Questo protocollo presenta un modello animale grande chirurgico di ischemia cronica, singola nave che provoca anomalie regionali ma non crea infarto, conosciuto come il miocardio hibernating. Seguito istituzione di ischemia cronica, gli animali sono trattati con fuori-pompa LIMA-LAD bypass coronarico per revascularize tessuto ischemico.
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Articolo metodologico
Chirurgico suina modello di Ischemia cardiaca cronica trattato con intervento di Bypass coronarico fuori pompa
In questo articolo
Sommario
Abstract
Ischemia cardiaca cronica che altera la funzione cardiaca, ma non si traduca in infarto, viene definito il miocardio hibernating (HM). Un grande sottoinsieme clinico dei pazienti della coronaropatia (CAD) ha HM, che oltre a causare la funzione alterata, li mette a rischio per aritmie e futuri eventi cardiaci. Il trattamento standard per questa circostanza è rivascolarizzazione, ma questo ha dimostrato di essere una terapia imperfetta. La maggior parte della ricerca pre-clinica cardiaca si concentra sui modelli di infarto di ischemia cardiaca, lasciando questo sottoinsieme dei pazienti di ischemia cronica in gran parte scarsamente. Per colmare questa lacuna nella ricerca, abbiamo sviluppato un modello ben caratterizzato e altamente riproducibile del miocardio hibernating in maiali, come suina è modelli ideali traslazionali per la malattia di cuore umano. Oltre a creare questo modello di malattia unica, abbiamo ottimizzato un modello di trattamento clinicamente rilevanti della chirurgia di bypass coronarico in maiali. Questo ci permette con precisione studiare gli effetti dell'intervento di bypass sulla malattia cardiaca, come pure studiare terapie aggiuntive o alternative. Questo modello induce chirurgicamente stenosi singolo vaso impiantando un constrictor sull'arteria discendente anteriore sinistra (ragazzo) in un giovane maiale. Come cresce il maiale, il costrittore crea una stenosi progressiva, con conseguente ischemia cronica con alterata funzione regionale, ma preservare la vitalità dei tessuti. A seguito dell'istituzione del fenotipo miocardio ibernato, eseguiamo intervento di bypass coronarico fuori pompa per revascularize la regione ischemica, che imita il trattamento oro-standard per i pazienti della clinica.
Introduzione
Malattia coronarica (CHD) colpisce circa 15,5 milioni di persone in Stati Uniti d'America 1 ed è una delle principali cause di morte a livello globale. Mentre il tasso di mortalità connesso con CHD è sceso negli ultimi anni, l'incidenza e l'onere per i pazienti e il sistema sanitario rimangono alta 1. Trattamento primario di CAD severo è rivascolarizzazione, che migliora la sopravvivenza e riduce l'angina2,3,4. Tuttavia, la funzione cardiaca spesso rimane depressa, soprattutto sotto il carico di lavoro aumentato e può progredire a insufficienza cardiaca5,6. I test clinici di chirurgia di bypass coronarico (CABG) per ischemia cronica dimostrano miglioramento nella sopravvivenza e sintomi, ma espulsione frazione spettacoli solo modesti miglioramenti di 8-10% 7,8. Il nostro modello innovativo e ben caratterizzati suina di ischemia del miocardio cronica è un modello di clinica CAD con stenosi vascolare progressiva. Abbiamo dimostrato ridotta contrattilità del miocardio derivanti dalla progressiva riduzione di flusso di sangue 9. Il miocardio non non infarto e possa rimanere vitale in questo scenario. Recupero è possibile, anche se i risultati sono variabili anche con rivascolarizzazione tempestiva. Cronicamente miocardio ischemico che rimane vitale è stata caratterizzata da riduzione del flusso sanguigno e funzione a riposo con riserva contrattile mantenuto è stato chiamato HM e trattamento richiede CABG. Anche se la rivascolarizzazione dell'HM dovrebbe ristabilire la funzione contrattile, osservazioni cliniche e sperimentali dimostrano che il recupero è incompleto8,10.
