Questo protocollo descrive il metodo cryoAPEX, in cui una proteina della membrana marcata APEX2 può essere localizzata mediante microscopia elettronica di trasmissione all'interno di ultrastruttura cellulare conservata in modo ottimale.
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Articolo metodologico
Questo protocollo descrive il metodo cryoAPEX, in cui una proteina della membrana marcata APEX2 può essere localizzata mediante microscopia elettronica di trasmissione all'interno di ultrastruttura cellulare conservata in modo ottimale.
Gli eventi cellulari chiave come la trasduzione del segnale e il traffico di membrana si basano sulla corretta posizione delle proteine all'interno dei compartimenti cellulari. Comprendere con precisione la localizzazione subcellulare delle proteine è quindi importante per rispondere a molte domande biologiche. La ricerca di un'etichetta robusta per identificare la localizzazione delle proteine combinata con un'adeguata conservazione cellulare e colorazione è stata storicamente impegnativa. I recenti progressi nell'imaging della microscopia elettronica (EM) hanno portato allo sviluppo di molti metodi e strategie per aumentare la conservazione cellulare ed etichettare le proteine bersaglio. Un tag genetico relativamente nuovo basato sulla perossidasi, APEX2, è un leader promettente nei tag eM-active clonabili. La preparazione del campione per la microscopia elettronica a trasmissione (TEM) è avanzata anche negli ultimi anni con l'avvento della criofissia mediante congelamento ad alta pressione (HPF) e disidratazione e colorazione a bassa temperatura tramite sostituzione del congelamento (FS). HPF e FS forniscono un'eccellente conservazione dell'ultrastruttura cellulare per l'imaging TEM, secondo solo per la crio-imaging diretto di campioni vitrei. Qui presentiamo un protocollo per il metodo cryoAPEX, che combina l'uso del tag APEX2 con HPF e FS. In questo protocollo, una proteina di interesse è contrassegnata con APEX2, seguita da fissazione chimica e reazione alla perossida. Al posto della colorazione tradizionale e della disidratazione dell'alcool a temperatura ambiente, il campione viene criofatto e subisce disidratazione e colorazione a bassa temperatura tramite FS. Utilizzando cryoAPEX, non solo è possibile identificare una proteina di interesse all'interno dei compartimenti subcellulari, ma anche informazioni aggiuntive possono essere risolte rispetto alla sua topologia all'interno di una membrana strutturalmente conservata. Dimostriamo che questo metodo può fornire una risoluzione sufficientemente elevata da decifrare i modelli di distribuzione delle proteine all'interno di un lume di organello e distinguere la compartimentazione di una proteina all'interno di un organello in prossimità di altri organelli non etichettati. Inoltre, crioAPEX è proceduralmente semplice e suscettibile alle cellule coltivate nella coltura tissutale. Non è più impegnativo dal punto di vista tecnico rispetto ai tipici metodi di criofissazione e sostituzione del congelamento. CryoAPEX è ampiamente applicabile per l'analisi TEM di qualsiasi proteina di membrana che può essere etichettata geneticamente.
Gli studi biologici spesso includono questioni di risoluzione della localizzazione delle proteine subcellulari all'interno di cellule e organelli. La microscopia a immunofluorescenza fornisce un'utile visione a bassa risoluzione della localizzazione delle proteine, e recenti progressi nell'imaging a super-risoluzione stanno spingendo i limiti di risoluzione per le proteine fluorescentimarcate 1,2,3. Tuttavia, la microscopia elettronica (EM) rimane lo standard d'oro per l'imaging dell'ultrastruttura cellulare ad alta risoluzione, anche se l'etichettatura delle proteine è una s....
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1. Cultura cellulare e trasfezione
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Al fine di confrontare la conservazione ultrastrutturale utilizzando il metodo crioAPEX con la fissazione tradizionale e la disidratazione, abbiamo preparato campioni in cui una membrana del reticolo endolasmico (ERM; il peptide ER membrana) è stato etichettato con APEX2 e trasvenuto nelle cellule HEK-293T. ERM-APEX2 localizza la faccia citoplasmica del ER e rimodella la struttura ER in strutture morfologicamente distinte conosciute come organizzato liscio ER (OSER)34,.......
