Articolo metodologico

Un saggio di legame High Throughput MHC II per l'analisi quantitativa dei peptidi epitopi

DOI:

10.3791/51308

⸱

25 marzo 2014

 ,  ,  , 
1Thayer School of Engineering, Dartmouth College, 2Institute for Immunology and Informatics, University of Rhode Island, 3Department of Computer Science, Dartmouth College

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Sommario

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Saggi biochimici con molecole ricombinanti umani MHC II grado di fornire rapide, approfondimenti quantitativi nella identificazione degli epitopi immunogenico, la cancellazione o il design. Qui, un saggio di legame peptide-MHC II scalata a 384 pozzetti è descritto. Questo formato conveniente, deve risultare utile nel campo della proteina deimmunization e progettazione di vaccini e sviluppo.

Abstract

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Saggi biochimici con molecole ricombinanti umani MHC II grado di fornire rapide, approfondimenti quantitativi nella identificazione degli epitopi immunogenico, la cancellazione o il design 1,2. Qui, un saggio di legame peptide-MHC II viene scalata a 384 pozzetti. Il protocollo ridotta riduce i costi dei reagenti del 75% ed è più alta velocità di quanto precedentemente descritto protocolli da 96 pozzetti 1,3-5. In particolare, il disegno sperimentale permette l'analisi robusta e riproducibile fino a 15 peptidi contro un allele MHC II per 384 pozzetti ELISA. Utilizzando un'unica movimentazione robot liquido, questo metodo consente un ricercatore di analizzare circa novanta peptidi prova in triplice copia in un range di concentrazioni otto e quattro tipi di alleli MHC II in meno di 48 ore. Altri lavorano nei campi di proteine ​​deimmunization o la progettazione di vaccini e sviluppo può trovare il protocollo per essere utile nel facilitare il proprio lavoro. In particolare, le istruzioni passo-passo e il formato visivodi Giove dovrebbe consentire ad altri utenti di stabilire rapidamente e facilmente questa metodologia nei propri laboratori.

Introduzione

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Le proteine ​​sono la classe più rapida crescita di agenti terapeutici 6, e la rapida espansione delle condotte biotherapeutic ha focalizzato sempre più l'attenzione sulle sfide connesse con lo sviluppo e l'uso di farmaci proteici. Una considerazione unica deriva dal fatto che, in un sistema immunitario sano e funzionante, tutte le proteine ​​extracellulari sono campionati dalle cellule presentanti l'antigene (APC). Una volta internalizzato da APC, una proteina viene scissa in piccoli frammenti peptidici, e segmenti immunogenici putativi sono caricati nella scanalatura di classe II principali proteine ​​complessi di istocompatibilità (MHC II). I complessi peptide-MHC II vengono quindi visualizzati sulla superficie APC, e vere peptidi immunogeni, chiamati epitopi delle cellule T, forma ternaria complessi recettore delle cellule MHC II-peptide-T con recettori di superficie delle cellule T CD4 affini 7. Questo evento critico riconoscimento molecolare inizia una cascata di segnalazione complessa, che comporta l'attivazione delle cellule T, il rilascio di citochines, CD4 T cellulo-mediata B maturazione delle cellule, e, infine, la produzione di anticorpi IgG circolanti che si legano e azzera la proteina esogena incriminato. Così, proteine ​​immunogeniche potrebbero essere deimmunized individuando costitutivi epitopi delle cellule T e mutando residui chiave responsabili MHC II formazione del complesso. È notato, comunque, che gli epitopi di cellule T possono essere numerosi e ampiamente distribuiti in tutta proteine ​​immunogeniche, e la maggior parte delle mutazioni-epitopo eliminazione sono suscettibili di provocare una perdita involontaria di una funzione proteica o la stabilità. Pertanto, ingegneria deimmunized bioterapie può essere un obiettivo complesso e tecnicamente impegnativo, ma esistono diversi esempi di successo di T epitopi delle cellule progetti soppressione 3,5,8-12. Diversamente basato sovrainnesti "umanizzazione", che è in gran parte limitato a terapeutica dell'anticorpo, soppressione epitopo può essere applicato a qualsiasi sostanza bersaglio proteina indipendentemente sequenza, struttura, funzione, o la disponibilità di homologoci ponteggi umani. Il primo passo per l'attuazione di un tale approccio è l'identificazione di epitopi peptidici chiave incorporati all'interno della sequenza della proteina bersaglio.

