Method Article

Centrifuga dispositivo a microfluidi capillare a base per la Formazione Size-controllabile di Monodisperse microgocce

DOI:

10.3791/53860

February 22nd, 2016

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Qui, dimostriamo un semplice metodo di produzione per microgoccioline di acqua in olio (W/O) controllabili in dimensioni controllabili utilizzando un dispositivo microfluidico centrifugo basato su capillari. Questo metodo richiede solo un piccolo volume di campione e consente una produzione ad alto rendimento. Ci aspettiamo che questo metodo sarà utile per analisi biochimiche e cellulari rapide.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Qui, dimostriamo un metodo semplice per la produzione rapida di, monodisperse, W microgocce / O size-controllabile mediante un dispositivo di microfluidica centrifuga capillare-based. microgocce W / O sono stati recentemente utilizzati in potenti metodi che consentono miniaturizzazione esperimenti chimici. Pertanto, lo sviluppo di un metodo versatile per cedere monodisperse W è necessario / O microgocce. Abbiamo sviluppato un metodo per generare monodisperse W microgocce / O basato su un dispositivo assialsimmetrici centrifuga capillare basata co-scorre microfluidica. Siamo riusciti a controllare la dimensione delle microgoccioline regolando l'orifizio capillare. Il nostro metodo richiede un'attrezzatura che è più facile da usare rispetto ad altre tecniche di microfluidica, richiede solo una piccola quantità (0,1-1 ml) di soluzione campione per incapsulamento, e consente la produzione di centinaia di migliaia numero di microgocce / O W al secondo . Ci aspettiamo che questo metodo vi aiuterà studi biologici che richiedono prezioso s biologicoamples conservando il volume dei campioni per una rapida biochimica analisi quantitativa e studi biologici.

Introduction

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

W / O microgocce 1-5 avere molte applicazioni importanti per lo studio della biochimica e bioingegneria, tra cui la sintesi proteica 6, proteine ​​cristallizzazione 7, emulsione PCR 8,9, incapsulamento della pila 10, e la costruzione di sistemi simili alle cellule artificiali 5,6. Per produrre microgocce W / O per queste applicazioni, criteri importanti sono il controllo della dimensione e monodispersibility delle microgocce W / O. Dispositivi microfluidici per fare monodisperse, dimensioni controllabili W / O microgocce 11 sono basati sul metodo di co-flowing 12,13, metodo flow-focalizzazione 14,15, e il metodo T-svincolo 16 in microcanali. Sebbene questi metodi producono altamente monodisperse microgocce / O W, il processo di microfabbricazione richiede una gestione complicata e tecniche specializzate per la preparazione di microcanali, e richiede anche una grande quantità di soluzione campione (almeno diverse centinaia81; l) a causa del volume morto inevitabili nelle pompe a siringa e tubi che conducono la soluzione campione microcanali. Così, un metodo di facile utilizzo e basso volume morto per generare monodisperse W è necessario / O microgocce.

Questo documento, insieme a video di procedure sperimentali, descrive un dispositivo di centrifuga capillare basata assialsimmetrici co-scorre microfluidica 17 per la generazione di cellule di dimensioni, monodisperse W / O microgocce (Figura 1). Questo semplice metodo raggiunge monodispersity dimensioni e controllabilità dimensioni. Si richiede solo un mini-centrifuga da tavolo e un dispositivo di co-scorre assialsimmetrici capillare basata microfluidica fissa in un microtubo di campionamento. Il nostro metodo necessita solo un volume molto piccolo (0,1 mL), e non perde volume significativo del campione.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Realizzazione di un dispositivo a microfluidi capillare basata

