1. Isolamento dei PBMC
- Prelievo di sangue (7,5-8,0 ml) in una provetta BD Preparazione Vacutainer cella CPT con eparina di sodio. Il tubo contiene un anticoagulante eparina sodica e di un Ficoll-Hypaque densità del fluido, più una barriera di gel di poliestere, che separa i due liquidi. Centrifuga tubo / campione di sangue a temperatura ambiente (18 ° C a 25 ° C) in un rotore orizzontale (swing-out testa) per 20 minuti a 1800 x g. Interruttore centrifuga freni sbloccati.
- Dopo la centrifugazione, la sequenza di strati avviene nel seguente modo (visto dall'alto verso il basso): a) al plasma - b) le cellule mononucleate del sangue periferico (PBMC) e piastrine - c) soluzione di densità - d) gel poliestere - e) granulociti - f) globuli rossi (Fig. 1).
- Raccolgono una frazione dello strato di plasma, lasciando 5 a 10 mm di plasma al di sopra della interfase senza disturbare lo strato di cellule. Il plasma può essere utilizzato per la cultura (sezione 2.5).
- Raccolta della frazione arricchita (PBMC) presso l'interfase con una pipetta e trasferirli in un tubo da 15 ml.
- Lavare i PBMC con 10 ml di soluzione salina tampone fosfato (PBS), invertendo il tubo di 5 volte, quindi si centrifuga per 5 min a 400 x g.
- Ripetere le fasi di lavaggio due volte, quindi risospendere il pellet cellulare in 5 ml di PBS. Determinare il numero delle cellule. Di solito 1,3 x10 6 celle vengono recuperati da 1 ml di sangue intero.
- Determinare la frequenza e il fenotipo delle cellule T in γδ PBMC mediante citometria di flusso (sezione 3) (Fig. 2).
2. Espansione di cellule T γδ
- Centrifuga sospensioni cellulari in provette da 15 ml conica per 5 min a 400 x g a temperatura ambiente, ed eliminare il surnatante.
- Preparare terreno di coltura (CM) con l'aggiunta di IL-2 (IL-2) e zoledronato (Zometa) a concentrazioni finali di 1000 UI / ml e 5 mM, rispettivamente. ALyS203 (Cell Science & Technology Institute) o OpTmizer (Invitrogen) supportare l'espansione dei media buona γδ cellule T (maggiori informazioni nei riferimenti 6 e 9). Zometa è fornito in forma liquida (4 fiala mg/5-ml). Per preparare una soluzione al 5 mM, aggiungere 50 ml di Zometa a 30 ml di terreno di coltura.
- Risospendere il pellet di cellule in terreno di coltura e regolare a 1x10 6 cellule / ml.
- Pipettare 1 ml di CM contenente 1x10 6 cellule in ciascun pozzetto di una 24-pozzetti. Per le grandi culture, le cellule possono essere seminati a 0,5 x 10 6 cellule / cm 2 secondo le superfici dei pozzi piatto, piatto, o borraccia.
- Aggiungi plasma autologo (sezione 1.3), pool umano AB sieri, o FCS in modo che sia circa il 10% del volume della cultura (100 microlitri per ciascun pozzetto di una piastra da 24 pozzetti). Posizionare le piastre in un umidificata 37 ° C, 5% CO 2 incubatore per 24-48 ore.
- Mantenere la coltura ad una densità cellulare di 0,5-2 x 10 6 cellule / ml. Aggiungi terreno fresco contenente umano IL-2 (1000 UI / ml) (senza Zometa) ogni 2-3 giorni, e trasferire cellule coltivate in nuovi pozzi o fiaschi, se necessario, a seconda del grado di proliferazione cellulare (Fig. 3). Fornitura plasma o siero al mezzo in modo che la concentrazione sierica può essere mantenuto almeno l'1%.
- Celle di raccolta il giorno 12-14 e determinare la, fenotipo frequenza, e le funzioni del γδ cellule T mediante citometria di flusso (vedi sotto).
3. L'analisi fenotipica mediante citometria di flusso
- Trasferire 200 campioni microlitri contenente 2 x 10 5 cellule a fluorescenza-attivato cell sorting (FACS) tubi.
- Aggiungere 2 ml di PBS freddo e centrifugare per 5 min a 400 x gr. Poi, risospendere il pellet in 50 microlitri di buffer FACS (PBS + 1% di sodio azide FCS + 0,1%). Aggiungere 5 ml di ciascuna anticorpi ai campioni (gli anticorpi monoclonali sono elencati nella Tabella 1).
- Incubare in ghiaccio al buio per 20 min.
- Aggiungere 2 ml di tampone FACS per ogni campione, e poi vortice. Campioni Centrifugare per 5 min a 400 x g a 4 ° C. Con attenzione decantare il surnatante.
- Risospendere le cellule in 300 microlitri di buffer FACS e vortice. Analizzare campioni su un citofluorimetro (Fig. 2).
