28 בנובמבר 2014
אנו מתארים בדיקה קולורימטרית כמותית פשוטה המודדת באופן ספציפי את הפעילות הפרוטאוליטית של אדם, עכבר או חולדה Granzyme B (GzmB). ניתן להתאים פרוטוקול זה בקלות לקביעת פעילות הפרוטאז של פרוטאזות סרין גרגירים אחרות על ידי הידרוליזה של מצעי פפטידים סינתטיים אחרים עם רצף זיהוי מתאים.
המטרה הכללית של הניסוי הבא היא למדוד את הפעילות הפרוטאוליטית של הפרוטאזה granzyme B. מטרה זו מושגת תחילה על ידי הכנת ליזאט של התאים הרלוונטיים ולאחר מכן הוספה מהירה של מצע לדגימות. פעילות ה-granzyme B נמדדת לאחר מכן באמצעות תגובה קולורימטרית. בסופו של דבר, ניתן להעריך את השסוע הספציפי מאוד של alla alla as s benzo על ידי granzyme B בהתבסס על הספציפיות הייחודית של המצע לשאריות aspart acid.
היתרון המרכזי של טכניקה זו על פני שיטות קיימות, כגון זיהוי ביטוי של granzyme B באמצעות PCR או Western blot, הוא שהידרוליזה של בנזיל היא ספציפית ל-granzyme B ומעידה גם על כך שהפרוטאזה פעילה. להכנת ליזטים של תאים, בידדו תחילה תאי NK ראשוניים מתליות תאים בודדים של טחולים מעכברי wild type C57BL/6, או מעכברי ביקורת עם מחיקה של הגן granzyme B, באמצעות סלקציה שלילית תוך שימוש בקיטים זמינים מסחרית לפי הוראות היצרן, לאחר שהתאים הופעלו. שטפו את התרבית שלוש פעמים ב-PBS במהירות מקסימלית למשך שתיים עד שלוש שניות, ולאחר מכן השביו את המשקע, המכיל מינימום של 5 מיליון תאי NK, ב-100 µL של Nont P 40 lysis buffer על קרח למשך 20 דקות.
לאחר מכן, סבבו את הליזט במיקרו-צנטריפוגה למשך 10 דקות ב-15,000 Gs והעבירו את העלייה למבחנה נקייה. לאחר קביעת ריכוז החלבון, בהתאם לפרוטוקול מסחרי מתאים, אחסנו את הדגימה בריכוז מינימלי של כ-2 mg/mL בטמפרטורה של 20°C- לצורך ביצוע בדיקת פעילות של granzyme B. לאחר מכן, דללו מינימום של 100 µg של ליזט חלבון לכל דגימה בבופר HEPES שהוכן טרי לנפח סופי של 160 µL.
לאחר מכן, באמצעות פיפט רב-ערוצי, טענו 50 µL של דגימה לכל באר בשלוש חזרות לתוך פלטת ויניל בעלת תחתית U עם 96 בארות. תוך הקפדה על הכללת שלוש בארות ביקורת המכילות תמיסת בופר בלבד, הוסיפו 100 µL של DTNB מדולל לכל באר. לאחר מכן, הוסיפו במהירות 50 µL של סובסטרט alala asks s benzoyl שדולל טרי לכל אחת מבארות הבופר בלבד, לאחר מכן לבקרות השליליות, ובסיום לדגימות החיוביות הצפויות.
מדוד את פעילות ה-aase באמצעות הידרוליזה של alala as benzyl בקורא מיקרופלייטים בצפיפות אופטית של 405 nanometers, תוך שימוש בפרוטוקול בדיקה קינטית הכולל 25 קריאות מדי 15 שניות. לבסוף, השתמש בתוכנת קורא הפלייטים כדי לחשב את הקצב המקסימלי של פירוק הסובסטרט עבור כל באר, ולאחר מכן העבר את הנתונים הגולמיים לתוכנה המתאימה לניתוח סטטיסטי תוך שימוש בעכברים עם knockout של גן ה-granzyme. נמצא כי הסובסטרט הפפטיד הסינתטי alala as benzyl עובר הידרוליזה ספציפית על ידי granzyme B. ניתן למדוד פירוק יעיל נוסף של הסובסטרט הסינתטי בליזאטים של תאים מתאי NK ראשוניים מסוג wildtype, אך לא בתאי NK מבעלי knockout של granzyme B המשמשים כביקורת.
בניסוי זה, הפעילות הפרוטאוליטית של granzyme A, בעל ספציפיות למסלול דמוית טריפסין והנמצא בליזאטים של שני סוגי התאים, הייתה שווה כפי שנמדד על ידי הידרוליזה של BLT benzyl, כאשר I-E-P-D-P-N-A שימש באופן כללי לבדיקת פעילות של granzyme B בין מינים שונים. בניתוח זה של ניסוי מייצג, נמצא כי רצפי הטטרה-פפטיד גילו ש-granzyme B אנושי, אך לא של עכבר, מסוגל לבצע ביקוע יעיל לאחר הרצף IEPD, התואם את רצף הזיהוי הן ב-bid אנושי והן ב-bid של עכבר. לעומת זאת, הפחתת כמות ליזאט של תאי NK leukemia אנושיים מ-30 micrograms ל-10 micrograms עדיין מביאה לכמות מספקת של granzyme B כדי לבצע הידרוליזה של מצע I-E-P-D-P-N-A.
לאחר צפייה בסרטון זה, תרכשו הבנה טובה לגבי אופן בחירת התשתית המתאימה ובקרות הניסוי עבור ניתוח in vitro של אנזים B אדום מאדם ומעכבר.
צפו בתמליל המלא וקבלו גישה לאלפי סרטונים מדעיים
מאמר זה מציג בדיקה קולורימטרית כמותית למדידת הפעילות הפרוטאוליטית של Granzyme B (GzmB) בדגימות מאדם, עכבר או חולדה. ניתן להתאים את השיטה לפרוטאוזות סרין גרנולריות אחרות באמצעות שימוש בסובסטראטים של פפטידים סינתטיים שונים.
מדידה מדויקת של הפעילות הפרוטאוטיקה של Granzyme B חיונית לתיקוף תפקודם של לימפוציטים ציטוטוקסיים בפיתוח אימונותרפיה. בדיקה קולורימטרית זו מספקת קריאה ישירה וספציפית של פעילות הפרוטאז, המאפשרת הפחתת סיכונים מכניסטית לגבי מעורבות המטרה ופוטנציאל פרו-אפופטוטי במודלים פרה-קליניים. התאימות שלה בין מינים שונים תומכת ברצף תרגומי ממחקרי מכרסמים ליישומים בבני אדם.
הבדיקה משתלבת ברצף הגילוי, החל מתיקוף המטרה ועד לאופטימיזציה של המולקולות המובילות (lead optimization), כאשר פעילות פרוטאז תפקודית מספקת מידע על יעילות ביולוגית ועל מנגנון הפעולה.