Ad alto rendimento saggi biochimici utilizzando peptidi sintetici e di molecole ricombinanti umani MHC II grado di fornire rapide intuizioni preliminari nella identificazione degli epitopi e mitigazione 1,3-5. Questi saggi tipo ELISA può essere un potente complemento ad altri di progettazione e sviluppo di strumenti di proteine ​​/ vaccino. Per esempio, un approccio sperimentale consolidata di mappatura di epitopi si basa sul tempo, lavoro e notevoli risorse ex vivo saggi di proliferazione cellulare 15. In breve, la sequenza primaria di una proteina bersaglio viene prima divisa in un pannello di peptidi sovrapposti, spesso 15-meri con 12 residui sovrappongono tra peptidi adiacenti. Il pannello peptide è sintetizzato chimicamente e l'immunogenicità di ciascun peptide è testato in uno dei vari test immunologici diversi che impiegano Bloo perifericocellule d mononucleate (PBMC) isolate da donatori umani 13,14. Per garantire una maggiore fiducia nei risultati, i peptidi sono in genere testati in replicato con PBMC da 50 o più donatori diversi. Nei casi in cui deimmunization è l'obiettivo finale, il lavoro è aggravato ulteriormente la necessità di produrre pannelli supplementari di peptidi mutati e collaudare i nuovi pannelli peptidici in saggi PBMC prima di introdurre eventuali mutazioni deimmunizing nella proteina intera lunghezza per la successiva analisi funzionale 10. Mentre questi saggi cellulari rimangono il gold standard per valutare il potenziale immunogenico in pazienti umani, l'efficienza di un approccio esaustivo potrebbe essere migliorata prefiltraggio epitopi immunogeni putativi usando una rapida ed elevata produttività MHC II-peptide saggio di legame.

Analogamente, biochimici saggi di legame peptide-MHC II possono essere combinati con predittiva metodi in silico per accelerare radicalmente il processo di identificazione epitopo.Esistono una varietà di strumenti di calcolo per la previsione epitopo T cellulare; esempi includono ProPred 16, MHCPred 17, SVRMHC 18, ARB 19, SMM-align 20, NetMHCIIpan 21, nonché strumenti proprietari come EpiMatrix di EpiVax 22. Allo stesso modo, i predittori epitopi sono stati recentemente associati ad altre bioinformatica e strumenti di modellazione molecolare per produrre proteine ​​algoritmi deimmunization integrati, progettati per ridurre il rischio che le mutazioni deimmunizing potrebbero sconvolgere la struttura e la funzione delle proteine ​​23-26. Mentre diversi predittori epitopi hanno dimostrato di essere ragionevolmente accurata 27,28, risultati computazionali sempre richiedono validazione sperimentale. Rapid, ad alto rendimento, e convenienti metodi sperimentali sono più adatti come filtro preliminare in silico previsioni epitopi.

In modo simile, i predittori epitopi possono guidare la selezione antigene per vaccinolo retromarciaGY 29,30. Ad esempio, i progressi nella bioinformatica hanno dato intere schermate genoma che rapidamente identificare i candidati vaccini in forma di proteine ​​intere o epitopi peptidici estratti da proteomi patogeni. Mentre questa tecnologia consente sta rimodellando scoperta e lo sviluppo di vaccini protettivi, introduce una nuova sfida sotto forma di intractably grandi liste di candidati vaccini immunogenico. Saggi di legame throughput elevato peptide-MHC II possono guidare la selezione degli epitopi quantificando peptide affinità di legame e la promiscuità vincolante tra più alleli MHC II. Come con proteine ​​deimmunization, tali metodi sperimentali sono in ultima analisi necessarie per convalidare la previsione computazionale di porta promettente vaccino.

