26 בדצמבר 2016
זיהוי מטרות תרופות חדשות שעוברות מניסויים פרה-קליניים לניסויים בבני אדם הוא בראש סדר העדיפויות המדעי. לשם כך, אנו מתארים כאן גישה גנומית פונקציונלית לבחינת ההשפעה של דלדול גנים על ספרואידים בקו תאים סרטניים, אשר מודלים בצורה מתאימה יותר סרטן אנושי in vivo.
מטרת פרוטוקול מסך siRNA זה היא לחקור את ההשפעה של השתקת גנים על צמיחת ספרואידים בקו תאי סרטן. בהשוואה לטכניקות תרבית תאים דו-ממדיות מסורתיות, ספרואידים סרטניים מציגים תנאים דומים יותר לאלה שנתקלים בהם בגידולים in vivo. שיטה זו שימושית להערכה תפקודית של גנים המשתנים לעתים קרובות בסרטן אנושי, וחשוב מכך, ניתן להשתמש בה כדי לקבוע אילו גנים הם אונקוגנים פוטנציאליים או מדכאי גידול בתנאי תרבית מורכבים יותר, כמו זה שנראה בתרבית תלת מימדית, ובמיוחד תחת היפוקסיה.
היתרון העיקרי של טכניקה זו הוא שהיא ניתנת להתאמה בקלות כך שחוקרים יכולים להשתמש בה כדי לחקור את הגנים הספציפיים המעניינים אותם בקווי התאים המועדפים עליהם. אנו מאמינים שהוא מתבסס על גישות סינון sRNA ממוקדות הנוכחיות. מקובל להעריך שמסכים ממוקדים, ולא זני גנום שלמים, מאפשרים למדענים לשאול שאלות ספציפיות ולהפיק תוצאות חזקות יותר.
ניתחנו את ההשפעה של השתקת גנים על הכדאיות והגודל של הספרואידים, אך ניתן גם להשתמש בצבעים ביומטריים לקריאת מסך שונה, כגון אפופטוזיס. מדגימה את ההליך היא פטי וואי מהמעבדה שלנו. התחל בהפשרת צלחות של 96 בארות המכילות את ספריית ה-siRNA בטמפרטורת החדר.
לאחר מכן סובב במשך חמש דקות בחום של 1, 000 פעמים גרם, בעזרת צנטריפוגה על ספסל. השתמש בפיפטה רב-ערוצית כדי להוסיף 10 מיקרוליטר של מדיום סרום מופחת המכיל את מגיב הטרנספקציה האופטימלי לבארות של כל צלחת. דגירה למשך 15 דקות כדי לאפשר היווצרות מתחמי טרנספקציה, המכילים siRNA.
כמו בכל צינור סינון, יש לבצע אופטימיזציה חזקה של יכולת יצירת הכדורים של קווי תאים בתנאי טרנספקציה לפני ביצוע המסך המלא. לאחר מכן, נסו את התאים להקרנה עד שהם מתנתקים מהבקבוק. לאחר שהתאים התנתקו, נטרלו את הטריפסין עם נפח מתאים של תווך ספציפי לקו התא, העבירו לצינור צנטריפוגה וסובבו במשך חמש דקות במהירות של 1,000 פעמים גרם בצנטריפוגה על ספסל כדי לאסוף את התאים.
השליכו את הסופרנטנט, והשעו מחדש את הגלולה לתרחיף חד-תאי עם נפח מדיום מתאים. בצע ספירת תאים באמצעות מונה תאים אוטומטי. לאחר מכן יש לדלל את המתלה ל -5,000 תאים לכל 180 מיקרוליטר עם מדיה קרה.
העבר את תרחיף התאים למאגר. בעזרת פיפטה רב-ערוצית, המוגדרת ב-180 מיקרוליטר, פיפטה כדי לערבב ולהעביר את מתלה התא לצלחת 96 הבארות המכילה את ה-siRNA. צנטריפוגה את הצלחת ב -1, 000 פעמים גרם בצנטריפוגה מקוררת מראש של 4 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות, ואז דגרו את הצלחת בחממת תרבית רקמות של 37 מעלות צלזיוס.
בשלב זה, התאים יופיעו כפסיפס בתחתית הבארות. לאחר 24 שעות, התבונן בתאים תחת מיקרוסקופ. בשלב זה, יש לצבור את התאים יחד ליצירת ספרואיד יחיד במרכז הבאר.
הוסף 100 מיקרוליטר של מדיום שלם לכל באר כדי לעודד צמיחה לפני החזרה לחממה. לאחר שלושה ימי צמיחה, הסר בעדינות 100 מיקרוליטר בינוני מכל באר, והוסף 100 מיקרוליטר מדיום טרי. ביום השביעי, בחנו את הספרואידים תחת מיקרוסקופ, ולאחר מכן המשיכו לכמת את גודל הספרואידים בקורא צלחות שיכול לנטר כמותית את צמיחת הספרואידים לאורך זמן.
