7 בנובמבר 2025
פרוטוקול זה מאפשר בקרת איכות ראשונית לניסויי RNA-seq עבור ביולוגים במעבדה רטובה עם ניסיון מוגבל בביואינפורמטיקה.
פיתחנו כלים ביואינפורמטיים חדשניים לפישוטון, אוטומציה ואינטגרציה של ניתוח נתונים מניסויים בעלי תפוקה גבוהה. אנו משתמשים בריצוף מהיר בתפוקה גבוהה, בתוכנות ביואינפורמטיקה מתקדמות ותשתית מחשוב עוצמתית כדי לאפשר ניתוח ביולוגי שיטתי. כדי להתחיל, התקן את כל חבילות ה-R הנדרשות באמצעות מנהל החבילות ביוקונדקט.
צור תיקיית מקור לארגון קבצי הקלט לניתוח. הוסף את רצף הגנום הייחוס בפורמט FASTA כ-ReferenceGenome. FA לתיקייה הזו.
הוסף את קובץ ההערה של מודל הגנים בשם ReferenceAnnotation. GTF לאותה תיקייה. באופן אופציונלי, לכלול את אנוטציית גן RRNA כקובץ GTF בשם ReferenceRRNA.gtf.
שים את כל קריאות הרצף כקבצי FASTQ דחוסים בתיקייה בשם Reads. ודא שכל קובץ עומד בפורמט השם. לאחר מכן קבעו את פרמטרי הניתוח לפי שיטת הריצוף שבה השתמשו.
כדי למפות את איכות הרצף, השתמש בחבילת Rsubread כדי לבנות אינדקס של הגנום הייחוס מתוך קובץ FASTA של הגנום. עבור כל דגימה, השתמשו בפונקציית היישור כדי לחזור וליישר קריאות ריצוף לגנום הייחוס. שמרו את קבצי היישור שהתקבלו בתיקיית הפלט בפורמט bam.
עכשיו השתמש בפונקציית ספירות התכונה כדי לספור קריאות שממופות לכל גן. קבצי ההערות צריכים להיות בפורמט GTF. ודא שרק קריאות עם התאמה אחת לגנום נספרות.
ספירת הקריאות שממופות לגנים של RRNA באמצעות פונקציית ספירות התכונות עם קובץ GTF של גן RRNA. אפשר לכלול קריאות מרובות ממופות בספירה זו. שלפו את סטטיסטיקות הקצאת הקריאה שנוצרו על ידי פונקציית ספירת התכונות עבור כל מדגם.
סטטיסטיקות אלו כוללות את מספר הקריאות המסווגות כמוקצות, לא ממופות, מרובות ממופים ואחרות. אסוף את הסטטיסטיקות של שיוך גנים ל-RRNA בנפרד. לאחר מכן יצר גרפים של עמודים, תוך המחשת סטטיסטיקות מיפוי הקריאה מהשלבים הקודמים.
מקבצים גנים לפי מספר הקריאות שהוקצו להם. צייר את תוצאות הסיווג כגרף בר. דגימת S2R1 הראתה מספר קריאות נמוך הן לפני והן אחרי הגיזום.
מספר הקריאות המצומצם של דגימת S2R2 הופחת באופן ניכר לעומת ספירת הקריאה הגולמית, מה שמעיד על הסרת קריאות באיכות נמוכה במהלך החיתוך. מיפוי זיהה בעיות במשימות הקריאה. דגימת S2R3 הציגה מספר גבוה של קריאות מרובות ממופים וכמות מוגברת של קריאות RNA ריבוזומלי.
חלק גדול מהקריאות בדגימה S2R4 לא התמקד בגנום הייחוס, מה שמרמז על זיהום ברצפים מאורגניזם לא מטרה. דגימות S2R1 עד S2R4 הראו פחות גנים עם יותר מ-100 קריאות מוקצות. במפת החום של המתאמים, מדגם S2R5 מקובץ עם השכפולים של דגימת S1 ודגימה S1R5 מקובצים עם השכפולים של דגימת S2, מה שמעיד על שגיאת תיוג משוכפלת ככל האפשרויות.
אנו מטפלים בחסר בבקרת איכות עבור RNA-Seq, ומבטיחים הערכת נתונים אמינה לפני ניתוח ביטוי גנים בהמשך. הכלי שלנו משלב מספר טקסטים איכותיים, ומציע הערכת RNA-Seq נגישה, אוטומטית וניתנת לשכפול עבור ביולוגים. הכלי שלנו מאפשר לחקור כיצד איכות RNA-Seq משפיעה על הפרשנות הביולוגית, וסוללת את הדרך לטרנסקריפטומיקה שקופה וניתנת לשחזור.
פרוטוקול זה מאפשר בקרת איכות ראשונית עבור ניסויי RNA-seq עבור ביולוגים במעבדה עם ניסיון מוגבל בביואינפורמטיקה. הוא משלב כלים אוטומטיים לניתוח ביולוגי שיטתי, המבטיחים הערכה מהימנה של הנתונים לפני ניתוח ביטוי גנים המשכי.
בקרת איכות קפדנית בניסויי bulk RNA-seq חיונית להבטחת שלמות הנתונים והשחזוריות שלהם לאורך צינורות של מחקרי גילוי ומחקרים תרגומיים. צינור העיבוד Rup מספק מסגרת סטנדרטית ונגישה לזיהוי מוקדם של בעיות בריצוף ובאיכות הדגימות, דבר המשפיע ישירות על מהימנותן של אנליזות ביטוי גנים בשלבי העיבוד הבאים. על ידי מתן אפשרות לביולוגים במעבדה להעריך באופן שיטתי את שמישות הנתונים, Rup מחזק את הביטחון החזוי ותומך בקבלת החלטות מותאמת סיכונים בתיקי פיתוח ומחקר (R&D) של חברות ביו-פארמה.
Rup משתלב בממשק שבין יצירת הנתונים לבין הניתוח הבא בשלב הבא, ובכך מגשר בין שלבי הגילוי המוקדמים, הסריקה ומחקרי התרגום.