Qui, un saggio di legame peptide-MHC II scalata a 384 pozzetti è descritto. Il protocollo è altamente parallelo e riduce i costi dei reagenti del 75% rispetto al precedentemente descritto 96 pozzetti formati lastra 1,3-5. Utilizzando un unico liquidazioned robot manipolatore, questo metodo consente un ricercatore di analizzare facilmente circa novanta peptidi prova in triplice copia in un range di concentrazioni otto e quattro tipi di alleli MHC II in meno di 48 ore. Questo articolo descrive la configurazione di una piastra da 384 pozzetti ELISA per l'analisi di sette peptidi sperimentali contro un allele MHC II, ma calcolatrici foglio di calcolo sono forniti come materiale supplementare, in modo da scalare facilmente l'esperimento a qualsiasi numero di peptidi e / o MHC desiderati molecole II.

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Protocollo

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Quattro attività principali comprendono il saggio di legame peptide-MHC II: 1-Rilegatura: peptidi di prova in concorrenza con peptidi marcati di controllo per l'associazione in soluzione di proteine ​​MHC II solubili. Binding è misurata su una vasta gamma di concentrazioni di peptide di prova. 2-Capture: Dopo la reazione di legame avvicina equilibrio, complessi peptide-MHC II vengono catturati e separati dal peptide legato e proteine ​​mediante riconoscimento dipendente dalla conformazione con un anticorpo immobilizzato. 3-Detection: Catturato peptide di controllo è quantitativamente rilevata tramite fluorescenza in tempo risolto. 4-Analisi: i dati spettroscopici sono trattati, tracciati e analizzati per accertare dose-dipendenti proprietà di legame di prova peptidi e le proteine ​​MHC II.

In vari passaggi della procedura sotto, l'uso di un robot liquido gestione è consigliato se uno è disponibile. Soprattutto in un formato 384-bene, erogazione automatizzata e diluizione dei liquidi minimizza errori degli utenti, risultati in piùpozzo alla ben consistenti volumi ei rendimenti strette 95% intervalli di confidenza per valori di IC 50 rispetto ai saggi 96 pozzetti manuali (dati non mostrati). Se un robot di gestione dei liquidi non è disponibile, i passaggi annotati con "(manipolazione liquido robot)" può essere fatto a mano. Allo stesso modo, se possibile, si raccomanda un lavatore automatico che è compatibile con il formato 384 pozzetti. Questo standardizza efficacemente il processo di lavaggio piatto. Se una rondella targa non è disponibile, i passaggi annotati con "(lavatore)" può essere fatto a mano.

1. Rivestire la piastra ELISA (Day 1)

  1. Diluire L243 anticorpo magazzino (0,5 mg / ml) in tampone borato ad una concentrazione di lavoro di 10 mg / ml.
    1. Per rivestire un piatto unico da 384 pozzetti, aggiungere 200 ml di brodo di anticorpi a 9,8 ml di tampone borato. (Vedere calcolatrice foglio supplementare per il ridimensionamento alternativo).
  2. Aggiungere 25 microlitri della soluzione L243 anticorpo a ciascun pozzetto di una 384 well high-binding bianco piastra ELISA. (Manipolazione robot liquido)
  3. Sigillare la piastra con un film di poliestere e incubare una notte a 4 ° C.
    Nota: Ogni piastra ELISA a 384 e può ospitare fino a 15 peptidi di prova, a otto diluizioni per un allele MHC II, nonché i controlli positivi e negativi. Questo in ultima analisi produrre misurazioni triplice copia.

