$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Risospendere peptide β-amiloide
Prima di iniziare sono pronti:
- Aβ 1-42 (polvere liofilizzata)
- 1,1,1,3,3,3-esafluoro-2-propanolo (HFIP)
- Low-binding tubi in polipropilene microcentrifuga (1,5 ml)
- Hamilton siringa a tenuta di gas con stop tuffo Teflon (250 microlitri)
- Dimetilsolfossido (DMSO)
- Lasciare Aβ liofilizzato 1-42 equilibrare a temperatura ambiente per 30 minuti per evitare la condensa dopo l'apertura del flacone peptide.
- Sotto la cappa, risospendere peptidi Aβ 1-42 in HFIP ghiacciata per ottenere una soluzione 1 mM e vortex la soluzione per alcuni secondi.
- Utilizzando una siringa di vetro con tappo a tenuta di gas Hamilton teflon, subito dividere il Aβ 1-42 / HFIP soluzione altrettanto in tre fiale in polipropilene e sigillare le fiale.
- Le fiale vengono quindi incubate per 2 ore per consentire monomerization Aβ. Quindi, aprire le fiale e concentrare la soluzione Aβ 1-42 / HFIP sotto vuoto usando una centrifuga SpeedVac (800 g, temperatura ambiente) fino a quando un film peptide chiaro si osserva sul fondo dei flaconi. Controllare accuratamente la temperatura all'interno della centrifuga SpeedVac per evitare il degrado peptide (max 25 ° C).
- Sigillare le fiale e conservare le aliquote a -80 ° C. Pellicola Aβ può essere conservato per 6 mesi.
- Risospendere un film con l'aggiunta di DMSO per ottenere una concentrazione fino a 5 mm Aβ 1-42. Sonicare a bagnomaria per 10 minuti per garantire la completa risospensione.
- Questa aliquota 5mM Aβ 1-42 soluzione in fiale in polipropilene. Sigillare tutti i flaconi e conservarli a -20 ° C. Aliquote vanno scongelati solo una volta. Attenzione alla condensa l'acqua all'interno del congelatore. Peptidi in soluzione degrada molto facilmente.
Oligomerizzazione
Prima di iniziare sono pronti:
- Aβ 1-42 / DMSO (5mm)
- Tampone fosfato sterile
- Low-binding tubi in polipropilene microcentrifuga (1,5 ml)
- Low-binding polipropilene provette (50 ml)
- Diluire il Aβ ottenuto 5mM 1-42 / aliquota DMSO con tampone fosfato sterile (fino a 100 l).
- Vortex per 30 secondi e poi incubare per 12 ore a 4 ° C
Fetta trattamento dell'ippocampo
Durante il trattamento fettine di ippocampo, è importante per evitare la mancanza di specifiche adesione peptide su bicchieri, superfici tubo per perfusione, e la camera di registrazione. Usare preferibilmente a basso legame tubi e contenitori in polipropilene. Evitare l'uso di oggetti di vetro o di plastica generico-ware. Mezzi di perfusione deve essere siero o albumina-free.
Perfusione Aβ
Prima di iniziare sono pronti:
- Oligomerized Aβ 1-42
- Registrazione del buffer (in mm: 124 NaCl, 4.4 KCl, 1 Na 2 HPO 4, 25 NaHCO 3, 2 CaCl 2, 2 MgCl 2, e 10 di glucosio)
- Registrazione elettrofisiologica set-up con camera di interfaccia
- Trasversale fettine di ippocampo incubate in un tampone di registrazione ossigenato per almeno 90 minuti dopo la dissezione (T = 29 ° C; tasso di perfusione costante = 2 ml / minuto)
- Immediatamente prima l'esperimento, diluire il Aβ oligomerized 1-42 aliquota alla concentrazione di lavoro appropriati (200 nm o superiore) in un tubo in polipropilene con pre-ossigenato buffer di registrazione.
- Profumato il Aβ 1-42 soluzione per 20 minuti per le fette prima dell'induzione della plasticità sinaptica.
Induzione di plasticità e di follow-up
- Tipicamente, il modello più diffuso di plasticità sinaptica è la LTP. Essa può essere indotta attraverso la stimolazione tetanica di una sinapsi dato nell'ippocampo. Registriamo risposte campo da sinapsi tra le proiezioni del Shaffer collaterali e neuroni piramidali CA1 nel radiatum strato. Il nostro stimolazione tetanica è costituito da una stimolazione scoppio theta che comprende 3 treni separati da intervalli di 15 secondi. Ogni treno è composto da 10 scatti a 5 Hz dove ogni raffica comporta 5 impulsi a 100 Hz. Applicare la stimolazione tetanica subito dopo la perfusione di Aβ oligomerized è stata completata.
- Subito dopo la stimolazione tetanica tornare a perfusione con buffer di registrazione normale. Mantenere una velocità costante di perfusione, temperatura della camera di registrazione e la corretta ossigenazione per tutta la durata dell'esperimento.
Risultati rappresentative e possibili problemi
La Aβ oligomerized secondo il protocollo classico di Stine et coll. 1, genera monomeri Aβ e una varietà di oligomeri di diverse dimensionis (dimero, trimero, ecc) La perfusione di oligomerized Aβ 1-42 porta a LTP diminuita in Aβ trattati con fette rispetto a fette di controllo. Nelle nostre condizioni sperimentali, in cui 3-5 mesi topi vecchi C57BL/6J maschi sono utilizzati, LTP in 200 nM Aβ trattati con fette è in media del 150% dei valori di base a due ore dopo la stimolazione tetanica, mentre a fette di controllo i valori sono LTP in media 200-250% di baseline2. In alcuni casi, il trattamento con Aβ potrebbe non riuscire a ridurre la LTP ippocampale. Diversi errori critici che potrebbero verificarsi comprendono pellicola durante l'asciugatura eccessiva concentrazione di Aβ e oligomerizzazione incompleta. Perfusione Aβ in fettine di ippocampo potrebbe essere un'altra fonte di preoccupazione a causa delle proprietà fisico-chimiche del peptide Aβ in soluzione, che è incline a non specifica adesione alla plastica. Risoluzione dei problemi di queste questioni è discusso di seguito.