Attività enzimatica

ConcettiPreparazione dell'istruttoreProtocollo per Studenti
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  1. Esperimento dell'enzima perossidasi di base
    • Per iniziare, è necessario determinare la linea di base per la reazione dell'enzima perossidasi. Preparare il substrato aggiungendo 7 ml di acqua distillata a una provetta pulita e quindi aggiungere 0,2 ml di guaiacolo. Nota: il guaiacolo è un indicatore che cambia colore che diventa più giallo-arancio man mano che la reazione enzimatica progredisce.
    • Successivamente, aggiungi 0,3 ml di H2O2 allo 0,1%.
    • Utilizzando un pennarello, etichettare il substrato della provetta e poi coprire la provetta con un pezzo di pellicola sigillante.
    • Tenendo il coperchio in posizione, capovolgi il tubo quattro volte per mescolare il contenuto del tubo.
    • In una seconda provetta, aggiungi 6,0 ml di acqua distillata e 1,5 ml di perossidasi di rapa ed etichetta questa provetta "Enzima".
    • Copri questo tubo con un nuovo pezzo di pellicola sigillante e mescola queste soluzioni con quattro inversioni come descritto in precedenza (passaggio 4).
    • Quando entrambe le provette sono state miscelate, posiziona un timer sul banco, accanto al rack delle provette, quindi versa il contenuto della provetta del substrato nella provetta dell'enzima, facendo attenzione a non versare alcun liquido.
    • Quindi, versa l'intero volume dal tubo dell'enzima nel tubo del substrato per mescolare accuratamente le soluzioni e coprire il tubo del substrato con un altro pezzo di pellicola sigillante.
    • Metti la provetta nel rack e avvia il timer.
    • Osserva il colore nel tubo del substrato a 0, 1, 2, 3, 4 e 5 minuti, dopo la miscelazione.
    • Per quantificare il cambiamento relativo di colore e la velocità della reazione, abbina il colore osservato al colore più vicino nello standard. NOTA: Scattare una foto dell'intensità del colore osservata in ciascun punto di campionamento può facilitare la registrazione dei risultati.
    • Registra i colori che vedi nella tabella. Clicca qui per scaricare la Tabella 1
  2. Studiare l'Effetto del pH sull'Attività della Perossidasi
    • ISPOSIZIONI: In questo esercizio, l'ipotesi sperimentale è che la velocità di reazione raggiungerà un massimo o un optimum a un pH neutro medio e che queste velocità saranno superiori o approssimativamente uguali alla velocità di base. L'ipotesi nulla è che non ci saranno differenze nelle velocità di reazione tra la linea di base e i trattamenti di pH.
    • Innanzitutto, etichetta sei provette pulite per ciascuno dei sei livelli di tampone pH 3 - 8 e la parola "Enzima".
    • Quindi, aggiungi 6 ml delle corrispondenti soluzioni tampone pH fornite dal tuo istruttore a ciascuna delle provette.
    • Quindi, aggiungi 1,5 ml di perossidasi di rapa a ciascuna provetta, facendo attenzione a non contaminare il contagocce con la soluzione tampone.
    • Copri le provette enzimatiche con una pellicola sigillante e capovolgi delicatamente ogni provetta per mescolare il contenuto della provetta.
    • Come descritto nell'esperimento di reazione di base, crea i substrati per queste reazioni aggiungendo 7 ml di acqua distillata, 0,2 ml di guaiacolo e 0,3 ml di 0,1% H2O2 a sei nuove provette pulite.
    • Quindi, etichetta sei provette pulite aggiuntive con i livelli di pH 3 - 8 e la parola "Soluzione" e prepara un timer.
    • Lavorando rapidamente, versa una provetta di substrato e una provetta pH nella provetta della soluzione corrispondente. Ripetere questo passaggio per ciascuno dei diversi livelli di pH.
    • Quindi, copri le provette con una pellicola sigillante e mescola ogni provetta con quattro inversioni. Posizionare ogni provetta in una rastrelliera, man mano che vengono mescolate.
    • Osserva il colore in ogni tubo al tempo 0 e avvia immediatamente il timer. Continuare a osservare il colore in ogni tubo a intervalli di ogni minuto, fino a 5 minuti.