2. Effettuare il test Peptide diluizioni (1 ° giorno)

  1. Partendo da uno stock 10 mM di ciascun peptide prova in DMSO, effettuare la seguente serie di diluizioni in citrato tampone fosfato utilizzando piastre di polipropilene da 384 pozzetti (Tabella 1). (Manipolazione robot liquido)
    Nota: Una piastra in polipropilene pieno 384 pozzetti richiede tre piastre ELISA separati. Un terzo di una piastra di polipropilene richiede solo una piastra ELISA (Figura 1).
Numero di diluizione Volume to prendere da prima diluizione / magazzino Volume tampone citrato per aggiungere Conc. di diluizione Conc. in reazione di legame Conc. in neutralizzato ELISA
(Microlitri) (Microlitri) (Micron) (Micron) (Micron)
1 0.7 35.1 195,531 97,765 48,883
2 14.3 14.3 97,765 48,883 24,441
3 7.1 28.7 19,389 9,695 4,847
4 14.3 14.3 9,695 4,847 2.424
5 7.1 28.7 1.923 0,961 0,481
6 14.3 14.3 0,961 0,481 0.24
7 7.1 28.7 0,191 0.095 0.048
8 14.3 14.3 0.095 0.048 0.024
Rimuovere e gettare 7.1 ml di soluzione di peptide dalla diluizione numero 8.

Tabella 1. Preparazione di prova serie di diluizioni peptide.

figure-protocol-1
Figura 1. Piastra Mappa del Peptide Binding Assay. (A) Mappa delle diluizioni del peptide in polipropilene 384 pozzetti. Ogni lastra in polipropilene in grado di ospitare tre gruppi di 15 peptidi in concorrenza reazioni di legame nei confronti di un cantare allele le MHC II. (B) Dopo la reazione di legame avvicina equilibrio, ciascun gruppo peptide viene trasferito, in triplice copia, ad una piastra a 384 pozzetti ELISA separato che è stato prerivestita con anticorpo anti-MHC II.

3. Preparare il MHC II Master Mix (Day 1)

  1. Rendere il Reaction Buffer
    1. Aggiungere 80 ml di 1 mM Pefa Bloc e 60 mg di ottile-β-D-glucopyranaside a 3.920 ml di citrato tampone fosfato. (Vedere calcolatrice foglio supplementare per il ridimensionamento alternativo).
  2. Diluire le soluzioni di archivi MHC II selezionati a 101 nm in Reaction Buffer utilizzando un tubo da 15 ml (Tabella 2).
    Nota: concentrazione MHC II alla fine sarà 50 nM nella reazione di legame e 25 nM nel saggio ELISA neutralizzato. Le concentrazioni di archivi MHC II variano a seconda del numero di produttori lotto. (Vedere calcolatrice foglio supplementare).
"> MHC II alleli DRB1 *: 1501 MHC II Stock Concentrazione (mg / ml) 1.3 MHC II Stock Concentration (mm) 20 Vol. II MHC Archivio per aggiungere (ml) 14.65 Vol. Reaction Buffer per aggiungere (ml): 2.885,35 MHC II Master Mix Concentration (nm) 101

Tabella 2. Preparazione del master mix MHC II.

4. Preparare i controlli negativi e positivi (1 ° giorno)

  1. Aggiungere 21.5 ml di citrato tampone fosfato al pozzo "controllo negativo" della piastra in polipropilene 384 pozzetti dal punto 2.1 (Figura 1A).
  2. Aggiungere 21.5 ml di citrato tampone fosfato al pozzo "controllo positivo" della piastra in polipropilene da 384 pozzetti.
    Nota: la "posizionecontrollo effettivo "sarà completato nella sezione 5, in basso.
  3. Rimuovere 49.5 ml di MHC II Master Mix dal punto 3.2 e pipetta in una provetta da 1,5 ml Eppendorf.
  4. Aggiungere 0,5 ml di tampone citrato alle 49.5 ml di MHC II Master Mix dal punto 4.3.
  5. Aggiungere 21.5 ml di concentrazione adeguati MHC II Master Mix dal punto 4.4 al pozzo "controllo negativo" della piastra in polipropilene 384 pozzetti (Figura 1A).
    Nota: questo esempio rappresenta il controllo negativo zero segnale contenente proteine ​​MHC II, NO peptide di controllo, e NO peptide test.

