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Articolo metodologico

Analisi del consumo di ossigeno dell'isola pancreatica del primate non umano

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DOI:

10.3791/60696

18 dicembre 2019

In questo articolo

Sommario

Questo protocollo dimostra la misurazione accurata e riproducibile del consumo di ossigeno nelle isole pancreatiche dei primati non umani. Le tecniche di caricamento dell'isolotto e il rivestimento della micropiastra forniscono un quadro per la misurazione efficiente della respirazione in altri tipi di sferoidi coltivati.

Abstract

La misurazione del consumo di ossigeno in gruppi di sferoidi di cellule, come le isole pancreatiche ex vivo, è stata storicamente impegnativa. Dimostriamo la misurazione del consumo di ossigeno alle irate utilizzando una micropiastra da 96 pozzetto progettata per la misurazione del consumo di ossigeno negli sferoidi. In questo analisi, le microplacche sferoidi sono rivestite con un adesivo per cellule e tessuti il giorno prima del saggio. Utilizziamo un piccolo volume di soluzione adesiva per incoraggiare l'aderenza alle alteienze solo sul fondo del pozzo. Il giorno del saggio, 15 isolotti vengono caricati direttamente nella base di ogni pozzo utilizzando una tecnica che garantisce un posizionamento ottimale delle isole e una misurazione accurata del consumo di ossigeno. Vari aspetti della respirazione mitocondriale sono sondati farmacologicamente in isolotti di primati non umani, tra cui la respirazione dipendente dall'ATP, la respirazione massima e la perdita di protoni. Questo metodo consente risultati coerenti e riproducibili utilizzando solo un piccolo numero di isolotti per pozzo. Teoricamente può essere applicato a qualsiasi sferoide coltivato di dimensioni simili.

Introduzione

Al fine di mantenere i normali livelli di glucosio nel sangue, la cellula pancreatica deve rilevare le elevazioni nel glucosio e secernere insulina di conseguenza. L'accoppiamento della secrezione di insulina con i livelli di glucosio è direttamente collegato al metabolismo del glucosio e alla produzione di ATP attraverso il fosforonte ossidativo mitocondriale. Così, i mitocondri svolgono un ruolo fondamentale nell'accoppiamento stimolo-secrezione1. La valutazione della funzione mitocondriale a cellule z può rivelare difetti che portano a una compromissione della secrezione di insulina. Anche la secrezione di cellule glucagoniche è strettamente....

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Protocollo

1. Preparazione della cartuccia di micropiastra e sensore il giorno prima dell'esecuzione del saggio

Le isole sono state isolate dai macachi giapponesi di tre anni, come descritto in precedenza13. Questo metodo è molto simile a quello utilizzato per isolare le isole umane dai donatori di cadaveri, ma differisce dai topi, in cui la pancreata è spesso gonfiata con soluzione di collagenasi mentre l'animale è sotto sedazione e prima della rimozione dell'organo. Il recupero dell'Islet è stato condotto in conformità con le linee guida dell'Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) dell'Oregon National Primate Resea....

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Risultati

Per caricare le isole in microplacca, 15 isolotti devono essere aspirati in 15 - L di supporto, come mostrato Figura 1A. Le isole si stabiliranno naturalmente verso il fondo della punta del tubo in pochi secondi. Quindi, la punta del pipet viene abbassata sul fondo del pozzo. La punta è molto leggermente sollevata, e un piccolo volume (circa 5 ) viene convogliato insieme alle isole. Questa tecnica si traduce in un posizionamento coerente dell.......

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Discussione

Lo studio del consumo di ossigeno alle isole è stato in precedenza ostacolato dalla forma sferica delle isole, dalla loro mancanza di aderenza alle superfici di coltura e dal numero di isolotti necessari per ogni pozzo. In questo protocollo, mettiamo in evidenza l'efficacia della micropiastra sferoide da 96 pozzetto per misurare il consumo di ossigeno nelle isole su un piccolo numero di isolotti e dimostriamo una tecnica per la movimentazione e il caricamento delle isole tecnicamente fattibile e che produce Risultati.

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Ringraziamenti

Gli autori desiderano riconoscere il Vanderbilt High Throughput Screening Core per l'uso delle loro strutture, Agilent Biotechnologies, Dr. Paul Kievit (Oregon Health and Science University) per isolazioni di isolotti di primati non umani, e Eric Donahue (Vanderbilt University) per l'assistenza con Figura 1. J.M.E. è stato sostenuto dal NIGMS del National Institutes of Health con il numero di premio T32GM007347. M.G. è stato supportato dal NIH/NIDDK (R24DK090964-06) e dal Department of Veterans Affairs (BX003744).

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Piatto per colture cellulari, 60 mm X 15 mm Corning430166
Adesivo per cellule e tessuti Cell-TakCorning354240
Provetta conica, 50 mLFalcon352070
Destrosio anidroFisher ScientificBP350-1Per soluzione di glucosio, 200 mg/ml, sterile filettato
Serbatoi monouso (sterili), 25 MLVistalab3054-1033per il caricamento di pipette multicanale
EZFlow Sterile 0,45 &; m Filtro per siringa PES, 13 mmFoxx Life Sciences371-3115-OEM
L-glutamminaGibco25030-081200 mM (100x)
Puntali per pipette multicanaleThermoFisher Scientific94410810
Pipetta multicanale, 15-1250 μ LThermoFisher Scientific4672100BTPipette
P20, P200 e P1000Eppendorf2231000602
Sonda di pHHanna InstrumentsHI2210-01
Puntali per pipette, 20 &; L, 200 μ L, 1000 μ LOlympus24-404, 24-412, 24-430
Seahorse XF Base MediaAgilent103334-100
Seahorse XF Cell Mito Stress Test KitAgilent103015-100Include oligomicina, FCCP e Rotenone/Antimicina A
Seahorse XFe96 AnalizzatoreAgilentS7800BInclusa stazione di preparazione con 37 ° Incubatore C senza CO2
Seahorse XFe96 Sferoide Fluxpak MiniAgilent102905-100Include cartuccia sensore, micropiastra sferoidale e calibrante
Bicarbonato di sodioFisher ScientificBP328-500
Piruvato di sodioGibco11360-070100 mM (100x)
StereomicroscopioOlympusSZX9
Siringa (sterile), 5 mLBD309603Per filtrazione sterile
Acqua (sterile)SigmaW3500-500mL
consigliate

Riferimenti

  1. Mulder, H. Transcribing β-cell mitochondria in health and disease. Molecular Metabolism. 6 (9), 1040-1051 (2017).
  2. Maechler, P., Wollheim, C. B. Mitochondrial signals in glucose-stimulated insulin secretion in the beta cell. The Journal of Physiology

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Ristampe e permessi

Tag

Isole pancreatiche di primati non umaniMisurazione del consumo di ossigenoSaggio in microplacca per sferoidiAnalisi della respirazione mitocondrialeTecnica di adesione delle isoleAnalizzatore di flusso extracellulareOligomicina FCCP RotenoneProtocollo di semina delle isoleManipolazione di isole primarieValutazione della funzione mitocondriale