4. IFN-γ saggio produzione 10
- Il giorno prima del test, preparare le cellule stimolatore di coltura 3-5 x10 Daudi 5 cellule / ml in RPMI 1640 medium più 10% FCS (RPMI-10) durante la notte con Zometa (5 mM) (nel seguito denominati Z-Daudi).
- Raccogliere Z-Daudi e risospendere in RPMI-10 a 2x10 6 cellule / ml. Aggiungere 100 ml di Z-Daudi (2x10 5) a ciascun pozzetto di una piastra a fondo rotondo da 96 pozzetti.
- Preparare γδ cellule T a 2x10 6 cellule / ml in RPMI-10 contenente Brefeldin A a 20 mg / ml. Trasferire 100 ml di γδ sospensione cellulare T (2x10 5) in ciascun pozzetto contenente Z-Daudi cellule o di pozzetti di controllo (100 ml di RPMI-10 solo, o RPMI-10 con 20 ng / ml di forbolo miristato 12-13-acetato[PMA] e 2 mg / ml di ionomicina).
- Mescolare pipettando su e giù parecchie volte. Incubare per 4 ore a 37 ° C, 5% CO 2 incubatore.
- Centrifugare la piastra per 5 minuti a 400 x g a 4 ° C e risospendere il pellet in 200 ml di PBS freddo.
- Trasferire i campioni di tubi FACS. Aggiungere 4 ml di PBS freddo e centrifugare le provette per 5 min a 400 x g a 4 ° C.
- Risospendere il pellet in 50 ml di buffer di FACS con FITC-coniugato anti-TCRVγ9 (5 mL) e PE/Cy5-conjugated anti-CD3 (2,5 microlitri). Incubare al riparo dalla luce per 15 minuti a temperatura ambiente.
- Aggiungere 100 ml di reagente IntraPrep 1 e incubare per 15 minuti a temperatura ambiente. Aggiungere 4 ml di PBS in ogni provetta e centrifugare per 5 min a 400 x g a temperatura ambiente.
- Eliminare il surnatante tramite aspirazione e aggiungere 100 ml di reagente 2 IntraPrep. Incubare per 5 minuti a temperatura ambiente senza agitazione.
- Aggiungere 5 ml di PE-coniugato anti-IFN-γ mAb alla provetta. Incubare al riparo dalla luce per 15 minuti a temperatura ambiente.
- Aggiungere 4 ml di PBS in ogni provetta e centrifugare per 5 min a 400 x g a temperatura ambiente. Eliminare il surnatante tramite aspirazione e risospendere il pellet cellulare in 0,5 ml di tampone FACS.
- Analizzare le cellule citofluorimetro. Porta il CD3 + + TCRVγ9 cellule ed esaminare l'espressione di IFN-γ (Fig. 4).
5. Rappresentante dei risultati:
E 'importante per determinare la percentuale di cellule T nel γδ PBMC all'inizio della cultura. Come mostrato in fig. 2 A, la percentuale dei CD3 + + TCRVγ9 γδ cellule T in PBMC è stata di 1,6% al giorno 0. Le popolazioni dominanti erano CD45RA + CD27 + CD27 + ingenuo o CD45RA - fenotipi memoria centrale. Quando γδ cellule T sono stati stimolati in modo efficiente, hanno formato grappoli nei giorni 3-5 (Fig. 3 A e B). Quando la formazione di cluster è stato ritardato, la crescita di altri tipi cellulari, quali CD4 + e CD8 + cellule T αβ o cellule NK potrebbe dominare la crescita di γδ cellule T (fig. 3 C e D). Dopo 14 giorni di cultura, la frequenza di cellule T γδ aumentato a oltre il 93,8% delle cellule coltivate in successo culture γδ cellule T (Fig. 2 E). Le colture di cellule T γδ upregulated NKG2D e CD69 espressione (fig. 2 G e H). Hanno mostrato CD27 - CD45RA - fenotipo memoria effettore (Fig. 2 F). Le funzioni di γδ cellule T sono stati valutati per quanto riguarda la produzione di citochine e citotossicità. L'IFN-γ intracellulare colorazione γδ dimostrato che le cellule T prodotte IFN-γ in risposta alla PMA / ionomicina trattamento o Z-Daudi cellule che IPP accumulato dopo il trattamento con zoledronato (Fig. 4). Questi risultati indicano che zoledronato può efficacemente stimolare e ampliare funzionale delle cellule T γδ.
| tubo | FITC | PE | ECD | PE/Cy5 |
| 1 | CD3 | CD19 | CD45 | CD14 |
| 2 | CD3 | TCRαβ | CD4 | CD8 |
| 3 | CD3 | | | CD56 |
| 4 | TCR Vγ9 | TCRαβ | CD45 | CD3 |
| 5 | TCR Vγ9 | NKG2D | | |
| 6 | TCR Vγ9 | CD69 | | |
| 7 | TCR Vγ9 | del mouse IgG1 | | |
| 8 | TCR Vγ9 | | CD45RA | CD27 |
| 9 | TCR Vγ9 | | del mouse IgG1 | del mouse IgG1 |
Tabella 1. Anticorpi monoclonali utilizzati in colorazione multicolore delle cellule T γδ. Un esempio di analisi fenotipica di cellule T γδ eseguiti nel nostro laboratorio è mostrato in fig. 2.