5. Aggiungere il comando appropriato Peptide al MHC II Master Mix (Day 1)

MHC II alleli DRB1 * Biotinilato controllo Peptide (Residui) Sequenza
0101 Flu-HA-B (306-318) Biotina-(Ahx) (Ahx) PRYVKQNTLKLAT-ammide
0301 Mioglobina (137-148) Biotina-(Ahx) - (Ahx)-LFRKDIAAKYKE-OH
0401 YAR-B (1-14) Biotina-(Ahx) (Ahx) YARFQSQTTLKQKT-OH
0701 TetTox-B (830-843) Biotina-(Ahx) (Ahx) QYIKANSKFIGITE-OH
1101 Flu-HA-B (306-318) Biotina-(Ahx) (Ahx) PRYVKQNTLKLAT-amide
1501 MBP-B (84-102) Biotina-(Ahx) (Ahx) NPVVHFFKNIVTPRTPPPS-OH

* Si consiglia di ordinare 10 mg scala per l'economia.
Tabella 3. Controllo Peptidi per varie MHC II alleli. *

  1. Diluire il peptide di controllo (conservato a 400 micron di DMSO) 01:20 in DMSO fresca per produrre uno stock diluita a 20 micron.
    1. Aggiungere 25 ml 400 control micron peptide475 microlitri DMSO. Nota: questo è un grande eccesso, ma permette la gestione accurata di soluzioni viscose DMSO.
  2. Diluire ulteriormente il controllo Peptide dal punto 5.1 (20 mm) 1:100 in MHC II Master Mix dal punto 3.2.
    1. Aggiungere 28,8 ml di controllo Peptide diluito nel passaggio 5.2 per i restanti 2,850.5 ml di MHC II Master Mix.
  3. Aggiungere 21,5 ml di MHC II Master Mix con peptide di controllo (passo 5.2) al pozzetto di controllo positivo della piastra polipropilene 384 pozzetti (passo 4.2) (Figura 1A). Nota: questo esempio rappresenta il controllo positivo alto segnale contenente proteine ​​MHC II, controllo peptide, e NO peptide test.

6. Effettuare la reazione di legame (Day 1)

  1. Aggiungere il MHC II Master Mix contenente controllo Peptide (passo 5.2) a ciascuna delle diluizioni test Peptide (passo 2.1) in un rapporto 1:1 a creare la reazione di legame.
    1. Aggiungere 21.5 ml di MHC II Master Mix contenenti Concontrollo Peptide dal punto 5,2-21,5 ml di ogni diluizione di prova Peptide dal punto 2.1. (Manipolazione robot liquido)
  2. Sigillare la reazione di legame con un film di poliestere e incubare 12-24 ore in un incubatore non-CO 2 controllata a 37 ° C senza agitazione.

7. Neutralizzare e Trasferire la reazione di legame (Day 2)

  1. Rimuovere la piastra in polipropilene 384 pozzetti contenente la reazione di legame (punto 6.2) dal termostato 37 ° C.
  2. Diluire 1:1 reazione di legame con la neutralizzazione Buffer. (Manipolazione robot liquido)
    1. Aggiungere 43 ml di tampone di neutralizzazione di ogni reazione di legame bene.
  3. Rimuovere la piastra ELISA (passo 1.3) da 4 ° C e lavare con 3x 60 ml / pozzetto di PBS-0.05% Tween 20. (Lavatore)
  4. Trasferire 25 microlitri di ogni reazione di legame neutralizzato dal punto 7.2 in pozzetti in triplicato del 384 pozzetti ELISA anticorpo piastra rivestita dal punto 7.3. (Figura 1
  5. Coprire la piastra ELISA con un film di poliestere e posto in un incubatore a 37 ° C per 2,5 ore o in un frigorifero a 4 ° C durante la notte.