HM è caratterizzata dalla presenza di vitali ancora miocardio disfunzionale in presenza di riduzione di flusso sanguigno regionale11. Nonostante alterata contrattilità e attività metabolica a riposo, HM è in grado di dimostrare la riserva funzionale e metabolica sotto stimolazione inotropa12. HM è ritenuto sospetto in una maggioranza dei pazienti con CAD e comprende un ampio spettro di malattia. In questo protocollo, dimostriamo il nostro modello di suina stabilito di HM aggirato con arteria mammaria interna di sinistra (LIMA) all'arteria LAD che simula lo scenario clinico. La suina fornisce un eccellente modello di malattia di cuore sopra altri grandi animali come non hanno collaterals passerella dell'epicardio. In questo modo la stenosi del ragazzo da solo per provocare l'ischemia regionale13.
Qui, descriviamo il metodo chirurgico dell'induzione del miocardio hibernating in maiali con la creazione del singolo-vaso stenosi all'arteria del ragazzo. Una volta stabilita l'ischemia cronica (8 settimane post impianto di constrictor LAD), descriviamo il metodo di ricreare il trattamento clinico per HM nel nostro modello suina: innesto di esclusione di un'arteria coronaria della fuori-pompa. Questi metodi chirurgici possono essere utilizzati per studiare non solo un modello clinicamente rilevante di ischemia cardiaca cronica, ma anche per studiare gli effetti della chirurgia del bypass su ischemia cardiaca così come prova di potenziali terapie alternative o adjunctive per ischemia cardiaca.
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Protocollo
Tutti gli studi sugli animali sono stati approvati dalle commissioni di utilizzo del Minneapolis VA Medical Center e l'Università del Minnesota e istituzionali Animal Care. Seguire le attuali linee guida per l'uso e la cura di animali da laboratorio National Institutes of Health.
1. sospensione chirurgia
- Preparazione degli animali
- Per creare un modello del miocardio hibernating, utilizzare 5 - settimana-vecchio, donna, maiali Yorkshire, che pesano nella gamma di 8-10 kg con 9,2 kg come peso medio.
- Per il monitoraggio dello stato pre-operatoria, pesare l'animale entro 3 giorni prima dell'intervento.
- Velocemente l'animale per 12 h prima di iniziare l'anestesia. Garantire che l'acqua è disponibile presso tutte le volte per animali digiuno.
- Dare la buprenorfina SR 0,18 mg/kg IM 24 h prima dell'intervento.
- Induzione
- Sedare l'animale con 6,6 mg/kg tiletamina-zolazepam e xilazina cocktail dato intramuscolarmente. 5-15 min per la droga. consentire cocktail effettive.
- Preparare la vena orecchio asetticamente pulendo tre volte con alcool isopropilico al 70% per il posizionamento del catetere IV.
Nota: Se una vena di orecchio non è adeguata, un'altra vena periferica può essere utilizzato (cioè cefalica). - Applicare unguento oftalmico a entrambi gli occhi per prevenire la secchezza della cornea.
- Se necessario, inducono anestesia con la somministrazione di 1-2 mg/kg di propofol IV o mascherato con 3 L/min di ossigeno e 3% isoflurane, per consentire l'intubazione tracheale.
Nota: L'animale è considerato adeguatamente anestetizzato quando il tono di riflesso o mascella di lampeggio è assente. - Intubare l'animale con un tubo endotracheale di dimensione appropriate.
- Chirurgia
- Una volta che l'animale è anestetizzato, radere la zona toracica sinistra per la chirurgia.
- Avviare la ventilazione meccanica a 10-15 respiri al minimo Set ossigeno a 1-4 L/min e isoflurano tra 1.0 e 3.0% secondo necessità per mantenere un aereo chirurgico di anestesia.
- Posizionare i dispositivi di monitoraggio sull'animale. Dispositivi di monitoraggio dovrebbero includere ECG, pressione arteriosa, temperatura e pulsossimetro.
- Collegare il catetere IV a un gocciolamento IV con soluzione salina 0.9% a un tasso del 5-10 mL/kg/h.
- Asetticamente preparare la cassa laterale sinistra con uno scrub chirurgico approvato dalla FDA.
- Valutare la profondità dell'anestesia ogni 5-15 minuti registrare i segni vitali di base (frequenza cardiaca, ECG, SpO2, NIBP, ETCO2 e temperatura) ogni 15 min.
Nota: L'animale è considerato adeguatamente anestetizzato quando il tono di riflesso o mascella di lampeggio è assente. - Con l'animale che pone sul suo lato destro, luogo sterile copre il lato sinistro del petto dalla spina dorsale alla scapola di centrare il terzo spazio costola in campo sterile.
