Articolo metodologico

Isolamento di lipoproteine ​​ad alta densità per non codificante Piccolo RNA Quantificazione

DOI:

10.3791/54488

⸱

28 novembre 2016

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Medicine, Vanderbilt University School of Medicine, 2Center for Quantitative Sciences, Vanderbilt University School of Medicine, 3Department of Cancer Biology, Vanderbilt University School of Medicine

* These authors contributed equally

In questo articolo

Sommario

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Questo protocollo descrive l'isolamento e la quantificazione di piccoli RNA di lipoproteine ad alta densità.

Abstract

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

La diversità dei piccoli RNA non codificanti (sRNA) è in rapida espansione e il loro ruolo nei processi biologici, tra cui regolazione genica, stanno emergendo. Più interessante, sRNAs si trovano anche al di fuori delle cellule e sono stabilmente presenti in tutti i liquidi biologici. Come tale, sRNAs extracellulari rappresentano una nuova classe di biomarcatori di malattia e sono probabilmente coinvolti nella segnalazione cellulare e reti di comunicazione intercellulare. Per valutare il loro potenziale come biomarcatori, sRNAs possono essere quantificati nel plasma, urine e altri fluidi. Tuttavia, per comprendere appieno l'impatto di sRNAs extracellulari come segnali endocrini, è importante determinare quali vettori trasportano e li protegge nei fluidi biologici (ad esempio, plasma) che cellule e tessuti contribuiscono alle piscine Srna extracellulari, e le cellule e tessuti capaci di accettare e utilizzare extracellulare sRNA. Per raggiungere questi obiettivi, è fondamentale per isolare le popolazioni altamente pure di vettori extracellulariper sRNA profilatura e la quantificazione. Abbiamo precedentemente dimostrato che le lipoproteine, in particolare lipoproteine ​​ad alta densità (HDL), i trasporti microRNA (miRNA) funzionali tra le cellule e HDL-miRNA sono significativamente alterati nella malattia. Qui, abbiamo dettaglio un nuovo protocollo che utilizza tandem isolamento HDL con ultracentrifugazione in gradiente di densità (DGUC) e fast-proteina-cromatografia liquida (FPLC) per ottenere HDL altamente puro per la profilatura a valle e la quantificazione di tutti sRNAs, tra miRNA, utilizzando sia alta sequenziamento -throughput e real-time PCR approcci. Questo protocollo sarà una risorsa preziosa per l'indagine di sRNAs su HDL.

Introduzione

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Extracellulari non codificante piccoli RNA (sRNAs) rappresentano una nuova classe di biomarcatori di malattia e potenziali bersagli terapeutici e probabilmente facilitare la comunicazione 1 cella-a-cella. Il tipo più ampiamente studiato di sRNA sono microRNA (miRNA), che sono circa il 22 nti di lunghezza e vengono elaborati da forme precursori più lunghi e trascrizioni primari 2. miRNA hanno dimostrato di livello post-trascrizionale regolare l'espressione genica attraverso la soppressione della traduzione di proteine e induzione di mRNA degrado 2. Tuttavia, miRNA sono solo uno dei molti tipi di sRNAs; come sRNAs possono essere scissi dal tRNA controllanti (sRNAs tRNA-derivati, TDR), piccoli RNA nucleari (sRNAs sRNA-derivati, sndRNA), piccoli RNA nucleolari (sRNAs snoRNA-derivati, snRNA), RNA ribosomiale (sRNAs, RDR rRNA-derivati ), Y (RNA YDR), ed altri RNA vari 1. Alcuni esempi di questi nuovi sRNAs sono stati segnalati per funzione simile a miRNA; tuttavia, il fu biologicanctions di molti di questi sRNAs resta da stabilire, anche se i ruoli nella regolazione genica è probabile 3-6. Più interessante, miRNA e altri sRNAs sono stabilmente presenti nei fluidi extracellulari, tra cui la saliva, plasma, urine, e la bile. sRNAs extracellulari sono probabilmente protetti da RNasi attraverso la loro associazione con vescicole extracellulari (EV), lipoproteine, e / o complessi ribonucleoproteici extracellulari.