8. ELISA Development (Day 2 o 3)

  1. Rimuovere la piastra ELISA dal punto 7.5, lavare 3 volte con 60 microlitri / pozzetto di PBS-0.05% Tween. (Lavatore)
  2. Diluire la soluzione streptavidina-Europium magazzino (0,1 mg / ml streptavidina, 7 Eu 3 + / streptavidina) 1,000 volte nel tampone del saggio DELFIA.
    1. Per una piastra da 384 pozzetti, diluire 10 ml streptavidina-Europium in 10 ml di tampone del saggio.
  3. Aggiungere 25 ml di diluito streptavidina-europio a ciascun pozzetto della piastra a 384 pozzetti ELISA dal punto 8.1. (Manipolazione robot liquido)
  4. Coprire la piastra con un film di poliestere e posto al buio a temperatura ambiente per 1 ora. Nota: Durante l'incubazione 1 ora, rimuovere la soluzione Enhancement dal frigorifero e mettere da parte 10 ml / piastra al buio a rotemperatura om.
  5. Seguendo la incubazione di 1 ora, lavare la piastra a 384 pozzetti ELISA dal punto 8.3 3x con 60 pl / pozzetto di PBS-Tween 0,05%. (Lavatore)
  6. Aggiungere 25 ml di soluzione Enhancement a ciascun pozzetto della piastra a 384 pozzetti ELISA dal punto 8.5. (Manipolazione robot liquido)
  7. Coprire la piastra ELISA 384 pozzetti con un film di poliestere e lasciare che la piastra di sedersi al buio a temperatura ambiente per 10-15 min.
  8. A seguito del 10-15 min di incubazione, leggere la fluorescenza della piastra a 384 pozzetti ELISA dal punto 8.7 utilizzando un lettore di tempo risolto fluorescente piastra con impostazioni europio (per esempio, Inizio Int: 200, Stop Int:. 1.000, Ex 340, Em . 615, Cutoff: Nessuno, PMT: Auto, Letture / Well: 50).

9. Analisi dei dati

  1. Inserire i dati in formato grafico XY con 3 valori ripetute nelle colonne side-by-side (X = concentrazione di peptide prova; Y = misurazione della fluorescenza).
  2. Log trasformare i valori X per tutti i dati: X = log (X)
  3. Montare i TRA registrodati nsformed con un sito di legame modello competitivo per estrarre il valore di IC 50.
  4. Vincolare il valore inferiore al valore di controllo negativo medio.
  5. Globalmente adattare il valore superiore e assicurare che il parametro di misura globale è inferiore o uguale al controllo positivo.

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Risultati

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La sequenza peptidica matura di Enterobacter cloacae P99 beta-lattamasi (BLA) (GenBank ID # X07274.1) è stato analizzato con ProPred 16 per leganti peptidici putativi per MHC II allele DRB1 * 1501 (tabella 4). ProPred identificato 117 peptidi nonamer considerando un obbligatorio residuo P1 ancoraggio (cioè una M, L, I, V, F, Y, o W nella posizione 1, che è richiesto per MHC II vincolante 31). Ad una soglia del 5%, peptidi solo con punteggi superiori o uguali a 2,6...

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Discussione

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Biotherapeutics si sono affermati come una pietra miliare della medicina moderna, che rappresentano quattro delle prime cinque farmaci più venduti nel 2012 32. Il settore biofarmaceutica ha mostrato una crescita sostenuta per diversi anni 6, e il continuo sviluppo di nuovi agenti, così come l'emergere dei biosimilari ha ampliato condotte biofarmaceutiche. Guardando al futuro, valutare e mitigare l'immunogenicità di terapie proteiche diventerà parte integrante dello sviluppo biotherapeutic f...

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Dichiarazioni

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Leonard Moise è impiegato da e detiene stock option in EpiVax, Inc., una società di biotecnologia di proprietà privata si trova a Providence, RI. Il lavoro contenute in questo rapporto di ricerca è libera da ogni pregiudizio che potrebbe essere associato con gli obiettivi commerciali dell'azienda.

