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Articolo metodologico

Misurazione quantitativa della Invadopodia-mediata proteolisi della matrice extracellulare in singoli contesti e pluricellulari

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DOI:

10.3791/4119

27 agosto 2012

In questo articolo

Sommario

Descriviamo il metodo di prototipo per la produzione di vetrini al microscopio a fluorescenza rivestite con gelatina per la visualizzazione invadopodia-mediata degradazione della matrice. Tecniche di calcolo utilizzando il software disponibile sono presentati per quantificare i livelli risultanti di proteolisi matrice di singole cellule all'interno di una popolazione mista e per gruppi multicellulari che comprende interi campi microscopici.

Abstract

Invasione cellulare nei tessuti locali è un processo importante nello sviluppo e omeostasi. Invasione Malregulated e il movimento delle cellule successiva è caratteristica di molteplici processi patologici, tra cui l'infiammazione, le malattie cardiovascolari e le metastasi delle cellule tumorali 1. Degradazione proteolitica focalizzata di matrice extracellulare (ECM), componenti della membrana basale epiteliale o endoteliale è un passo fondamentale nel dare inizio invasione cellulare. Nelle cellule tumorali, ampia analisi in vitro ha determinato che il degrado ECM si ottiene ventrali actina ricchi di strutture a membrana protrusione chiamati invadopodia 2,3. Forma Invadopodia in stretta apposizione della ECM, dove moderare ripartizione ECM attraverso l'azione di metalloproteinasi della matrice (MMP). La capacità delle cellule tumorali di formare invadopodia correla direttamente con la capacità di invadere stroma locale e componenti associati vascolari 3. _content "> Visualizzazione di invadopodia-mediata degradazione ECM delle cellule mediante microscopia a fluorescenza con colorante marcati con proteine ​​della matrice rivestite su vetro coprioggetti è emerso come la tecnica più diffusa per valutare il grado di proteolisi matrice e cellulari potenziale invasivo 4,5. Qui descriviamo una versione del metodo standard per generare vetrini fluorescenza etichettati utilizzando un comune Oregon verde-488 coniugato gelatina. Questo metodo è facilmente scalata per produrre rapidamente un elevato numero di vetrini coprioggetto rivestiti. Mostriamo alcuni degli artefatti comuni microscopici che spesso si incontrano durante questa procedura e come questi possono essere evitati. Infine, si descrivono metodi standardizzati software prontamente disponibile per consentire la quantificazione della degradazione della matrice gelatinosa etichettati mediata da cellule singole e intere popolazioni cellulari. Le procedure descritte consentono di monitorare accurato e riproducibile invadopodiaattività, e può anche servire come una piattaforma per la valutazione dell'efficacia di espressione della proteina modulante o prove di anti-invasivi composti sulla degradazione della matrice extracellulare in impostazioni singole e multicellulari.

Protocollo

1. Produzione di Oregon verde coprioggetto rivestiti 488-gelatina

  1. Preparare un marcato 5% (w / w) stock gelatina / soluzione di saccarosio con l'aggiunta di 1,25 g di gelatina e 1,25 g di saccarosio in PBS fino ad un volume finale di 50 ml. Riscaldare la soluzione di gelatina magazzino a 37 ° C ed assicurare che sia completamente sciolto prima dell'uso. Conservare la miscela finale a 4 ° C.
  2. Pulire diametro di 13 mm # 1 vetrini coprioggetto ponendo un individuo in ciascun pozzetto di una piastra a 24 pozzetti di plastica coltura tissutale. Aggiungere 500 pl di 20% di acido nitrico in ciascun pozzetto e incubare per 30 min. Aspirare la solu....

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Discussione

La possibilità di visualizzare le cellule che degradano la matrice extracellulare ha aiutato a scoprire i meccanismi molecolari impiegati nelle prime fasi di invasione cellulare. Lanciato da Wen-Tien Chen nei primi anni 1980 4,14,15, rivestimento proteine ​​fluorescenti marcate extracellulari su vetrini per la successiva analisi al microscopio è emerso come la tecnica principale nella valutazione della funzione invadopodia in una vasta gamma di tipi di cellule. Il protocollo prescritto viene illustrato il met.......

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Dichiarazioni

Nessun conflitto di interessi dichiarati.

Ringraziamenti

Questo lavoro è stato sostenuto da fondi di dotazione della West Virginia University Mary Babb Randolph Cancer Center. Ringraziamo Susette Mueller (Georgetown University) e Laura Kelley per la consulenza precoce e assistenza. L'uso dello strumento di imaging Virginia Occidentale Microscopia University (supportato dal Babb Mary Randolph Cancer Center e, sovvenzioni NIH RR16440 P20, P30 e P30 RR032138 GM103488) è riconosciuto con gratitudine.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Nome del reagente / strumento Azienda Numero di catalogo Commenti
gelatina Sigma G1890 Suini pelle
saccarosio Pescatore BP220
Coprioggetto 12 millimetri Pescatore 50-121-5159
Piastre da 24 pozzetti Pescatore 08-772-1 BD Falcon
acido nitrico Ricca R5326000 Soluzione al 20%
poli-L-lisina Scienze della microscopia elettronica 19320-B 0,1% soluzione
glutaraldeide Sigma G7526 Soluzione 8%
Oregon verde 488-coniugato gelatina Invitrogen G-13186
sodio boroidruro Sigma 213462
Triton X-100 Pescatore BP151
rodamina-falloidina Invitrogen R415
anti-cortactin (clone 4F11) Millipore 05-180
Anticorpo anti-FLAG Millipore MAB3118
Alexa Fluor 647 di capra anti-IgG di topo Invitrogen A21235
Prolong antifade Oro Invitrogen P36930
LSM 510 microscopio confocale Zeiss
ImageJ software Di dominio pubblico http://www.macbiophotonics.ca/imagej/
AutoQuant X2.2 software Media Cibernetica
NIS Elements Nikon

Riferimenti

  1. Ridley, A. J. Life at the leading edge. Cell. 145, 1012-1022 (2011).
  2. Murphy, D. A., Courtneidge, S. A. The 'ins' and 'outs' of podosomes and invadopodia: characteristics, formation and function. Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 12, 413-426 (2011).
  3. Linder,....

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Ristampe e permessi

Tag

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