  1. Impostare dei titolari
    Nota: Il disegno del supporto è presentato in Figura 2A.
    1. Tagliare ciascuno dei quattro dischi dei titolari (Figura 2A (i) - (iv)) da 2 mm di spessore piatto di plastica poliacetale utilizzando una fresatrice. Utilizzare le seguenti dimensioni per ciascuna delle quattro dischi del titolare: (i) il disco 1 di diametro 8,5 millimetri, foro capillare (CH) di diametro 1.3 mm, quindi foro vite (SH) di diametro 1,8 millimetri; (Ii) il disco 2 di diametro 8,7 millimetri, diametro CH 2,0 millimetri, diametro SH 1,8 millimetri; (Iii) il disco 3 di diametro 8,7 millimetri, diametro CH 0,5 mm di diametro SH 1,8 millimetri; e (iv) disco 4 di diametro 9,1 millimetri, CH diametro di 1,0 mm, diametro SH 1,8 millimetri.
    2. Montare i supporti utilizzando M2 × 40 viti (Figura 2b). Una parte inferiore del supporto (Figura 2B) consiste del disco 1 e il disco 2 nella Figura 2A (i), (ii) e una parte superiore (Figure 2B) del titolare consiste del disco 3 e il disco 4 nella Figura 2A (iii), (iv).
      1. Per costruire la parte inferiore del supporto, inserire la vite in tre SH di ciascun disco 1 e 2. accorciare le viti nipping un pezzo della porzione di filo. Mantenere la lunghezza della vite a 0.9 cm (la stessa lunghezza della parte inferiore del supporto).
      2. Per costruire la parte superiore del supporto, inserire le viti nelle due SH di ciascun disco 3 e 4. accorciare le viti nipping un pezzo della porzione di filo. Mantenere la lunghezza della vite a 0.7 cm (la stessa lunghezza della parte superiore del supporto).
      3. Per assemblare il supporto, unire le parti inferiore e superiore del supporto con una lunga vite.
        Nota: Mantenere la lunghezza del ogni parte del titolare esatta: la parte inferiore è 0,9 cm; la parte superiore è di 0,7 cm (Figura 2B).
  2. Fabbricazione dei capillari di vetro
    1. Utilizzare due tipi di capillari di vetro: un capillare di vetro interno (diametro esterno (OD) / diametro interno (ID): 1,0 / 0,6 mm), ed un capillare di vetro esterno (OD / ID: 2,0 / 1,12 millimetri).
    2. Utilizzare una taglierina di vetro per dividere il capillare di vetro esterna in tre parti uguali, e quindi utilizzare la taglierina di vetro di dividere il capillare di vetro interno in due pezzi uguali.
    3. Contrasta ogni capillari di vetro interno ed esterno divise con un estrattore capillare di vetro (Figura 3A). Impostare il peso del tirante a max. Impostare il livello di calore del estrattore a 60 gradi per il capillare di vetro esterno e 70 gradi per il capillare interno. affinare con cautela il capillare di vetro.
      1. Mantenere la lunghezza della punta all'interno della parte ristretta del capillare di vetro: il capillare interno è 1.5-1.8 cm; il capillare esterno è 0,8-1,0 cm (Figura 3C). Se questa lunghezza è più breve o più lungo della lunghezza descritto, regolare il livello di calore del tirante.
    4. Fix i capillari di vetro interno o esterno al microforge stare con del nastro (Figura 3B).
    5. Tagliare la punta del capillare di vetro usando l'microforge in tre fasi (Figura 3B): (i) toccare la punta del capillare di vetro alle perline di vetro su un filo di platino, (ii) riscaldare il filo di platino camminando su un piede interruttore per 1-2 sec, e (iii) dopo 1-2 sec, tagliare la punta del capillare di vetro raffreddando il filo di platino.
      1. Regolare i diametri del interno (d i) ed esterno (d o) orifizi capillari, rispettivamente. Il diametro dell'orifizio del capillare vetro interno è 5, 10 e 20 micron (d i = 5,10, 20 micron) e l'esterno capillare di vetro (d o) è 60 micron (d o = 60 micron) in questo esperimento.
        Nota: Il capillare di vetro è monouso. Ripetere la fabbricazione del capillare di vetroi.