In precedenza, abbiamo riportato che lipoproteine, cioè lipoproteine ad alta densità (HDL), miRNA di trasporto nel plasma 7. In questo studio, HDL sono stati isolati utilizzando un metodo sequenziale di ultracentrifugazione in gradiente di densità (DGUC), fast-proteina cromatografia liquida (ad esclusione dimensionale gel filtrazione cromatografia FPLC), e cromatografia di affinità (anti-apolipoproteina AI (apoA-I) immunoprecipitazione ) 7. Usando entrambi gli array a bassa densità basati sulla PCR in tempo reale e analisi miRNA individuali, i livelli di miRNA sono stati quantificati sulla HDL isolati da guarirela tua e soggetti ipercolesterolemici 7. Usando questo approccio, siamo stati in grado al profilo miRNA e quantificare miRNA specifici preparati HDL elevata purezza. Dal 2011, abbiamo determinato che, sebbene cromatografia di affinità aumenta HDL purezza, la saturazione degli anticorpi limita fortemente il rendimento, e può essere un costo proibitivo. Attualmente, il nostro protocollo raccomanda un metodo tandem sequenziale in due fasi di DGUC seguito da FPLC, che produce anche i campioni di HDL di alta qualità per il down-stream isolamento RNA e sRNA quantificazione. A causa di recenti progressi nella high-throughput sequenziamento del sRNAs (sRNAseq), ad esempio, miRNA, e la maggiore consapevolezza delle altre classi non miRNA Srna, sRNAseq è l'attuale stato-of-the-art in miRNA e sRNA profiling. Come tale, il nostro protocollo raccomanda miRNA quantificare e altri sRNAs su campioni di HDL utilizzando sRNAseq. Tuttavia, l'RNA totale isolato da HDL può anche essere utilizzato per quantificare i singoli miRNA ed altri sRNAs o convalidare i risultati sRNAseq usando PCR in tempo reale unapproaches. Qui si descrive nel dettaglio un protocollo per la raccolta, la depurazione, la quantificazione, l'analisi dei dati, e la convalida di elevata purezza HDL-sRNAs.

L'obiettivo generale di questo lavoro è quello di dimostrare la fattibilità e il processo di sRNA quantificazione in HDL altamente puro isolato da plasma umano.

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Protocollo

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. HDL Purificazione (~ 5,5 giorni)

