG 30 גבוה GCTM פלוריפוטנטי שני תאים גבוהים מראים מושבות דמויות גזע אנושיות לאחר שבוע אחד ומגיעות לכ-80% שטף ב-9 עד 11 ימים. תרביות של TG 30 שלילי GC TM שני תאים שליליים גדלים בעיקר כמדשאה של תאים דמויי פיברובלסטים שמגיעים לשטף משותף לאחר 11 עד 13 ימים. הזיהוי המשולב של אנטיגנים על פני התא TG 30 ו-GC TM 2 מאפשר הבחנה של מספר תת-קבוצות תאים בשלב הפלוריפוטנטי ובשלבים שונים של התמיינות HESC מוקדמת כפי שמצוין על ידי ביטוי סמני תאי גזע וגורמי שעתוק ספציפיים לשושלת בהסכמה עם דיווחים קודמים, TG 30 GC TM שני שליליים נמוכים, ניתן להבחין בין תת-שברים בינוניים וגבוהים בתוך זכר תאי גזע עובריים אנושיים קו אחד המשמש למחקר זה כאן, האחוזים של תת-האוכלוסיות המגודרות השונות האופייניות לניתוח TG 30 GCTM שתי זרימה ציטומטריה מוצגים בניסוי המוצג כאן.מספר מוגדר של TG 30 GCT M שלילי שני תאים שליליים תרבית ברצף לאחר המיון במשך כשבועיים, ולאחר מכן נאלצו לאסוף רק את TG 30 GCT M שלילי שני שברים שליליים לפני הציפוי מחדש. בכל מעבר, התוצאות מצביעות על כך שה-TG 30 שלילי הראשוני gct M שני תת-חלקים שליליים מעשיר עבור TG 30 שלילי GCT M שני תאים מובחנים שליליים לאחר אריזה עוקבת. אוכלוסייה מינורית של TG 30 GCT M גבוה שני תאים גבוהים מתגלה במעבר הראשוני, אך בסופו של דבר נעלמת עם אריזה נוספת ומשאירה רק דגימות חופשיות של תאי גזע פלוריפוטנטיים.כאן מוצגת המורפולוגיה האופיינית של הדשא של TG 30 שלילי GCT M מובחן שני תאים שליליים לאחר 14 יום. שימו לב כי מושבות דמויות HESC ספורדיות שנראו לאחר 14 יום התערבבו עם TG 30 GC TM שלילי שני תאים שליליים שככל הנראה נוצרים על ידי TG 30 גבוה GCT M מזהם שני תאים גבוהים. שימו לב שזה קורה רק לעתים רחוקות ובקטע הפוסט-עובדות הראשוני המבוסס על תצפיות קודמות המשתמשות בבדיקה זו, צפוי כי האיסוף והתרבית של TG 30 גבוה GCTM שני תאים גבוהים צריכים להעשיר עבור HSCs פלוריפוטנטיים היוצרים מושבה.לכן, אריזה עוקבת של TG 30 High GCTM פלוריפוטנטי שני תאים גבוהים לאחר מיון לפי זרימה ציטומטרית נחקרה גם בתרבויות מייצגות אלה, התאים מוינו בפקס באמצעות TG 30 ו- G CT M שניים, והחליפו רק את TG 30 High G CTM שני תאים גבוהים בכל מעבר. באופן זה, נצפה כי רוב התאים ממוקמים בתת-שברים הקשורים לפלוריפוטנטיות המעידים על אוכלוסייה מועשרת של תאים פלוריפוטנטיים השומרת גם על יכולת להתמיין וליצור מחדש אחוז קטן של TG 30 שלילי G CTM שני תאים שליליים. יתר על כן, תרביות עוקבות של TG 30 High G CTM שני תאים ממוינים גבוהים מציגות מספר רב של מושבות דמויות HESC לאחר המעבר המצביעות גם על שמירה על מצב פלוריפוטנטיות.בעת ניסיון הליך זה, חשוב לזכור לכייל את מכשיר הפקס לפני השימוש בכל פעם כדי להבטיח את יכולת השחזור של התוצאות לאחר הליך זה. ניתן לבצע שיטות אחרות כמו מיקרו-מערכים, ריצוף גנום שלם או טרטומות כדי לענות על שאלות כגון האם תאים אלה באמת פלוריפוטנטיים לאחר התפתחותם? טכניקה זו סללה את הדרך לחוקרים בתחום תאי גזע פלוריפוטנטיים מושרים לחקור את הבטיחות והיציבות של תאים אלה בהשוואה לתאי גזע עובריים אנושיים.לאחר צפייה בסרטון זה, אתה אמור להבין היטב כיצד להכין בזהירות ולהכתים תרביות מעורבות של תאי גזע אנבר אנושיים על מנת להעשיר את תאי הזיפים. אל תשכח שעבודה עם תאים אנושיים עלולה להיות מסוכנת ביותר ויש לנקוט תמיד באמצעי הזהירות כגון לבישת כפפות ועבודה עם מחלקה שנייה על ידי ארון בטיחות בעת ביצוע הליך זה.

enrichment-purging-human-embryonic-stem-cells-detection-cell-surface

Research

JoVE Journal

Biology

ביולוגיה

אנו מציגים פרוטוקול תכנות מחדש יעיל של האדם התאים הסומטיים אל האדם המושרה בתאי גזע pluripotent (hiPSC) באמצעות וקטורים retroviral קידוד Oct3 / 4, Sox2, Klf4 ו-c-myc (OSKM) וזיהוי של hiPSC לתכנות מחדש בצורה נכונה על ידי צביעה חיה עם Tra למוצרי 1-81 נוגדנים.