Ringraziamenti

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Questo lavoro è stato sostenuto da sovvenzioni NIH R01-GM-098977 e R21-AI-098.122 per CBK e KEG. RSS è stato sostenuto in parte da una Luce Foundation Fellowship e in parte da una borsa di studio Thayer Innovation Program presso la Scuola di Ingegneria Thayer.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Tetraborato di sodio decaidratoSigma221732
acido citricoSigmaC1901
Fosfato di sodio bibasicoSigmaS7907
Trizma HClOmniPur9310
Tween-20SigmaP7949
100% DMSOSigmaD8418
Octyl-& beta;-D-glucopiranasideFischer29836-26-8
Pefa Bloc SCFRoche1158591600
Dulbecco' s 10x Soluzione salina tamponata con fosfatoInvitrogen14200-166
Tampone per test DELFIAPerkin Elmer4002-0010
Tampone di potenziamento DELFIAPerkin Elmer4001-0010
Streptavidina marcata con europioPerkin Elmer1244-360
L243 anticorpo anti-HLA-DRBiolegend307602
biotinilato Peptidi traccianti21st Century BiochemicalsOrdine
Peptidi di prova (1-4 mg, 85% di purezza)GenscriptCustom Order
Monomeri HLA-DRB1 purificati (non biotinilati)Benaroya Research Institute*Ordine
Piastra EIA/RIA bianca a 384 pozzettiThermo460372
Polipropilene Piastra a 384 pozzettiCostar3656
Pellicola, AxySeal, 80 & micro; m, applicatore ELISA Axygen AscientificPCR-SP
MilliQ WaterN/AN/A
Epimotion Liquid Handler (o simile)Eppendorf5075
Select TS Plate Washer (o simile)BioTek405
SpectraMax Gemini Microplate Reader (o simile)Molecular DevicesN/A
*Le molecole umane ricombinanti di MHC II possono essere ottenute dal Benaroya Tetramer Core Laboratory. Vedere: https://www.benaroyaresearch.org/our-research/core-resources/tetramer-core-laboratory
personalizzatopersonalizzato

Riferimenti

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Formal Correction: Erratum: A High Throughput MHC II Binding Assay for Quantitative Analysis of Peptide Epitopes
Posted by JoVE Editors on 3/18/2019. Citeable Link.

An erratum was issued for: A High Throughput MHC II Binding Assay for Quantitative Analysis of Peptide Epitopes.  There were typos in the Protocol section and Table 2.

Step 3.1.1 in the Protocol was updated from:

Add 80 µl of 1 mM Pefa Bloc and 60 mg of octyl-β-D-glucopyranaside to 3,920 µl of Citrate Phosphate Buffer. (See supplemental spreadsheet calculator for alternative scaling).

to:

Add 80 µl of 1 mM Pefa Bloc and 60 µg of octyl-β-D-glucopyranaside to 3,920 µl of Citrate Phosphate Buffer. (See supplemental spreadsheet calculator for alternative scaling).

Step 5.2 in the Protocol was updated from:

Further dilute the Control Peptide from step 5.1 (20 mM) 1:100 into the MHC II Master Mix from step 3.2.

to:

Further dilute the Control Peptide from step 5.1 (20 µM) 1:100 into the MHC II Master Mix from step 3.2.

Table 2 was updated from:

MHC II Allele DRB1*:1501
MHC II Stock Concentration (mg/ml)1.3
MHC II Stock Concentration (mM)20
Vol. MHC II Stock to Add (ml)14.65
Vol. Reaction Buffer to Add (ml):2885.35
MHC II Master Mix Concentration (nM)101

to:

MHC II Allele DRB1*:1501
MHC II Stock Concentration (mg/ml)1.3
MHC II Stock Concentration (μM)20
Vol. MHC II Stock to Add (μl)14.65
Vol. Reaction Buffer to Add (μl):2885.35
MHC II Master Mix Concentration (nM)101

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Peptide Epitope AnalysisHigh Throughput ELISASolution Phase CompetitionTime Resolved FluorometryPeptide MHC II ComplexImmunogenic Epitope IdentificationProtein DeimmunizationVaccine DesignLiquid Handling Robot

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