Nota: Il campo sterile coinvolge spalla anteriore sinistra, compresa la zona ascellare continuando allo sterno allo spazio sesto costola cranialmente. - Pulire delicatamente il campo con un metodo chirurgico approvato dalla FDA come clorexidina gluconato o uno scrub chirurgico di iodio per 2 min, utilizzando un modello di destinazione.
- Sciacquare il campo con acqua e lavare due volte con un metodo approvato dalla FDA come sopra per 2 min risciacquo del campo chirurgico con acqua tra lavaggi, poi asciugare tamponando con spugne garza sterile spugna o 4 x 4 cm.
- Spruzzare la zona con una soluzione di iodio e coprire l'intero animale (ad eccezione del campo chirurgico) con teli sterili. Utilizzare la sterilizzazione a vapore o a gas per sterilizzare gli strumenti, camici e teli per la procedura.
- Amministrare un blocchetto di nervo intercostale con 0,3 mL di lidocaina 0,5% alle costole 2 °, 3 ° e 4 °.
- Dare 125 mg di cefazolina IV prima di aprire il torace.
Nota: succinilcolina 1,5 mg/kg IV può essere indicata da un agente paralitico per ridurre il movimento dei muscoli per ogni richiesta del chirurgo durante l'apertura della cavità toracica. - Esporre il cuore via un thoracotomy di sinistra. Prima manipolazione cuore, dare un 2 mg/kg bolo di lidocaina per impedire aritmia. Fare il 3 ° laterale spazio toracotomia incisione con elettrobisturi monopolare. L'incisione si estenda dall'aspetto craniale della scapola a zona ascellare per circa 10 cm. uso un cauterizzatore incidere la pelle e la muscolatura sottostante per consentire l'ingresso nella cavità toracica.
- Posizionare un retrattore di costola finochietto e accedere allo spazio pleurico presso il terzo spazio intercostale per ritrarre il polmone.
- Acutamente incise il pericardio e ritrarre al lato 2-0 polyglactin soggiorno suture, esponendo il LAD arteria e vena. Ritrarre l'annesso atriale di sinistra con un retrattore di spatola garza-coperto.
- Utilizzando le forbici iris, aprire il adventitia sopra il ragazzo.
- Senza mezzi termini sezionare una parte del LAD arteria circa 1 cm distalmente alla giunzione dell'arteria circonflessa e LAD 0,25 cm circa. Utilizzare un morsetto ad angolo retto per circondare il ragazzo.
- Posizionare le suture in poliestere 4-0 due intorno all'arteria senza porre alcuna tensione.
- Posto un constrictor in plastica a forma di c con un diametro interno di 1,5 mm il ragazzo prossimale alla prima diagonale senza che occlude il vaso.
- Fissarlo con due 4-0 poliestere legami che circondano il ragazzo.
- Senza bloccare chiudere il pericardio mediante sutura in polyglactin 2-0 in un semplice schema interrotto.
- Eseguire un respiro tenere premuto per eliminare l'aria dal petto mentre lo strato del muscolo intercostale è chiuso. Monitorare attentamente il manometro di pressione delle vie aeree sulla macchina di anestesia per mantenere la pressione in una gamma adeguata di 20-30 cm di acqua e rilasciare quando completa.
Nota: Questo elimina la necessità di un tubo toracico nel periodo postoperatorio. - Chiudere gli strati della pelle e del muscolo in modo standard utilizzando 2-0 e 3-0 suturare assorbibile.
- Utilizzare colla di pelle sopra l'incisione per la chiusura della pelle.
- Somministrare una dose totale di bupivacaina 1 mg/kg per via intramuscolare ai luoghi multipli lungo la lunghezza dell'incisione alla fine della procedura. Amministrare il meloxicam 0,2 mg/kg SQ prima del trasporto per il recupero dell'area.
- Svezzare l'animale fuori dal ventilatore come lo strato della pelle è chiuso.
- Lasciare l'animale collegato alla macchina di anestesia finché può respirare spontaneamente e riflessi protettivi cominciano a tornare.
- Non rimuovere il tubo endotracheale fino a quando l'animale può inghiottire per proteggere le vie respiratorie.
- Applicare una medicazione sterile, non aderente con tripla-antibiotico unguento sopra l'incisione.
- Post-chirurgia
- Registrare la frequenza cardiaca, frequenza respiratoria, temperatura corporea e la membrana mucosa di colore ogni 15 min fino a quando l'animale può tenere una posizione sternale senza assistenza.