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Il protocollo cryoAPEX qui presentato fornisce un metodo robusto per caratterizzare la localizzazione delle proteine della membrana all'interno dell'ambiente cellulare. Non solo l'uso di un tag APEX2 geneticamente codificato fornisce una localizzazione precisa di una proteina di interesse, ma l'uso della criofissia e della disidratazione a bassa temperatura fornisce un'eccellente conservazione e colorazione dell'ultrastruttura cellulare circostante. Combinati, questi approcci sono un potente strumento per localizzare una.......
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Gli autori non dichiarano alcun conflitto di interessi.
Il protocollo qui descritto deriva da una pubblicazione di Sengupta et al., Journal of Cell Science, 132 (6), jcs222315 (2019)48. Questo lavoro è supportato dalle sovvenzioni R01GM10092 (a S.M.) e AI081077 (R.V.S.) dei National Institutes of Health, CTSI-106564 (a S.M.) dell'Indiana Clinical and Translational Sciences Institute, e PI4D-209263 (a S.M.) dall'Istituto Universitario Purprovvisorio per l'Infiammazione.
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| Nome | Azienda | Numero di catalogo | Commenti |
|---|---|---|---|
| 3,3'-Diaminobenzidina tetracloridrato idrato | Sigma-Aldrich | D5637-1G | |
| Acetone (Distillato di vetro) | Microscopia elettronica | Scienze 10016 | |
| Becher; Plastica, monouso 120 cc | Microscopia elettronica | 60952 | |
| Albumina sierica bovina | Sigma-Aldrich | A7906-100G | |
| Fiale di conservazione criogenica, 2 mL | VWR | 82050-168 | |
| Dulbecco's Modified Eagle's Medium | Corning | 10-017-CV | |
| Durcupan ACM Fluka, resina epossidica monocomponente A, M | Sigma-Aldrich | 44611-500ML | |
| Durcupan ACM Fluka, monocomponente B, indurente 964 | Sigma-Aldrich | 44612-500ML | |
| Durcupan ACM Fluka, monocomponente C, acceleratore 960 (DY 060) | Sigma-Aldrich | 44613-100ML | |
| Durcupan ACM Fluka, monocomponente D | Sigma-Aldrich | 44614-100ML | |
| Stampo per inclusione, piatto standard, 14 mm x 5 mm x 6 mm | Microscopia elettronica Sciences | 70901 | |
| Stampo per inclusione, piatto standard, 14 mm x 5 mm x 4 mm | Microscopia elettronica Sciences | 70900 | |
| Siero fetale bovino; Nu-Serum IV Growth Medium Supplement | Corning | 355104 | |
| Glass Knife Boats, 6,4 mm | Microscopia elettronica Sciences | 71008 | |
| Glass Knifemaker | Leica Microsystems | EM KMR3 | |
| Glutaraldeide 10% Soluzione acquosa | Microscopia elettronica | Sciences 16120 | |
| HEK 293 Celle | ATCC | CRL-1573 | |
| Congelatore ad alta pressione con sistema di trasferimento rapido | Leica Microsystems | EM PACT2 | Prodotto archiviato sostituito da Leica EM ICE |
| Perossido di idrogeno 30% | Fisher Scientific | 50-266-27 | |
| Lipofectamina 3000 Reagente di trasfezione | ThermoFisher Scientific | L3000015 | |
| ThermoFisher Scientific Supporto membrana per EM PACT2, 1,5 mm x 0,1 mm | Mager Scientific | 16707898 | |
| Tetrossido di osmio, cristallino | Microscopia elettronica Sciences | 19110 | |
| Soluzione salina tamponata con fosfato (PBS) 20X, grado ultra puro | VWR | 97062-950 | |
| Capsule in plastica per AFS/AFS2, 5 mm x 15 mm | Mager Scientific | 16702738 | |
| Griglie a fessura, 2 x 1 mm in rame con pellicola di supporto Formvar | Microscopia elettronica Sciences | FF2010-Cu | |
| tampone di cacodilato di sodio, 0,2 m, pH 7,4 | Scienze della microscopia elettronica | 102090-962 | |
| Idrossido di sodio, pellet 500 g (ACS) | Avantor Macron Fine Chemicals | 7708-10 | |
| microscopia elettronica | dell'acido tannico | 21710 | |
| Piastre per colture tissutali, polistirene, sterile, Corning, 100 mm | VWR | 25382-166 | |
| Strisce di | coltelli in vetro ultraScienze della microscopia elettronica | 71012 | |
| Ultramicrotomo | Leica Microsystems | EM UC7 | |
| Acetato di uranile diidrato | Scienze della microscopia elettronica | 22400 |
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