Figura 1. Separazione dei PBMC. Sangue (7,5-8,0 ml) è disegnato in un tubo BD Preparazione Vacutainer cella CPT con eparina di sodio e direttamente centrifugati per 20 min a 1800 x g. Dopo la centrifugazione, gli strati risultante come si è visto da cima a bottom: a) al plasma - b) PBMC e piastrine - c) soluzione di densità - d) gel poliestere - e) Granulociti - f) i globuli rossi.

Figura 2. Fenotipo superficie tipica delle cellule T γδ. PBMC sono stati stimolati con zoledronato e IL-2 per 14 giorni. Le cellule sono state colorate con FITC anti-TCR Vγ9 e PE/Cy5-labeled anti-CD3 di monitorare l'espansione della γδ cellule T (A ed E). γδ cellule T sono stati identificati dalla loro espressione di TCRVγ9, e la loro espressione di CD27 e CD45RA (B e F), NKG2D (C e G), o CD69 (D e H) è stata esaminata.

Figura 3. Rappresentante γδ colture di cellule T. PBMC sono stati stimolati con IL-2 (1000 UI / ml) e zoledronato (5 mM). Campi rappresentativi sono visibili (IX71 microscopio invertito [Olympus] x 200). Cluster e aggregati di cellule T γδ può essere osservato il giorno 3 (A) e il giorno 5 (B), quando γδ cellule T sono state espanse con successo. Al contrario, nessun cluster o aggregati sono stati osservati quando γδ crescita delle cellule T non era adeguata (C e D).

Figura 4. IFN-γ produzione. γδ cellule T sono state incubate con RPMI-10 solo (A) o PMA / ionomicina (B) o Z-Daudi (C) per 4 ore. In primo luogo, espressione di superficie di TCRVγ9 era macchiato e poi IFN-γ produzione è stata esaminata dal intracellulare IFN-γ colorazione.

Figura 5. Cinetica di γδ colture cellulari T. (A) il numero assoluto di cellule in coltura, (B) percentuale di γδ cellule T, e (C) numero assoluto di γδ cellule T nei punti di tempo indicato.