- Non lasciare incustodito l'animale fino a quando non può sollevare e tenere la testa su e può stare in piedi senza aiuto.
- Dare meloxicam (0,2 mg/kg) per via sottocutanea.
- Amministrare il rilascio prolungato buprenorfina 6 h dopo la dose iniziale pre-operatoria.
- Lasciare la medicazione sull'incisione per fino a 3 giorni, se rimane asciutto e pulito. Sostituire la medicazione se esso è sporca.
- Monitorare il livello di dolore, benessere generale e la condizione dell'incisione per 5 giorni dopo la procedura.
Nota: Una scala di smorfia porcellino è ora disponibile per valutare il livello di dolore in questi animali postoperatorio14. Utilizzare mezza dose meloxicam necessari una volta al giorno per il dolore episodico intenso. - Singolo-casa l'animale durante il periodo di recupero di 5 giorni per limitare le attività e permettere alla ferita di guarire.
- Consentire 8 settimane per sviluppare pienamente il fenotipo di miocardio ibernato.
2. revascularization o spegnere la pompa Bypass
- Preparazione degli animali
- Pesare l'animale entro 3 giorni prima dell'intervento.
- Velocemente l'animale per 12 h prima della chirurgia. Garantire che l'acqua è disponibile presso tutte le volte per animali digiuno.
- Dare rilascio prolungato buprenorfina 0,18 mg/kg per via intramuscolare 24 h prima dell'intervento.
- Induzione
- Sedare l'animale con cocktail tiletamina-zolazepam/xilazina 6,6 mg/kg per via intramuscolare. 5-15 min dopo la sedazione, preparare la vena dell'orecchio in modo asettico per il posizionamento del catetere.
Nota: Se una vena di orecchio non è adeguata, un'altra vena periferica può essere utilizzato (cioè cefalica). - Applicare unguento oftalmico in entrambi gli occhi.
- Indurre l'anestesia con 1-2 mg/kg di propofol IV.
- Intubare l'animale con un tubo endotracheale di dimensione appropriate.
- Sedare l'animale con cocktail tiletamina-zolazepam/xilazina 6,6 mg/kg per via intramuscolare. 5-15 min dopo la sedazione, preparare la vena dell'orecchio in modo asettico per il posizionamento del catetere.
- Chirurgia
- La barba dell'animale sterno, cassa laterale sinistro e triangoli femorale per la chirurgia.
- Impostare la ventilazione meccanica per 10-15 respiri al minuto, ossigeno a 1-4 L/min e isoflurano 1,0-3,0% secondo necessità per mantenere un aereo chirurgico di anestesia.
- Posizionare le apparecchiature di monitoraggio (frequenza cardiaca, ECG, SpO2, diretto della pressione sanguigna, ETCO2 e temperatura) sull'animale.
- Collegare il catetere IV a un gocciolamento IV con soluzione salina o LRS.
- In modo asettico e preparare la pelle con povidone iodio scrub o altro metodo approvato dalla FDA.
- Valutare l'animale per la profondità dell'anestesia.
Nota: L'animale è considerato profondamente anestetizzato quando l'occhio o la mascella riflesso è assente. - Posizionare l'animale dorsalmente, preparare la pelle come descritta in precedenza e drappo l'animale con asciugamani sterili.
- Eseguire un taglio verso il basso per l'arteria femorale e l'inserimento di una canula. Utilizzare elettrocauterizzazione monopolare per creare un'incisione della pelle di circa 3 cm sopra l'arteria femorale per esporlo per inserimento di una canula.
- Eseguire un blocco del nervo femorale dopo l'incisione è fatta, per consentire il posizionamento preciso di droga. Collegare la cannula femorale di un trasduttore per monitorare le pressioni sanguigne durante l'intervento chirurgico.
- Utilizzare electro-cauterio incidere da manubrio al processo xifoideo, nonché di incidere il muscolare, adiposo e del tessuto connettivo a livello dello sterno.
- Dividere lo sterno con una sega oscillante.
Nota: Utilizzando un oscillante visto, piuttosto che una sega sternale standard consente di evitare potenziali lesioni del miocardio da aderenze pericardici come conseguenza il thoracotomy per posizionamento constrictor il ragazzo. - Amministrare la lidocaina (dose di carico di 2 mg/kg IV, 50 µ g/kg/min di infusione IV continua) per impedire le aritmia. Diluire la lidocaina in una sacca da 500 mL di soluzione fisiologica normale ad una concentrazione di 1 mg/mL.