  1. In gradiente di densità Ultracentrifugazione (DGUC, ~ 5 giorni)
    1. Aggiungere 90 ml di 100x antiossidanti a 9 ml di plasma isolati dal sangue venoso fresco.
    2. Regolare la densità del plasma con KBr da 1.006 g / mL a 1.025 g / mL con l'aggiunta di 0,251 g di KBr a 9 ml di plasma dal punto 1.1.1 (0,0278 g / ml KBr plasma). Rock the plasma finché tutto il sale viene disciolto a temperatura ambiente e trasferimento ultracentrifuge tubi e garantire tutte le bolle salire verso l'alto.
    3. Piegare la punta di un ago 18-G a 90 ° 1 cm dalla punta, lato smusso rivolto verso l'alto. Usando una siringa e l'ago calibro 18, posizionare accuratamente 3 mL di soluzione overlay # 1 nel plasma (Tabella 1).
      NOTA: L'ago piegato assicura tutte le VLDL / IDL, LDL, HDL e vengono rimossi senza mescolarsi con l'overlay.
    4. Rimuovere la maggior parte delle bolle nella parte superiore, lasciando 2 - 3 mm di spazio dal menisco all'inizio del tubo e carefully posizionare i tubi in secchi SW-40Ti.
    5. Pesare ciascun segmento (con i tappi) sulla bilancia, ed esattamente l'equilibrio con il secchio opposta (secchio + cap): # 1 a # 4, # 2 alla # 5 e # 3 a # 6.
      NOTA: Queste secchi devono essere equilibrati e abbinato a tutti i tempi.
    6. Posizionare il rotore in ultracentrifuge (elenco dei materiali). Centrifugare a 274.400 xg per 24 ore a 4 ° C con un freno intermedio # 4.
    7. Rimuovere con cautela secchi dal rotore e dei tubi da secchi.
    8. Rimuovere con cautela 2 mL dallo strato superiore della sovrapposizione con una siringa e l'ago piegato. Questa sarà la frazione VLDL / IDL che può essere conservato a 4 ° C o -80 ° C.
    9. Dopo aver rimosso la frazione VLDL / IDL, raccogliere il restante 7 ml di campione (plasma) e posizionarlo in un tubo da 15 ml. Portare il volume del campione fino a 9 mL di soluzione overlay # 2 (Tabella 1).
    10. Regolare la densità del campione da 1.025 g / mL a 1.080 g / mL con KBr utilizzandocirca 0,746 g KBr nel campione 9 mL o 0,0828 g / mL KBr di campione. Agitare delicatamente il campione fino a quando tutto il KBr è sciolto (circa 20 min) e trasferimento in ultracentrifuge tubo mentre bolle garantendo salgono verso l'alto.
    11. Con siringa e l'ago, posizionare accuratamente 3 mL di soluzione overlay # 3 sul campione (Tabella 1). Lasciare 2 - 3 mm di spazio dal menisco alla sommità del tubo.
    12. Rimuovere la maggior parte di altri eventuali bolle nella parte superiore del tubo e posizionare accuratamente i tubi ultracentrifuga riempiti in secchi SW-40Ti.
    13. Pesare ciascun segmento (con i tappi) sulla bilancia, ed esattamente l'equilibrio con il secchio di fronte a + cap, come in 1.1.5.
    14. Posizionare il rotore in ultracentrifuge (vedi elenco dei materiali). Centrifugare a 274.400 xg per 24 ore a 4 ° C con un freno intermedio # 4.
    15. Rimuovere con cautela secchi dal rotore e dei tubi da secchi.
    16. Rimuovere accuratamente 2 mL dallo strato superiore della sovrapposizione con una siringa ed esserent ago. Questa sarà la frazione LDL che può essere conservato a 4 ° C o -80 ° C.
    17. Dopo aver rimosso la frazione LDL, raccogliere i restanti approssimative 7 ml di campione (plasma) e inserirlo in un nuovo tubo da 15 ml. Portare il volume del campione (plasma) fino a 9 mL con 1.080 g / mL soluzione # 4 (Tabella 1).
    18. Regolare la densità del campione da 1.080 g / mL a 1,30 g / mL con KBr usando 3,33 g KBr in 9 mL di campione (plasma) o 0,37 g KBr per ogni ml di campione. Rock o leggermente agitare il campione fino a quando tutto il KBr (sale) viene disciolto e trasferimento a ultracentrifuge tubo.
    19. Con siringa e l'ago, posizionare accuratamente 3 mL di soluzione overlay # 5 sul campione (Tabella 1).
    20. Rimuovere la maggior parte di altri eventuali bolle nella parte superiore del tubo, lasciando spazio 2- 3 mm dal menisco alla sommità del tubo e posizionare accuratamente i tubi ultracentrifuga riempiti in secchi SW-40Ti.
    21. Pesare ciascun segmento (con i tappi) sulla bilancia, e precisamente l'equilibrio con il secchio di fronte a + cap, come in 1.1.5.
    22. Posizionare il rotore in ultracentrifuge (vedi elenco dei materiali). Centrifugare a 274.400 xg per 48 ore a 4 ° C con un freno # 4.
    23. Rimuovere con cautela secchi dal rotore e dei tubi da secchi.
    24. Rimuovere con cautela circa 2 ml dallo strato superiore della sovrapposizione con una siringa e l'ago piegato. Questa è la frazione HDL, che può essere conservato a 4 ° C o -80 ° C.
      NOTA: A seguito di HDL DGUC può essere dializzato per rimuovere le soluzioni high-sale.
    25. Per dializzare, posizionare la frazione HDL raccolti in un manicotto di dialisi sigillata (10.000 MW cut-off) e dializzare durante la notte in 1 L 1x PBS. buffer di cambiamento di dialisi (1x PBS) per 3 volte nell'arco di 24 ore. perturbazione delicato della PBS con una magnetica mescolare-bar migliorerà la dialisi.
    26. Determinare la concentrazione proteica del DGUC-HDL utilizzando un metodo BCA 8.
  2. Fast-proteine liquide Chromatografia (FPLC) o cromatografia di esclusione molecolare (~ 6 h)
    1. Filter 1.2 mg di DGUC-HDL (proteine ​​totali) in 500 ml attraverso un filtro micron micro-centrifuga 0,22 (vedi elenco dei materiali), immediatamente prima dell'iniezione.
      NOTA: Un ulteriore filtraggio del campione DGUC-HDL attraverso un filtro micron micro-centrifuga 0,45 a monte del filtro di 0,22 micron può essere richiesto per alcuni campioni.
    2. Raccogliere il campione DGUC-HDL filtrato, caricare la siringa di iniezione FPLC (riempimento), e assicurarsi che non vi siano bolle nella siringa prima di iniettare nel FPLC.
    3. Impostare la portata FPLC a 0,3 mL / min con un limite di pressione a 2,6 MPa. Equilibrare le colonne con 0,2 volumi di colonna (circa 15 ml) di tampone, prima di assaggiare l'iniezione. Iniettare il campione con 3 ml di tampone nel (ansa di iniezione) strumento FPLC e iniziare la corsa. Raccogliere 1,5 frazioni ml per un totale di 72 frazioni.