2. Procedura per microgocce Generazione w / o

  1. Riempire un capillare di vetro esterna con tensioattivi di olio contenente. La miscela di olio e tensioattivo è esadecano contenente 2% (w / w) sorbitan monooleato in questo esperimento (Figura 4A).
    Nota: Ci sono molte combinazioni di oli e tensioattivi (per esempio, gli oli possono essere fluorurato o gassata; tensioattivi possono essere ionici, non ionici o fluorochimico).
    1. Introdurre 10 ml di esadecano contenenti monooleato in un capillare di vetro esterna. Nella figura 4A, il diametro dell'orifizio del capillare vetro esterno (d o) è di 60 micron (d o = 60 micron). Per regolare l'orifizio del capillare di vetro, tornare a passi 1.2.4-1.2.5.
  2. Impostare il capillare esterno nella parte inferiore del supporto (Figura 4B).
  3. Draw circa 0,1 ml di una soluzione acquosa in un capillare di vetro interno (Figura 4C) per azione capillare. In Figura 4C, il diametro dell'orifizio del capillare di vetro interno (d i) è di 10 micron (d i = 10 micron). Per regolare l'orifizio del capillare di vetro, tornare a passi 1.2.4-1.2.5.
  4. Impostare il capillare interna nella parte superiore del supporto (Figura 4D-a). Inserire il capillare interna nel capillare esterno (Figura 4D-a). Guardando il punto bianco cerchio come nella Figura 4D-a, osservare la posizione del capillare interna all'interno del capillare esterno (diametro interno del capillare esterno (w) = 130 micron) (Figura 4D-b, c) utilizzando un microscopio digitale . La posizione del capillare interna nel capillare esterno deve essere impostato w = 100-150 micron.
    Nota: Per cambiare la posizione della internocapillare nel capillare esterno, disattivare la vite nella parte superiore del supporto. In tal modo, la distanza w può essere controllato con precisione.
  5. Introdurre 100 ml di esadecano contenenti monooleato di sorbitano (2% w / w) nel fondo di una provetta da 1,5 ml di campione. Installare il supporto, con i capillari interne ed esterne, nel campione microtubo (Figura 4E-a). Assicuratevi di controllare il capillare esterno per tenerlo lontano dall'interfaccia aria-olio (Figura 4E-b).
  6. Centrifuga provetta campione utilizzando un tavolo oscillante-out di tipo mini-centrifugare a un peso di 1.600 g per 1-2 secondi per generare microgocce (Figura 4F). Eseguire tutti gli esperimenti a temperatura ambiente.
    Nota: utilizzare un oscillante-out-tipo centrifuga. Una goccia può collidere con una parete laterale della provetta campione e disintegrano quando si utilizza un angolo di tipo fisso centrifuga.
  7. Lentamente redigere il W / O goccioline tramite una pipetta, e poi, metterli su un vetro slide.
  8. catturare immagini delle microgocce generati utilizzando un microscopio digitale (ingrandimento, 200X).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

In questo studio, presentiamo un metodo semplice per la generazione di microgocce W / O cellulari dimensioni utilizzando un dispositivo microfluidico centrifuga capillare basata (Figura 1). Il dispositivo microfluidico era composto da un supporto capillare (Figura 2B), due capillari di vetro (vetro capillari interno ed esterno in Figura 3C), e un microtubo contenente un olio compreso tensioattivo. Abbiamo iniettato 0,1 ml di soluzione di...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

L'utilizzo di questo dispositivo, il monodisperse W microgocce / O sono stati generati da Plateau-Rayleigh instabilità di un jet-flusso 17. L'esame microscopico non ha rivelato la presenza di goccioline satellitari. Nella fabbricazione del dispositivo, tre passi critici sono essenziali per generare successo monodisperse microgocce / O W. Innanzitutto, per fornire un flusso rettilineo di tensioattivo contenente olio e soluzione acquosa, i fori capillari di quattro dischi devono essere disposte in un mo...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Non vengono dichiarati conflitti di interesse.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Questo lavoro è stato supportato dall'area di ricerca PRESTO "Progettazione e controllo delle funzioni cellulari" dell'Agenzia giapponese per la scienza e la tecnologia (JST), da una sovvenzione per la ricerca scientifica di aree innovative "Robotica molecolare" (progetto n. 24104002) dal Ministero dell'Istruzione, della Cultura, dello Sport, della Scienza e della Tecnologia (MEXT), Giappone, da una sovvenzione per giovani scienziati (A) (progetto n. 24680033) e dalla ricerca scientifica (B) (progetto n. 26280097) della Japan Society for la Promozione della Scienza (JSPS) e il corso di Design Creativo per le Bioscienze e le Biotecnologie della Scuola di Bioscienze e Biotecnologie del Tokyo Tech.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Piastra in plastica poliacetalica di 2 mm di spessoreUtensile Nikkyo Technos, Co., Ltd. (Giappone)244-6432-08
FresatriceUtensileRoland DG Co., Ltd. (Giappone)MDX-40A
Fresa RSE230-0.5*2.5UtensileNS Tool Co., Ltd. (Giappone)01-00644-00501
Viti M2*40UtensileJujo Chimica sintetica Labo. (Giappone)Codice 0001-024
Strumento di estrazione per capillry in vetroNarishige (Giappone)PC-10
Narishige (Giappone)MF-900
Narishige (Giappone)Strumento
capillare in vetro esternoWorld Precision Instruments Inc. (USA)1B200-6
Strumento per provetta campione da 1,5 mlINA OPTIKA CO., LTD (Giappone)ST-0150F
ReagenteesadecanoWako Pure Chemical Industries Ltd. (Giappone)080-03685 
Monooleato di sorbitano (Span 80)ReagenteTokyo Chemical Industry Co., Ltd. (Giappone)Milli Q S0060
MerckMillipore Corporation (Germania)ZRQSVP030
Mini-centrifuga di tipo oscillanteHitechCo., Ltd. (Giappone)ATT101
KEYENCE Corporation (Giappone)VHX-2001
Strumento per microforgiatura Strumento capillare interno in vetro G-1 Reagente del sistema Strumento per microscopio digitale