- Dividere il piatto sternal posteriore con forbici Mayo rette.
- Utilizzare un riavvolgitore di petto per esporre la cavità toracica.
- Abbattere le aderenze con electro-cautery monopolare.
- Utilizzando il retrattore stesso, con l'elevazione delicata del bordo sternale sinistro da un assistente, sezionare l'arteria mammaria interna sinistra libero da parete toracica.
- Controllare i rami arteriosi con i hemoclips.
- Eparinizzare l'animale con 100-300 unità/kg dell'eparina IV.
- Dopo 3 min, dividere l'arteria con l'estremità distale oltre cuciti. Preparare l'estremità prossimale per l'innesto.
- Aprire e ritrarre il pericardio. Confermare che la lunghezza della LIMA è adeguata per raggiungere il sito anastomotico appropriato il ragazzo.
- Eseguire la LIMA all'anastomosi LAD con sutura in polipropilene 7-0 utilizzando una pompa off tecnica con uno stabilizzatore cardiaco, primavera forma clip e dispositivi di dimensioni appropriate intraluminal.
- Posizionare un drenaggio toracico fra le nervature sul petto laterale a sinistra, esternalizzato e collegato a vuoto per eliminare l'aria dalla cavità toracica per 15-30 min.
- Approssimativa dello sterno con le suture in poliestere #5 utilizzando un modello di figura otto.
- Chiudere il muscolo, strati della pelle e sottocutanei nel modo consueto come descritto nella chirurgia della sospensione. Rimuovere il tubo della cassa durante l'esecuzione di una manovra di Valsalva per rimuovere tutta l'aria residua dalla cavità toracica e chiudere l'incisione con una sutura.
- Applicare l'adesivo pelle sulla pelle per proteggere l'incisione sternale. Rimuovere il catetere femorale delicatamente e riparare l'arteria con sutura in polipropilene 7-0 in un modello di stringa di borsa. Chiudere la pelle utilizzando la sutura in polyglactin 2-0 in un modello di subcuticular.
- Somministrare una dose totale di bupivacaina 1 mg/kg per via intramuscolare ai luoghi multipli lungo la lunghezza dell'incisione alla fine della procedura.
- Amministrare il meloxicam 0,2 mg/kg per via sottocutanea prima del trasporto per il recupero dell'area.
- Seguire il protocollo post-operatorio nella procedura di ibernazione.
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Risultati
Dopo l'intervento chirurgico iniziale sospensione, stenosi supera al 70% dovrebbe essere in grado di essere osservato da tecniche di imaging clinici come angiografia o cardiaco MRI (Figura 1A). 8 settimane dopo l'applicazione chirurgica del constrictor LAD, analisi della funzione regionale di ECHO o MRI cardiaco rivelano la funzione ridotta sotto carico di lavoro aumentato (Figura 2). Questo può essere testato st...
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Discussione
Qui, indichiamo che il nostro modello di suina di HM accuratamente imita l'esperienza clinica dei pazienti con la malattia del singolo vaso e funzione ventricolare sinistra conservata. Prima la rivascolarizzazione, Mostra degli animali con singolo vaso HM danno minimo nella funzione globale come misurata dalla frazione di espulsione, ma Visualizza significativa riduzione di ispessimento di parete regionali. Dopo la rivascolarizzazione, formazione immagine di CMR a uno o tre mesi di recupero dimostra conservata pervietà d...
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Dichiarazioni
Gli autori non hanno nulla a rivelare.
Ringraziamenti
Questo lavoro è stato supportato da VA al merito recensione #I01 BX000760 (RFK) da Stati Uniti (US) Department of Veterans Affairs BLR e D. Il contenuto di questo lavoro non rappresentano le opinioni di l'US Department of Veterans Affairs del governo degli Stati Uniti.