2. high-throughput Piccolo RNASequencing (sRNAseq, ~ 9 giorni)

  1. Isolamento RNA (~ 1 giorno)
    1. Identificare le frazioni FPLC corrispondenti a DGUC-HDL determinando livelli di colesterolo totale utilizzando un kit colorimetrico secondo le istruzioni del produttore. L'utilizzo di questo FPLC set-up, si aspettano di trovare 6 - 7 frazioni FPLC contenenti DGUC-HDL.
    2. Raccogliere tutto il volume (circa 8 -1 0 mL piscina di 1,45 ml frazione volumi) da frazioni DGUC-HDL FPLC e concentrarsi utilizzando 10 kDa mw unità filtro centrifugo di cut-off a 4.000 xg per 1 ora a 4 ° C o fino HDL concentrato è di circa 100 ml.
    3. Raccogliere il concentrato HDL e quantificare la concentrazione di proteine totali di HDL utilizzando il metodo BCA 8.
    4. Determinare la più alta concentrazione di proteine ​​totali HDL, fino a 1 mg, che può essere aliquotati da ciascun campione nella serie. Ad esempio, isolare l'RNA dalla stessa quantità di proteine ​​totali HDL per ogni campione.
    5. Eseguire Isolamento RNA utilizzandoun protocollo modificato (vedi elenco dei materiali).
      1. Aggiungere 10x volume di fenolo lisi dei reagenti (vedi elenco dei materiali) del campione e vortex per 1 min.
      2. Incubare a temperatura ambiente per 5 min.
      3. Aggiungere cloroformio (20% di fenolo lisi volume di reagente utilizzato nella fase 2.1.5.1) e agitare vigorosamente per 15 s.
      4. Incubare a temperatura ambiente per 2 - 3 min.
      5. Centrifugare per 15 min a 12.000 xg a 4 ° C in una centrifuga refrigerata.
      6. Trasferire la fase acquosa superiore in una nuova provetta, evitando l'interfase.
      7. Aggiungere il volume 1.5x del 100% di etanolo alla fase acquosa e vortex per 1 min.
      8. Conservare i campioni per almeno 1 ora o durante la notte a -80 ° C.
      9. Continuare con il protocollo di isolamento di RNA utilizzando il mini colonne fornite.
      10. Eluire con 30 ml di RNasi-free H 2 O. Prima aggiungere 15 ml di H 2 O direttamente la fritta, rotazione a bassa velocità (2.000 xg) per 2 minuti, epoi girare ad alta velocità (max) per 1 min. Ripetere questa operazione con altri 15 ml di H 2 O.
    6. procedere immediatamente a sRNA generazione biblioteca o conservare a -80 ° C.
  2. Generazione Library (~ 6 h)
    1. Preparare le biblioteche sRNA cDNA utilizzando il protocollo kit sRNA biblioteca generazione, secondo le istruzioni del produttore con una modifica per l'amplificazione PCR, come descritto di seguito.
      1. Preparare la Mastermix PCR in ghiaccio contenente 0,5 microlitri DNasi / RNasi-free H 2 O, 15 microlitri PCR Mix (PML) e 1 ml di RNA PCR Primer (RP1) per campione (includere un ulteriore 10% per l'errore pipettaggio).
      2. Aggiungere 16,5 ml di miscela PCR per ciascun campione (cDNA).
      3. Assegnare un numero di indice / codici a barre per ogni campione per la multiplazione e aggiungere 1 ml PCR Primer Index (al numero corrispondente) per il campione.
      4. Eseguire un lancio rapido utilizzando il microcentrifuga.
        NOTA: Volume totale dovrebbeora essere di 30 microlitri per campione.
      5. Eseguire le condizioni di ciclismo per l'amplificazione PCR si vedano le tabelle 2 e 3.
  3. Dimensioni Selezionare sRNA Biblioteca Come estrarre l'adattatore: adattatori (~ 1,5 h)
    1. Eseguire biblioteca size-selezione con il selettore automatico del formato del DNA secondo le istruzioni del produttore con i seguenti parametri di dimensione: Obiettivo: 156 bp, inizio: 135 bp, Fine: 177 bp, Campo Bandiera: Broad.
  4. DNA Clean Up (~ 0,5 h)
    1. Pulire dimensione selezionata sRNA cDNA secondo le istruzioni del produttore.
    2. Eluire pulito e concentrato sRNA cDNA con 2 x 7 microlitri DNasi / RNasi-free H 2 O.
  5. Quantificare e valutare sRNA cDNA Biblioteca resa e la qualità (~ 1 h)
    1. Valutare la qualità biblioteca sRNA cDNA e le dimensioni utilizzando un chip di DNA ad alta sensibilità su un Bioanalyzer (elenco dei materiali) secondo manufattole istruzioni del urer.
    2. Quantificare le singole concentrazioni biblioteca sRNA cDNA usando un test del DNA ad alta sensibilità (Lista dei Materiali), secondo le istruzioni del produttore.
      NOTA: Si raccomanda di avere tutti i campioni con differenti indici di essere eseguiti sulla stessa corsia della cella di flusso, se possibile. Se è necessaria più di una corsia, mescolare campioni di casi e di controllo in modo appropriato.
  6. High-throughput sRNA Sequencing (~ 7 giorni)
    1. Piscina individuale indicizzato librerie Srna sulla base delle concentrazioni equimolari.
    2. Schermo pool librerie Srna per qualità utilizzando ad alta sensibilità DNA chip sul Bioanalyzer e determinare la concentrazione di DNA biblioteca come in 2.5.1 - 2.5.2.
    3. Eseguire la PCR quantitativa (qPCR) di contenuti adattatore per garantire profondità sequenziamento appropriato utilizzando la libreria sequenziamento kit di qPCR quantificazione secondo le istruzioni del produttore (elenco dei materiali).
    4. Eseguire il sequenziamento utilizzando una sola lettura, 50 bprotocollo p per raggiungere una profondità di circa 20 - 25 M legge / campione, secondo le istruzioni del produttore.

