È richiesta un abbonamento a JoVE per visualizzare questo contenuto. Accedi o inizia la tua prova gratuita.

Articolo metodologico

Preparazione di proteine che producono cellule sintetiche utilizzando estratti batterici cell free, liposomi e trasferimento di emulsione

10.8K visualizzazioni

DOI:

10.3791/60829

27 aprile 2020

* These authors contributed equally

In questo articolo

Sommario

Questo protocollo descrive il metodo, i materiali, le attrezzature e i passaggi per la preparazione bottom-up di RNA e proteine che producono cellule sintetiche. Il compartimento acquoso interno delle cellule sintetiche conteneva il lisato batterico S30 incapsulato all'interno di un bistrato lipidico (cioè liposomi stabili), utilizzando un metodo di trasferimento dell'emulsione dell'acqua-in-olio.

Abstract

L'approccio di assemblaggio bottom-up per la costruzione di cellule sintetiche è uno strumento efficace per isolare e studiare i processi cellulari in un ambiente di imitazione cellulare. Inoltre, lo sviluppo di sistemi di espressione senza cellule ha dimostrato la capacità di ricostituire i processi di produzione, trascrizione e traduzione delle proteine (DNA-RNA-proteina) in modo controllato, sfruttando la biologia sintetica. Qui descriviamo un protocollo per la preparazione di un sistema di espressione privo di cellule, compresa la produzione di un potente lisato batterico e incapsulando questo lisato all'interno di vescicle giganti di unilamellar a base di lipidi a base di colesterolo (GUV) (cioè liposomi stabili), per formare cellule sintetiche. Il protocollo descrive i metodi per preparare i componenti delle cellule sintetiche, compresa la produzione di lismi batterici attivi, seguiti da una preparazione dettagliata passo-passo delle cellule sintetiche sulla base di un metodo di trasferimento dell'emulsione acqua-in-olio. Questi facilitano la produzione di milioni di cellule sintetiche in modo semplice e conveniente con un'elevata versatilità per la produzione di diversi tipi di proteine. Le cellule sintetiche ottenute possono essere utilizzate per studiare la produzione e l'attività di proteine/RNA in un ambiente isolato, in evoluzione diretta, e anche come piattaforma di somministrazione controllata di farmaci per la produzione on demand di proteine terapeutiche all'interno del corpo.

Introduzione

Le cellule sintetiche sono particelle artificiali simili a cellule, che imitano una o più funzioni di una cellula vivente, come la capacità di dividere, formare interazioni di membrana e sintetizzare proteine basate su un codice genetico1,2,3. Le cellule sintetiche che racchiudono sistemi di sintesi proteica priva di cellule (CFPS) possiedono un'elevata modularità grazie alla loro capacità di produrre varie proteine e sequenze di RNA dopo alterazioni nel modello di DNA. Presentando un'alternativa interessante agli attuali approcci di produzione di proteine, i sistemi CFPS si ....

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Protocollo

NOTA: l'illustrazione del protocollo di produzione completo delle cellule sintetiche è illustrata nella Figura 1. In base alle esigenze dell'utente, l'espressione proteica (sezione 3.2) e le parti di formazione di cellule sintetiche (sezione 4) del protocollo possono anche essere eseguite in modo indipendente (con alcuni adattamenti).

1. Preparazione di LisaS30-T7

  1. Streak placcare i batteri E. coli BL21(DE3) trasformati con la polimerasi T7 RNA che esprime pAR1219 plasmide su una piastra LB-agar integrata con 50 ampicillina di 50 g/mL per ottenere colonie singole.
  2. Preparare una soluz....

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Risultati

Presentiamo un protocollo per la preparazione di cellule sintetiche incapsulando un sistema S30-T7 CFPS basato su BL21 E. coli all'interno di vescicle lipidiche. Nella figura 2viene presentata una descrizione schematica del processo di preparazione che include un'immagine di ogni fase. Il successo del processo di preparazione delle cellule sintetiche dipende dalle prestazioni appropriate di ogni fase ed eseguito da diversi parametri. Il protocollo deve essere regolato per accogliere.......

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Discussione

Questo protocollo introduce un metodo semplice e conveniente per la produzione di grandi quantità di cellule sintetiche che producono proteine. La resa delle cellule attive dipende da un'attenta e accurata esecuzione del protocollo con particolare attenzione a diversi passaggi critici. Nella sezione di preparazione del lisa di questo metodo, è essenziale raggiungere la densità di batteri appropriata prima della lisi cellulare per ottenere una quantità sufficiente di proteine nel lisato batterico. In secondo luogo, il pro.......