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Materiali
| Nome | Azienda | Numero di catalogo | Commenti |
|---|---|---|---|
| Bair Hugger | 3M | Modello 505 | Sistema di riscaldamento del paziente |
| SR Buprenorfina 10 mg/mL | Abbott Labs | NADA 141-434 | Clip a molla chirurgica analgesica postoperatoria |
| Applied Medical | A1801 | Estremità del morsetto di LIMA dopo lo smontaggio | |
| Kit linea arteriosa | Freccia | ASK-04510-HF | Catetere femorale per il monitoraggio della pressione sanguigna |
| 1000mL Cloruro di sodio 0,9% | Baxter | 2B1324X | IV liquido di ricambio |
| 250 mL soluzione salina 0,9% | Baxter | UE1322D | Liquido IV di ricambio |
| 500mL 0,9% cloruro di sodio | Baxter | 2B1323Q | Somministrazione di farmaci, fornire nebbia per soffiatore Mister |
| Flo-thru 1,0 | Baxter | FT-12100 | utilizzato per anastomos LIMA a L |
| Flo-thru 1,25 | Baxter | FT-12125 | |
| Flo-thru 1,5 | Baxter | FT-12150 | |
| Flo-thru 2,0 | Baxter | FT-12200 | |
| Cloroprep | Becton Dickenson | 260815 | Preparazione chirurgica della pelle |
| Meloxicam | Boehringer Ingelheim Vetmedica, Inc. | 0010-6013-01 | FANS per analgesia |
| Hypafix | BSN Medical | 4210 | Medicazione sicura per ferite e cateteri IV |
| Tubo IV per soffiatore Mister | Carefusion | 42493E | Si adatta ai fluidi IV per il manipolo Blower/Mister |
| Bovie Cautery | Covidien | E2516 | Emostasi |
| Tubo toracico | Covidien | 8888561043 | Evacua l'aria dalla cavità toracica |
| Cauterizzazione monopolare | Covidien | Valleylab FT10 | Emostasi |
| Telpha pad | Covidien | 2132 | Medicazione sterile per ferite |
| 4-0 Tevdek II Strands | Deknatel | 7-922 | Sutura per fissare il costrittore attorno a LAD |
| Propofol | Diprivan | 269-29 | Agente di induzione |
| lama lunga per laringoscopio | DRE | 12521 | Consente la visualizzazione della trachea per l'intubazione |
| Elettrodi ECG | DRE | 1496 | Monitora |
| laringoscopio del ritmo cardiaco | DRE | 12515 | |
| Macchina per anestesia + ventilatore | DRE Dräger- Fabius Tiro | DRE0603FT | Fornire ossigeno e inalante al paziente |
| 5 Ethibond | Ethicon | MG46G | Sutura |
| 0 Vicryl | Ethicon | J208H | Sutura |
| 2-0 Vicryl | Ethicon | J317H | Sutura |
| 3-0 Vicryl | Ethicon | VCP824G | Sutura |
| 7-0 Prolene | Ethicon | M8702 | Sutura |
| Dermabond | Ethicon | DNX12 | Adesivo cutaneo |
| Ligaclips | Ethicon | MSC20 | Graffette chirurgiche per smontaggio LIMA |
| Soluzione salina sterile 20 mL | Fisher Scientific | 20T700220 | Flush per cateteri IV |
| Telazol 100 mg/mL | Fort Dodge | 01L60030 | |
| Unguento antibiotico triplo | Johnson & Johnson | 23734 | |
| Tubo endotracheale topico su ferita con diametro interno di 6,0 mm | Mallinckrodt | 86049 | Stabilire le vie aeree per Revasc, risonanza magnetica e terminazione |
| Nastro medico da 1" | Medline | MMM15271Z | Medicazione sicura della ferita e cateteri IV Tubo |
| endotracheale con ID da 4,0 mm | Medline | DYND43040 | Stabilire le vie aeree per l'ibernazione |
| Tubo endotracheale con diametro interno di 4,5 mm | Medline | DYND43045 | Stabilire le vie aeree per l'ibernazione |
| Tubo endotracheale con ID da 5,0 mm | Medline | DYND43050 | Stabilire le vie aeree per l'ibernazione |
| Tubo endotracheale con ID da 6,5 mm | Medline | DYND43065 | Stabilire le vie aeree per Revasc, risonanza magnetica e |
| terminazione Tubo endotracheale con ID da 7,0 mm | Medline | DYND43070 | Stabilire le vie aeree per Revasc, risonanza magnetica e terminazione |
| Coperta Bair Hugger - Sottoscocca di grandi dimensioni | Medline | AUG55501 | Sistema di riscaldamento del paziente |
| Confezione base | Medline | DYNJP1000 | Teli sterili e copritavolo Cera |