בחירה בידוד מושבות של בתאי גזע pluripotent מושרה לתכנות מחדש של Fibroblasts למבוגרים

כאן, אנו מציגים פרוטוקולי תרבית תאי גזע פלוריפוטנטיים אנושיים (hPSC), המבוססים על גידול חד-שכבתי (NCM) שאינו מסוג מושבה של תאים בודדים מנותקים. שיטה חדשה זו, המשתמשת במעכבי קינאז הקשורים ל-Rho או באיזופורם הלמינין 521 (LN-521), מתאימה לייצור כמויות גדולות של hPSCs הומוגניים, מניפולציה גנטית וגילוי תרופות.

תרבויות אלטרנטיבי לפלוריפוטנטיים אנושיים לתאים גזע ייצור, תחזוקה וניתוח גנטי

ניתן לתכנת מחדש פיברובלסטים עובריים של עכבר לתאי גזע פלוריפוטנטיים מושרים ביעילות נמוכה על ידי ביטוי מאולץ של גורמי שעתוק Oct-4, Sox-2, Klf-4, c-Myc. המתווכים הנדירים של תגובת התכנות מחדש מבודדים FACS באמצעות תיוג עם נוגדנים כנגד יצרני פני התא Thy-1.2, Ssea-1 ו-Epcam.

טיהור מרקר פני תא בתיווך של התשומות לייצור תאי iPS מדגם אפשר לתכנת עכבר

פרוטוקול זה מתאר אינדוקציה יעילה של אנדותל המוגני ואבות המטופויאטיים רב-פוטנציאליים מתאי גזע פלוריפוטנטיים אנושיים באמצעות ביטוי מאולץ של גורמי שעתוק.

אינדוקציה ישירה של Hemogenic האנדותל ודם על ידי יתר של גורמי שעתוק בתאי גזע pluripotent האדם

כאן אנו מתארים שיטה לטיהור של תאי גזע עובריים אנושיים הבדילו כי מחויב כלפי האנדודרם הסופי לשיפור יישומים במורד בידול נוסף.

שיטה מהירה ויעילה עבור טיהור של תאים האנדודרם המופקים מתאי גזע עובריים אנושיים

פרוטוקול זה מתאר את התכנות של ראשי מי השפיר נוזל לבין הממברנה בתאי גזע mesenchymal לתוך תאי גזע pluripotent המושרה באמצעות גישה episomal-שילוב בתנאים מוגדרים לחלוטין מבחינה כימית. תהליכי מיצוי, תרבות, התכנות, ואפיון של תאי גזע pluripotent המושרה הנוצרת על ידי שיטות מחמירים מפורטים.

התכנות ראשי מי שפיר ו ממברנות התאים כדי Pluripotency בתנאים קסנו-חופשית

אנו מציגים עבור יעיל בתפזורת, מהירה כימי לדוגמות של תאי גזע pluripotent האנושי שושלת היוחסין-איפה זה מונח קונבנציונאלי (hPSC) לתוך מצב של epiblast דמוי pluripotent יציב epigenomically תמים פרוטוקול. שיטה זו התוצאה ביטוי גנים שושלת היוחסין-איפה זה מונח ירד שיפור ניכר תוך בידול multilineage מכוונת על-פני רפרטואר רחב של קווי hPSC המקובלת.

לדוגמות כימיים בתאי גזע Pluripotent האנושית המקובלת למצב תמים כמו עם העוצמה התמיינות משופרת Multilineage

בתאי הנבט הקדמוני (PGCs) הם מבשרי נפוצות של זרע וגם ביצים. PGCs עובריים אנושיים מצוינים מתאי epiblast pluripotent באמצעות אינטראקציות של ציטוקינים. כאן, אנו מתארים את פרוטוקול 13 יום של גרימת transcriptomally תאים אנושיים הדומה PGCs על פני השטח של גופים embryoid מתאי גזע pluripotent טענתי-pluripotency המושרה.

דור של תאים אנושיים כמו תא הנבט הקדמונים על פני השטח של גופים Embryoid מן pluripotency בשלה המושרה בתאי גזע Pluripotent

מאמר זה מתאר שיטה ליצירת אנטיגן גידול פונקציונלי-ספציפי המושרה pluripotent תא גזע בודד באמצעות OP9/DLL1 מערכת התרבות המשותף.

שימוש בתאי גזע של האדם המושרה Pluriפוטנטי עבור הדור של אנטיגן גידולים-תאים T ספציפיים

בסרטון הזה אנחנו מדגימים איך במעבדה שלנו שגרתי קטעים בגוונים האדם עובריים קווי גזע עם טריפסין.

גוונים Passaging האדם עובריים לתאי גזע קווי עם טריפסין

למד שיטת מיון תאי גזע עובריים אנושיים באמצעות נוגדנים חד-שבטיים TG30 ו-GCTM-2 ו-FACS. טכניקה זו מאפשרת העשרת תאים פלוריפוטנטיים והסרת תאים מובדלים לחקר ביולוגיית תאי גזע.

העשרה וטיהור של תאי גזע עובריים אנושיים על ידי זיהוי אנטיגנים משטח התא באמצעות נוגדנים חד שבטיים TG30 ו GCTM-2

גלה סרטונים נוספים