3. Analisi dei dati (~ 1 giorno)

  1. Utilizzare bcl2fastq2, come da istruzioni manuale d'uso, di pre-elaborazione dei file raw FASTQ di campioni demultiplexati (elenco dei materiali).
  2. Utilizzare Cutadapt per tagliare adattatori 9 e rimuovere legge <16 nucleotidi (NTS) di lunghezza, come da istruzioni di guida utente (elenco dei materiali).
  3. Rimuovere le sequenze di contaminazione presenti nelle biblioteche Srna, tra cui la sequenza soluzione di arresto (STP: CCACGTTCCCGTGG) e l'adattatore carry-over (CTACAGTCCGACGATC) utilizzando la funzione removeSequenceInFastq nel quadro NGSPERL, come da istruzioni di guida utente (elenco dei materiali).
  4. Eseguire metriche di controllo di qualità da parte FastQC utilizzando Center for Quantitative Sciences (CQS) strumenti, come da istruzioni di guida utente (elenco dei materiali).
  5. Genera elenco non ridondante di "identico", si legge (crollo redundaNT legge) e un numero record di copia utilizzando CQSTools, come da istruzioni di guida utente (elenco dei materiali).
  6. Allinea legge al genoma umano utilizzando Bowtie1.1.2 permettendo 1 disadattamento (opzioni: -a -m 100 --migliore --strata -v 1), secondo le istruzioni di guida utente (elenco dei materiali).
  7. Eseguire leggere l'allineamento, il conteggio, e il risultato compiti riepilogo utilizzando NGSPERL, come da istruzioni di guida degli utenti.
  8. Convertire tavolo conteggio esportati in un foglio di calcolo.
  9. Normalizzare legge di una specifica classe (ad esempio, miRNA) al numero totale di letture per quella classe (ad esempio, il numero totale di miRNA letture) e segnali di report come Legge Per mappata miRNA (RPMM). (Ad esempio, RPMM = (miR-X / # totale di miRNA letture) * 1.000.000).
  10. Ingresso normalizzato tabella di numeri come generico tecnologia unico colore nel software per basso livello e differenziali di alto livello analizza come da istruzioni di guida utente (elenco dei materiali).
    NOTA: Attualmente, ci sono geni housekeeping non ben caratterizzati / SRNPer quanto riguarda i livelli di HDL-sRNA. Un controllo picco-in può essere utilizzato, ma può essere problematico. Normalizzando HDL ingresso proteine ​​o il volume totale è consigliato. Ancora più importante, si consiglia di convalidare i risultati di sequenziamento da una delle varie strategie per quantificare miRNA e sRNAs formato Real-time PCR o PCR quantitativa.