| per ossa | Medline | ETHW31G | Emostasi dell'osso tagliato |
| Tubo di aspirazione | Medline | DYND50223 | |
| Contenitore di aspirazione... | Medline | DYNDCL03000 | |
| Siringa da 1 ml | Medtronic/Covidien | 1188100777 | Somministrare agenti iniettabili |
| Siringa da 12 ml | Medtronic/Covidien | 8881512878 | Somministrare agenti iniettabili |
| Siringa da 20 ml Medtronic | /Covidien | 8881520657 | Somministrare agenti iniettabili |
| 3 ml Syinge | Medtronic/Covidien | 1180300555 | Somministrare agenti iniettabili |
| 6 siringa da ml | Medtronic/Covidien | 1180600777 | Somministrare agenti iniettabili |
| Siringa da 60 ml | Medtronic/Covidien | 8881560125 | Somministrare agenti iniettabili |
| Soffiatore Mister Kit | Medtronic/Covidien | 22120 | Libera il campo chirurgico per l'anastomosi dei vasi |
| Roncuronium | Mylan | 67457-228-05 | Agente bloccante neuromuscolare |
| # 40 lama tagliacapelli | Oster | 078919-016-701 | Rimuovere i peli dai siti chirurgici |
| Hair Clipper | Oster | 078566-011-002 | Rimuovere i peli dai siti chirurgici |
| Bupivicaina | Pfizer | 00409-1161-01 | Anestetico locale |
| Cephazolin | Pfizer | 00409-0805-01 | Antibiotico |
| Eparina | Pfizer | 0409-2720-03 | anticoaggulante |
| Lidocaina 2% | Pfizer | 00409-4277-01 | Anestetico locale / antiarrtimico |
| Succinilcolina 20 mg / mL | Pfizer | 00409-6629-02 | Agente bloccante neuromuscolare |
| Monitor per anestesia | Phillips Intellivue | MP70 | Supporta la ventilazione con inalante |
| Lacrime artificiali | Rugby | 0536-1086-91 | Lubrificare gli occhi per prevenire l'essiccazione corneale |
| Buprenorfina 0,3 mg/mL | Sigma Aldrich | B9275 | Analgesico preoperatorio per procedure surviviali |
| Isoflurano | Sigma Aldrich | CDS019936 | Anestetico generale - Inalante |
| 36 " Tubo di monitoraggio della pressione | Smith' s Medical | MX563 | Connect art. Linea al trasduttore |
| 48" Tubo di monitoraggio della pressione | Smith' s Medical | MX564 | Connect art. Linea al trasduttore |
| Jelco 18 ga catetere IV | Smiths medical | 4054 | IV accesso in Revasc, risonanza magnetica e |
| termine Jelco 20 ga IV catetere | Smiths medical | 4059 | IV accesso nella risonanza magnetica |
| Jelco 22 ga catetere IV | Smiths medical | 4050 | Accesso IV in procedura di ibernazione |
| OPVAC Synergy II | Terumo Sistema cardiovascolare | 401-230 | Posizionatore cardiaco e stabilizzatore |
| Sega sternale/ Sega per necroscopia | Thermo Fisher | 812822 | Utilizzato per aprire la cavità toracica |
| Delrin Constrictor | U di MN | Realizzato su misura | Crea la stenosi del cilindro E del serbatoio di ossigeno LAD |
| vari | vari | Utilizzato per il soffiatore Mister se la macchina per anestesia non dispone di flussometro ausiliario | |
| Trasduttore di pressione | vari | Deve adattarsi al monitor dell'anestesia | Monitorare le pressioni arteriose dirette |
| Xilazina 100 mg/mL | Vedco | 468RX | Sedativo/analgesico preoperatorio |
Riferimenti
- Mozaffarian, D., et al. Heart Disease and Stroke Statistics-2016 Update A Report From the American Heart Association. Circulation. 133 (4), 350(2015).
- Di Carli, M. F., et al. Value of metabolic imaging with positron emission tomography for evaluating prognosis in patients with coronary artery disease and left ventricular dysfunction. Am J Cardiol. 73 (8), 527-533 (1994).
- Gerber, B. L., et al. Prognostic value of myocardial viability by delayed-enhanced magnetic resonance in patients with coronary artery disease and low ejection fraction: impact of revascularization therapy. J Am Coll Cardiol. 59 (9), 825-835 (2012).
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