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Ringraziamenti

Questo lavoro è stato supportato da ERC-STG-2015-680242.

Gli autori riconoscono anche il sostegno del Technion Integrated Cancer Center (TICC); il Russell Berrie Nanotechnology Institute; il Lorry I. Lokey Interdisciplinary Center for Life Sciences & Engineering; il Ministero dell'Economia di Israele per una borsa di studio Kamin (52752); Il Ministero israeliano della tecnologia scientifica e dello spazio – Ufficio del Capo Scienziato (3-1878); la Israel Science Foundation (1778/13, 1421/17); l'Associazione europea contro il cancro (2015-0116); la Fondazione tedesco-israeliana per la ricerca scientifica e lo sviluppo di una borsa di studio ....

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
A. Reagenti necessari per la fase 1 (preparazione del lisato S30-T7)
E.coli BL21 (DE3) NEBC2527E.coli BL21 (DE3).
pAR1219SigmaT2076TargeTron vettore per la trasformazione.
Soluzione madre di 50 mg/mL di AmpicillinaSigmaA9518Conservato a -20 °C.
10 g/L di Bacto-triptoneBD Bioscience 211705Per la preparazione della piastra di agar Luria Bertani (LB) (1,5%).
10 g/L di cloruro di sodio (NaCl)Bio-Lab19030591
5 g/L di estratto di Bacto-lievitoBD Bioscience 212750
15 g/L Agar agar purificatoMerck1.01614.5007
50 µ g/mL AmpicillinaSigmaA9518
10 g/L Bacto-triptoneBD Bioscience 211705Per la preparazione di terreni Luria Bertani (LB) (20 mL).
10 g/L di cloruro di sodio (NaCl)Bio-Lab19030591
5 g/L di estratto di Bacto-lievitoBD Bioscience 212750
50 µ g/mL AmpicillinaSigmaA9518
12 g/L Bacto-triptoneBD Bioscience 211705Per la preparazione di terrific broth (TB) (1 L).
24 g/L di estratto di Bacto-LievitoBD Bioscience 212750
4% (v/v) Glicerolo anidroBio-Lab7120501
2,32 g/L K2HPO4Spettro chimicoP1383
12,54 g/L KH2PO4Spettro chimicoP1380
  50 µ g/mL AmpicillinaSigmaA9518
Soluzione madre di 100 mM di isopropil β-D-1-tiogalattopiranoside (IPTG) INALCOINA-1758-1400Filtrato utilizzando 0,2 µ m filtro per siringa in PVDF idrofilo.
Soluzione madre di 0,1 M di ditiotreitolo (DTT) TCID1071Filtrato utilizzando 0,2 µ m filtro per siringa in PVDF idrofilo.
10 mM di tris-acetato a pH = 7,4SigmaT1503S30 tampone lisato (1,5 L)
14 mM di acetato di magnesioMerck1,05819.0250
60 mM di acetato di potassioCarlo Erba470147
1 mM DTTTCID1071
0,5 mL/L 2-mercaptoetanoloSigmaM6250
Attrezzatura necessaria per la fase 1
100 mL sterilizzati Palloni di ErlenmeyerThermo Scientific50-154-28462 palloni
2 L sterilizzati Palloni di Erlenmeyer con deflettoriKIMAX-KIMBLE256302 palloni
Agitatore per incubatore da pavimentoMRCTOU-120-2Incubatore per agitatore da laboratorio 450x450mm, 400 giri/min, 70 ° C
CentrifugaThermo Scientific75004270(75003340) - Fiberlite F10-6 x 100 LEX Rotore ad angolo fisso.
Dovrebbe consentire almeno 13.000 x g.        * Pre-raffreddato a 4 °C.
Omogeneizzatore ad alta pressioneAVESTINEmulsiFlex-C3Pre-raffreddato a 4 °C.
-80oC congelatoreSO-LOWU85-18
Provette di plastica sterilizzate da 1,5 mLEppendorf30120086Preferibilmente pre-raffreddato a -20 °C.
SpettrofotometroTECANIN-MNANOInfinite M200 pro
piastra trasparente a 96 pozzettiThermo Scientific167008
Cilindro graduatosterilizzato Corning
Provette da centrifuga sterilizzateEppendorf30120086Preferibilmente pre-raffreddato a -20 °C.
Puntali per pipette sterilizzatiCorningPreferibilmente pre-raffreddati a -20 °C.
Secchiello per ghiaccio tritatoBel-ArtM18848-4001