    • Ad ogni intervallo, usa il codice colore nello standard per registrare i colori osservati nella tua tabella.
  3. Indagare l'effetto della temperatura sull'attività della perossidasi
    • ISPOSIZIONI: In questo esercizio, l'ipotesi sperimentale è che la velocità di reazione raggiungerà un valore ottimale superiore alla temperatura ambiente, o 23 °C, ma inferiore al tasso di denaturazione enzimatica e che questo massimo sarà superiore al tasso di base. L'ipotesi nulla è che non ci saranno differenze nelle velocità di reazione tra la linea di base e i trattamenti di temperatura.
    • Riempi un becher da 800 mL circa a metà strada verso l'alto con ghiaccio e versa acqua fredda nel becher per creare un bagno di ghiaccio. Etichetta questo bicchiere come "Ghiaccio".
    • Quindi, etichetta quattro nuovi becher da 600 ml con le stesse temperature delle provette del substrato e aggiungi 150 ml di acqua di rubinetto a ciascuno.
    • Utilizzando una piastra riscaldante e un termometro, portare i bicchieri a 25, 35, 45 e 60 °C, come da etichette.
    • Prepara altre cinque coppie di substrato e provette enzimatiche, come descritto per la reazione di base, utilizzando acqua distillata nella provetta enzimatica, invece di un tampone pH.
    • Etichetta i tubi del substrato come "Ghiaccio", "25 °C", "35 °C", "45 °C" e "60 °C".
    • Quando tutti i bagni d'acqua hanno raggiunto le temperature appropriate, mescola insieme il substrato e le soluzioni enzimatiche versando prima il contenuto di ciascun tubo di substrato in una provetta enzimatica e poi versando nuovamente il contenuto della provetta enzimatica nel tubo di substrato.
    • Copri i tubi del substrato con una pellicola sigillante e osserva i colori al tempo 0.
    • Quindi, metti i tubi nei loro corrispondenti bagni di becher, in base all'etichetta di temperatura che è stata data a ciascun tubo e avvia un timer.
    • Per ogni intervallo di 1 minuto, rimuovi i tubi dall'acqua e registra il loro colore, usando lo stabdard come riferimento.
    • Allora, mettili nei loro bagni fino a quando ogni punto temporale, fino a 5 minuti, è stato registrato.
  4. Risultati
    • Per determinare la linea di base per la reazione, rappresenta graficamente il cambiamento nell'intensità del colore rispetto al tempo. NOTA: Il numero di unità di cui il colore è aumentato nel periodo di tempo di 5 minuti servirà come tasso di reazione di base per il confronto relativo.
    • Ora rappresenta graficamente la differenza nell'intensità del colore rispetto ai livelli di pH utilizzati nel primo esperimento.
    • Aggiungi la linea di base per il confronto e poi determina se la velocità di reazione ottimale era superiore, inferiore o uguale alla linea di base.
    • Utilizzando questo grafico, determina il pH ottimale per la reazione. Nota: la reazione potrebbe non verificarsi a ogni pH. Il pH ottimale per l'enzima perossidasi è tipicamente compreso tra 6 e 7. Esponendo l'enzima a un substrato con diversi livelli di pH, si noterà un calo della velocità di reazione man mano che il pH dell'enzima diventa più basico, rendendo l'enzima più instabile.
    • Infine, rappresenta graficamente la differenza di intensità del colore nel tempo per le diverse temperature utilizzate nel secondo esperimento, utilizzando la stessa linea di base per il confronto.
    • Utilizzando questo grafico, determina la temperatura ottimale per la reazione e confrontala con la linea di base. NOTA: La reazione potrebbe non verificarsi a tutte le temperature. In questo esperimento, la reazione appare più efficiente intorno ai 45 °C e, al di sopra di questo, l'enzima perossidasi inizia a denaturarsi. Per questo motivo, non dovrebbe produrre un cambiamento di colore nel becher a 60 °C. Anche la velocità di reazione rallenterà o si fermerà nel bagno di ghiaccio, poiché non c'è abbastanza energia per l'enzima per catalizzare la reazione.

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