Un metodo semplice di intubazione mouse polmone

Sommario

Il presente documento descrive un metodo striaghforward ed efficiente intubazione topi per le misure di funzionalità polmonare o instillazione polmonare, che consente ai topi di recuperare e da studiare in tempi successivi. La procedura prevede una fonte economica di luce a fibre ottiche che illumina direttamente la trachea.

Abstract

Una procedura semplice per intubare i topi per le misure di funzionalità polmonare avrebbe diversi vantaggi in studi longitudinali con un numero limitato di animali o costoso. Uno dei motivi per cui questo non è fatto più di routine è che è relativamente difficile, nonostante sia diversi studi pubblicati che descrivono il modo di realizzarla. In questo lavoro dimostrare una procedura che elimina uno dei principali ostacoli associati a questa intubazione, che di visualizzare la trachea durante l'intero tempo di intubazione. L'approccio utilizza una sorgente di luce a fibre ottiche 0,5 millimetri che serve come un introduttore di dirigere l'intubazione cannula nella trachea mouse. Abbiamo dimostrato che è possibile utilizzare questa procedura per misurare meccanica polmonare in singoli topi in un corso di tempo di almeno parecchie settimane. La tecnica può essere impostato con una spesa relativamente poco e competenze, e può essere realizzato con la formazione di routine relativamente poco. Questo dovrebbe makE 'possibile per qualsiasi laboratorio per eseguire routine out questo intubazione, consentendo studi longitudinali in singoli topi, minimizzando il numero di topi necessari e aumentare la potenza statistica utilizzando ogni topo come proprio controllo.

Introduzione

Nel 1999, Brown et al. Pubblicato un documento che descrive un metodo per intubazione del polmone mouse ^1. Tale tecnica ha utilità notevole facendo funzione polmonare ripetizione o lavaggio broncoalveolare nei topi singoli studi longitudinali ^2. Dal momento che la carta originale, ci sono stati diversi altri giornali che hanno descritto i diversi approcci per l'intubazione del mouse ^3-9. Mentre tutti questi metodi possono essere utilizzati con successo, di solito richiedono formazione considerevole o costo. Uno dei problemi principali con l'intubazione come è che con l'approssimarsi delle cannula di intubazione si....

Protocollo

1. Preparazione per la procedura di

Si deve prima ottenere e preparare i seguenti elementi:

1. La cannula. Per l'intubazione di 20-35 g di topi, usiamo un 1 o 1,5 pollici di lunghezza, 20 calibro catetere IV (BD Insylte, Sparks, MD o Jelco Optiva, Carlsbad, CA). Un nuovo catetere sterile può essere utilizzato per ciascun topo, cateteri ma può anche essere riutilizzato dopo la sterilizzazione immergendo in etanolo al 70% durante la notte. Sebbene né la faringe, né trachea del mouse è sterili procedure di pulizia adeguate, compreso l'uso di guanti sterili e strumenti, devono essere seguite.

Risultati

Come una valutazione del metodo, abbiamo utilizzato quattro 20 settimane vecchio maschio topi BALB / c con peso medio (± SEM) di 27,7 ± 0,40 g. Essi sono stati studiati su cinque settimane consecutive, in cui la resistenza polmonare è stata misurata usando un sistema come descritto in precedenza ^11. Ogni mouse è stato anestetizzato con ketamina (100 mg / g di peso corporeo) e xilazina (15 mg / g di peso corporeo) in soluzione salina tramite iniezione IP. Sono stati quindi intubati come descritto sopra. Se c'è.......

Discussione

La procedura qui descritta presenta diversi vantaggi. Prima l'apparecchiatura è semplice e relativamente poco costoso .. La fabbricazione del dispositivo non richiede utensili speciali o attrezzature costose. L'uso di un catetere che presenta anche la sorgente luminosa significa che non si perde di vista dell'apertura tracheale come introduttore avvicina l'apertura tracheale. L'uso di un introduttore 0,5 millimetri serve anche a minimizzare il trauma che potrebbe verificarsi con un inserimento inizia.......

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo

Nome	Azienda	Numero di catalogo	Commenti
Materiale	Azienda	Catalogare #	Commento
Cannula per intubazione	BD Insylte, Sparks, MD o Jelco Optiva, Carlsbad, CA		1-trovi-lunga, calibro 20 per via endovenosa (IV) del catetere
Cavi in ​​fibra ottica	Edmund Optics, Barrington, NJ	# NT02-542	Circa 2-ft lunghezza di 0,5 mm in fibra ottica (fibra plastica Comunicazione grado). Il bordo l'estremità della fibra che viene inserito nella trachea deve essere leggermente arrotondato tenendo la fibra ≈ 2 cm dalla fine e poi fare piccoli cerchi mentre si trascina la punta per alcuni secondi su 1.000 grana Emory.
Fonte di luce	Volpi	NCL-150	Anche se si usa un 150-W sorgente di luce alogena, qualsiasi fonte di luce equivalente, anche con potenza molto più bassapuò essere utilizzato.
Tappo di gomma di silicone			Un tappo di gomma siliconica # 1 adatta sorgente luminosa utilizzata in questa dimostrazione. Fonti di luce diverse possono richiedere una dimensione diversa.
Piccolo tubo di gomma di silicone	Cole-Palmer	EW-96410-13	Un pezzo ≈ 1.5 cm di tubo di gomma di silicone (0,8 diametro interno di 4 mm di diametro esterno)
Il piede di supporto angolare			Ours è costruzione di plexiglas, ma qualsiasi materiale a cui un filo o filo può essere apposto tenere il mouse con un angolo quasi verticale può essere utilizzato.