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Risultati

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Questo protocollo è una serie di metodi consolidati legati insieme per consentire la quantificazione della sRNAs sulla altamente puro HDL by high throughput sequencing o real-time PCR (Figura 1). Per dimostrare la fattibilità e l'impatto di questo protocollo, HDL è stato purificato da plasma umano con il metodo DGUC e FPLC tandem. Raccolti frazioni FPLC corrispondenti a HDL (il colesterolo dalla distribuzione) sono stati concentrati e RNA totale è stato isolato da 1 mg d...

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Discussione

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Questo protocollo è stato progettato per quantificare miRNA ed altri sRNAs da high-throughput sequencing o real-time PCR altamente puro HDL. Come con qualsiasi approccio, considerazioni speciali dovrebbero essere dati ad ogni fase del processo di purificazione HDL e RNA e quindi quantificare sRNAs. Questo protocollo è stato progettato per i progetti che iniziano con ≥ 2 ml di plasma. Tuttavia, le analisi di RNA di alta qualità possono essere completati con successo con HDL purificato da un minimo di 80 ml di plasma uman...

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Dichiarazioni

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Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Ringraziamenti

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Questo lavoro è stato supportato da premi dal National Institutes of Health, National Heart, Lung and Blood Institute a K.C.V. HL128996, HL113039 e HL116263. Questo lavoro è stato anche sostenuto da premi dell'American Heart Association a K.C.V. CSA2066001, D.L.M POST26630003 e R.M.A. POST25710170.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Ultracentrifuga Beckman CoulterA99839Optima XPN-80
Ultracentrifuga RotoreBeckman Coulter331362SW-41Ti
AKTA Sistema FPLC puroGE Healthcare29018224
3x FPLC Superdex 200 Colonne di aumento in lineaGE Healthcare2899094410/300 gl
SynergyMxBioTek Instruments7191000
da tavolo centrifugaThermo Scientific75004525Sorvall ST40R
Centrifuga refrigerataEppendorf226298675417R (acquistabile tramite USA Scientific)
Microfuge USA Scientific2631-0006
PippenPrepSage SciencePIP0001
2100 Bioanalizzatore AgilentG2938B
Saggio del DNA ad alta sensibilitàAgilent5067-4626
Libreria di sequenziamento Kit di quantificazione qPCRIlluminaSY-930-1010
ProFlex Thermal CyclerApplied Biosystems4484073
QuantStudio 12k FlexApplied Biosystems4471134
EpMotion RobotEppendorf9600001115070
Provette da centrifuga ultra trasparentiBeckman Coulter344059
Bromuro di potassioFisher ChemicalsP205-500
Provetta conica da 15 mLThermo Scientific339650
Filtri microcentrifughi 0,45 &; mMilliporeUFC30HV00
Filtri microcentrifughi 0,22 &; micro; mMilliporeUFC30GV00
miRNAEasy Kit di isolamento dell'RNA totaleQiagen217004
Kit colorimetrico per colesterolo totaleCliniqa (Raichem)R80035
Filtro di centrifugazione cut-off da 10.000 m.w.AmiconUFC801024acquistato tramite provette per strisce PCR Millipore
AxygenPCR-0208-Cacquistato tramite Fisher
Kit microRNA RTLife Technologies4366597Per 1000 reazioni
PCR master mixLife Technologies4440041flacone da 50 ml
Kit Pierce BCAThermo Scientific23225
Kit per pulizia e concentratoreZymoD4014
Tubo per dialisiSpectrum Labs132118acquistato tramite Fisher
bcl2fastq2Illuminan/aSoftware
Cutadapthttps://github.com/marcelm/cutadaptn/aSoftware
NGSPERLgithub.com/shengqh/ngsperln/aSoftware
CQSToolsgithub.com/shengqh/CQS.Toolsn/aSoftware
Bowtie 1.1.2 http://bowtie-bio.sourceforge.netn/aSoftware
GeneSpringGX13.1.1Agilentn/aSoftware

Riferimenti

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