Articolo metodologico

Saggio di coincubazione per lo studio delle interazioni competitive tra ceppi batterici

26 settembre 2025

In questo articolo

Abstract

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Fonte: Speare, L., et al. Saggio di coincubazione per quantificare le interazioni competitive tra isolati di Vibrio fischeri . J. Vis. Exp. (2019)

Questo video mostra un saggio di co-incubazione utilizzato per studiare come i ceppi batterici competono in un ambiente condiviso. È ampiamente applicato in microbiologia per identificare i meccanismi, come l'uccisione dipendente o indipendente dal contatto, che guidano queste interazioni.

Protocollo

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  1. Ceppi in cocubazione (Figura 1B, C)
    1. Mescolare il ceppo di riferimento e il ceppo concorrente in un rapporto 1:1 (v/v) aggiungendo 100 μL di ciascun ceppo (normalizzato a OD 1,0) a una provetta da centrifuga da 1,5 mL etichettata. Come controllo, mescolare la deformazione di riferimento con una versione differenziata di se stessa (deformazione di riferimento pVSV102 + deformazione di riferimento pVSV208). Questo controllo è necessario per una successiva analisi statistica per determinare se la presenza di un ceppo concorrente influisce sulla crescita del ceppo di riferimento. Agitare la coltura a ceppo misto per 1-2 s.
      NOTA: Questo passaggio potrebbe richiedere un'ottimizzazione in quanto il rapporto iniziale può influire in modo significativo sui risultati e potrebbe essere necessario regolarlo.
    2. Ripetere il passaggio 1 per ogni replica biologica. Dopo aver completato questa fase, dovrebbero esserci un totale di otto provette a ceppo misto: quattro repliche biologiche con ceppi di riferimento marcati in modo differenziale (controllo) e quattro repliche biologiche con ceppi di riferimento e concorrenti con marcatura differenziale (sperimentali).
    3. Posizionare 10 μl di ciascuna miscela di controllo e sperimentale su piastre di Petri contenenti agar LBS; Questi punti di coltura saranno utilizzati per la microscopia a fluorescenza dopo l'incubazione.
    4. Lasciare asciugare completamente le macchie sul banco fino a quando tutto il liquido non è stato assorbito nell'agar e incubare le piastre di Petri a 24 °C per 24 ore. Sono necessarie almeno 15 ore per i ceppi di V. fischeri marcati con pVSV102 e pVSV208 per crescere fino a una densità cellulare sufficientemente elevata da visualizzare rispettivamente la proteina fluorescente verde (GFP) e la proteina fluorescente rossa (RFP) a livello di popolazione utilizzando un microscopio da dissezione a fluorescenza. Qui, utilizziamo un'incubazione di 24 ore per l'imaging di punti misti.
      NOTA: È importante utilizzare piatti non troppo umidi o troppo asciutti. Se le piastre sono troppo umide, i punti di cocubazione non verranno assorbiti nella piastra di agar; Evitare di utilizzare piatti versati lo stesso giorno. Se le piastre sono troppo asciutte, possono formarsi piccole onde o crepe sulla superficie dell'agar, rendendo le macchie di cocubazione di forma irregolare.

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Risultati

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figure-results-1

Figura 1: Diagramma di flusso che illustra il saggio di coincubazione. (A) I ceppi batterici che ospitano pVSV102 (ceppo di riferimento indicato come Ceppo di riferimento o R.S.) o pVSV208 (ceppo concorrente indicato come Ceppo Comp...

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Provette per microcentrifuga da 1,5 mLPescatore05-408-129 
Pipetta multicanale da 10 μL   
Pipetta multicanale da 100 μl   
Pipetta multicanale da 300 μL   
Pipetta monocanale da 10 μl   
Pipetta monocanale da 20 μl   
Pipetta monocanale da 200 μl   
Pipetta monocanale da 1000 μl   
Piastre a 24 pozzettiPescatore07-200-84sterile con coperchio
Piastre di PetriPescatoreFB0875713sterile con coperchio
Sistema di avviamento TipOne 0,1-10 μLStati Uniti d'America Scientific1111-350010 rastrelliere
Sistema di avviamento TipOne 200 μLStati Uniti d'America Scientific1111-50010 rastrelliere
Sistema di avviamento TipOne 1000 μLStati Uniti d'America Scientific1111-252010 rastrelliere
Supporti LBS
Tampone Tris 1M (pH ~7,5)  50 mL di tampone stock 1 M (62 mL di HCl, 938 mL di acqua deionizzata e.gno, 121 g di base Trizma)
AgarTecnico FisherDF0812-17-915 g (Aggiungere solo per piatti)
Acqua deionizzata  950 ml
Cloruro di sodioPescatoreS640-320 g
TriptonePescatoreBP9726510 g
Estratto di lievitoPescatoreBP9727-25 g

Ristampe e permessi

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Tag

Competizione battericamarcatori fluorescentiuccisione contatto dipendenteuccisione contatto indipendentemicroscopia a fluorescenzaincubazione su piastra di agaridentificazione del ceppo

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