כדי לכמת את גודל הספרואיד, פתח תחילה את התוכנה במחשב. בחר צלחת 96 בארות, בחר את סוג הצלחת המתאים והזן שם ניסוי. לאחר מכן, הכנס את צלחת 96 הבארות המכילה את הספרואידים לתוך ציטומטר הדמיה של צלחת מיקרו-באר.
לאחר מכן, בחר את היישום Tumorsphere. בחר מיקוד מבוסס תמונה כדי לשנות את המיקוד כך שהספרואיד יהיה ממוקד ויהיה בעל ניגודיות אופטימלית. בחר את הבארות הדורשות סריקה והתחל בסריקה.
לאחר מכן, ודא שמסיכת האובייקט מייצגת במדויק את גודל הכדור. עבור ספרואידים BT474 שגדלו במשך שבעה ימים, התאימו את הדיוק לגבוה והגדירו את קוטר המושבה המינימלי ל-200 מיקרון. השתמש בפונקציה Export כדי לייצא את הנתונים בצורה של קובץ נתונים מבואר שינותח כדי לזהות siRNAs עם השפעה מובהקת סטטיסטית על אזור הספרואיד.
לאחר ההדמיה, הסר 100 מיקרוליטר של מדיום מכל באר, והוסף 100 מיקרוליטר של צבע כדאיות זוהר כדי לקבוע את כדאיות התא. לאחר דגירה של הצלחות למשך 15 דקות, סרוק את הצלחת באמצעות קורא צלחות זוהר. פרוטוקול זה עשוי להיות מותאם גם לשימוש עם קווי תאים סרטניים אחרים.
הליך הטרנספקציה ההפוכה של בקרות שאינן ממוקדות לא השפיע באופן משמעותי על הכדאיות של אף אחד מהקווים שנבדקו, בעוד שהטרנספקציה של יוביקוויטין B, בקרה חיובית להרג תאים, הפחיתה משמעותית את הכדאיות. תאי BT474 עברו טרנספטציה הפוכה עם ספריית siGENOME siRNA אנושית בת 200 גנים בשלוש עותקים. נצפה שטח כדורי וכדאיות.
זוהו חריגים משמעותיים עם ציון z גדול מ-1.7. SiRNAs שהגדילו או הפחיתו משמעותית את שטח הכדור ואת הכדאיות מוצללים בכחול, ואדום מתאר את ה-siRNAs הביקורת. סט מיקרוגרפים זה מציג תמונות מייצגות של ספרואידים BT474 שבעה ימים לאחר טרנספקציה הפוכה עם E-Cadherin, בקרה שאינה ממוקדת, PIK3CA, ERBB2 או SF3B1 siRNA.
היסטוגרמה זו מראה כיצד טיפול בכל siRNA השפיע על כדאיות התא שבעה ימים לאחר טרנספקציה הפוכה. הפלה של ERBB2 ו-PIK3CA הפחיתה משמעותית את כדאיות התאים בהשוואה לבקרות. תמונה זו מדגימה כי ניתן לצבוע את הספרואידים בהצלחה כדי לחשוף את ההשפעה של השתקת גנים על חלבוני המטרה.
לאחר השליטה, ניתן לסנן כמה מאות גנים במספר שורות תאים ביום אחד, וזה מאפשר זיהוי חזק של גנים חדשים פוטנציאליים החשובים להישרדות בתרבית תלת מימדית. לאחר צפייה בסרטון זה, אתה אמור להבין היטב כיצד לתרבית בהצלחה ספרואידים של תאים סרטניים הניתנים להשתקת גנים בתיווך sRNA. תוכל גם לחקור את ההשפעה של השתקת גנים על ידי ביצוע אימונוהיסטוכימיה על הספרואידים.
זה יכול להציע מידע מרחבי רב ערך שעשוי ליידע אותך על הביולוגיה הבסיסית.
מאמר זה מציג גישה של גנומיקה פונקציונלית לזיהוי מטרות תרופתיות פוטנציאליות, באמצעות בחינת השפעות של דלל גנים (gene depletion) על ספרואידים של תאי סרטן. ספרואידים אלו מספקים מודל מדויק יותר של גידולי אדם in vivo בהשוואה לתרביות דו-ממדיות (2D) מסורתיות.
סריקת גנומיקה תפקודית במודלים של ספרואידים סרטניים בתלת-ממד משפרת את תיקוף המטרות על ידי חשיפת תלות גנטית בתנאים רלוונטיים פיזיולוגית. גישה זו מגבירה את הביטחון החזוי בזיהוי מטרות תרופתיות חדשות באמצעות לכידת השפעות של מיקרו-סביבת הגידול, שלעיתים קרובות מוחמצות בתרביות דו-ממדיות. השיטה תומכת בהחלטות גילוי מוקדמות על ידי קישור השפעות השתקת גנים לצמיחה ולחיוניות של הספרואידים, ובכך מאפשרת הפחתת סיכונים מכניסטית של מטרות מועמדות.
השיטה משתלבת ברצף הגילוי, מזיהוי המטרה ועד לאופטימיזציה של תרכובות מובילות (lead optimization), במיוחד עבור מטרות הדורשות תיקוף במודלים גידוליים מורכבים הנוטים להיפוקסיה.