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Song, H., Chen, D. L., Ismagilov, R. F. Reactions in droplets in microfluidic channels. Angew. Chem., Int. Ed. 45 (44), 7336-7356 (2006).
  2. Huebner, A., et al. Microdroplets: a sea of applications? Lab Chip. 8, 1244-1254 (2008).
  3. Taly, V., Kelly, B. T., Griffiths, A. D. Droplets as microreactors for highthroughput biology. ChemBioChem. 8 (3), 263-272 (2007).
  4. Teh, S. Y., Lin, R., Hung, L. H., Lee, A. P. Droplet microfluidics. Lab Chip . 8, 198-220 (2008).
  5. Takinoue, M., Takeuchi, S. Droplet microfluidics for the study of artificial cells. Anal. Bioanal. Chem. 400 (6), 1705-1716 (2011).
  6. Hase, M., Yamada, A., Hamada, T., Baigl, D., Yoshikawa, K. Manipulation of cell-sized phospholipid-coated microdroplets and their use as biochemical microreactors. Langmuir. 23 (2), 348-352 (2007).
  7. Zheng, B., Tice, J. D., Roach, L. S., Ismagilov, R. F. A Droplet-Based, Composite PDMS/Glass Capillary Microfluidic System for Evaluating Protein Crystallization Conditions by Microbatch and Vapor-Diffusion Methods with On-Chip X-Ray Diffraction. Angew. Chem., Int. Ed. 43 (19), 2508-2511 (2004).
  8. Nakano, M., et al. Single-molecule PCR using water-in-oil emulsion. J. Biotechnol. 102 (2), 117-124 (2003).
  9. Diehl, F., et al. BEAMing: single-molecule PCR on microparticles in water-in-oil emulsions. Nat. Methods. 3, 551-559 (2006).
  10. He, M., et al. Selective encapsulation of single cells and subcellular organelles into picoliter- and femtoliter-volume droplets. Anal. Chem. 77 (6), 1539-1544 (2005).
  11. Baroud, C., Gallaire, F., Dangla, R. Dynamics of microfluidic droplets. Lab Chip. 10, 2032-2045 (2010).
  12. Utada, A. S., Nieves, A. F., Stone, H. A., Weitz, D. A. Dripping to jetting transitions in coflowing liquid streams. Phys. Rev. Lett. 99 (9), 094502(2007).
  13. Cramer, C., Fischer, P., Windhab, E. J. Drop formation in a co-flowing ambient fluid. Chem. Eng. Sci. 59 (15), 3045-3058 (2004).
  14. Anna, S. L., Bontoux, N., Stone, H. A. Formation of dispersions using "flow-focusing" in microchannels. Appl. Phys. Lett. 82, 364-366 (2003).
  15. Takeuchi, S., Garstecki, P., Weibel, D. B., Whitesides, G. M. An axisymmetric flow-focusing microfluidic device. Adv. Mater. 17 (8), 1067-1072 (2005).
  16. Thorsen, T., Roberts, R. W., Arnold, F. H., Quake, S. R. Dynamic pattern formation in a vesicle-generating microfluidic device. Phys. Rev. Lett. 86 (18), 4163-4166 (2001).
  17. Yamashita, H., et al. Generation of monodisperse cell-sized microdroplets using a centrifuge-based axisymmetric co-flowing microfluidic device. J. Biosci. Biotech. 119 (4), 492-495 (2015).
  18. Maeda, K., Onoe, H., Takinoue, M., Takeuchi, S. Controlled synthesis of 3D multi-compartmental particles with centrifuge-based microdroplet formation from a multi-barrelled capillary. Adv. Mater. 24 (10), 1340-1346 (2012).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Capillary based Centrifugal Microfluidic DeviceMonodisperse Microdroplet FormationSize controllable MicrodropletsWater in Oil MicrodropletsCentrifugal MicrofluidicsCapillary Orifice ControlMicrodroplet GenerationMicrofluidic Device AssemblyCentrifuge OperationMicrodroplet Size Control

Related Articles