Piccolo serbatoio di azoto liquidoNALGENE4150-4000
B. Reagenti necessari per la fase 3 (lipidi nella preparazione della soluzione oleosa):
1-palmitoil-2-oleyl-sn-glycero-3-phosphocholine (POPC)Lipoid556400
Powder CholesterolSigmaC8667Polvere
CloroformioBio-Lab3082301
Olio mineraleSigmaM5904Olio leggero
Attrezzatura necessaria per il passaggio 2
Vortex mixerIndustrie scientificheSI-0256
Blocco riscaldanteTECHNEFDB03ADPreriscaldato a 80 °C.
Dovrebbe consentire la temperatura controllata.
Fiale di vetro con collo a vite da 2 mLInnovazioni analitiche CSIVT009M-1232Per una scala più ampia, utilizzare falcon da 50 mL ed evaporare il cloroformio utilizzando l'evaporatore rotante.
Tappo a vite da 9 mmCSI Analytical InnovationsC395R-09LC
strong>C. Reagenti necessari per la fase 3 (miscele interne e di reazione di alimentazione):
HEPESSpectrumH10891 M HEPES-KOH (pH = 8) - tampone pH
Idrossido di potassio (KOH)Frutarom55290
1 M Acetato di magnesioMerck1.05819.0250Cofattore e stabilizzatore di carica negativa.
1 M Acetato di potassioCarlo Erba470147Stabilizzatore a carica negativa.
5.2 M Acetato di ammonioMerck1.01116.1000Stabilizza la carica negativa.
50% (p/v) Polietilenglicole 6000 (PEG)Merck8.07491.1000Aumenta la concentrazione delle macromolecole.
0,5 M 3-fosfoglicerato (3-PGA)SigmaP8877Fonte di energia secondaria.
50 mM Miscela di aminoacidi ISigmaLAA21-1KTAdditivo di aminoacidi.
Contiene: 50 mM di ciascuno dei seguenti 17  aminoacidi naturali - alanina, arginina, asparagina, acido aspartico, cisteina, glutammina, acido glutammico, glicina, istidina, isoleucina, leucina, lisina, metionina, prolina, serina, treonina e valina.
50 mM Miscela di aminoacidi IISigmaLAA21-1KTAdditivo di aminoacidi.
Contiene: 50 mM di ciascuno dei seguenti 3 aminoacidi naturali: triptofano, fenilalanina e tirosina.
100 mM Adenina trifosfato (ATP)SigmaA3377Nucleotidi e fonte di energia.
50 mM Guanidina trifosfato (GTP)SigmaG8877Nucleotidi e fonte di energia.
100 mM di uridina trifosfato (UTP)ACROS ORGANICS226310010additivo per nucleotidi.
100 mM Isopropil β-D-1-tiogalattopiranoside (IPTG)INALCOINA-1758-1400Induzione dell'espressione genica.
2 M SaccarosioJ.T. Baker1933078Generazione di un gradiente di densità.
2 M GlucosioSigma16301Generazione di un gradiente di densità.
H2O Acqua UltraPura (UPW)Bio-Lab2321777500DNasi &
Lisato S30-T7__Preparato al passaggio 1.                                                                                                                                             Fonte di trascrizione & translation components.
Memorizza a -80 ° c, scongelare sul ghiaccio schiantato appena prima dell'uso.
Stock di plasmidi di DNA a scelta__Contiene la sequenza per la proteina richiesta.
Sotto T7 promotore
D. Attrezzatura necessaria per la fase 4 (preparazione di cellule sintetiche)
Agitatore per incubatore da pavimento o ThermomixerMRCTOU-120-2Incubatore per agitatore da laboratorio 450x450mm, 400rpm, 70 gradi; C
PHMT Grant Bio PSC18Thermomixer
CentrifugaThermo Scientific75004270(75003629) - TX-400 4 x 400mL Rotore a secchio oscillante.
Adatto per provette da 15 mL.
Preferibilmente secchi oscillanti.
Dovrebbe consentire almeno 1000 x g.
Pre-raffreddato a 4 °C.
Centrifuga da tavoloThermo Scientific75002420(75003424) - 24 x 1,5/2,0mL rotore con ClickSeal.
Adatto per fiale Eppendorf.
Pre-raffreddato a 4 °C.
Miscelatore a vorticeScientific industriesSI-0256
Secchiello per ghiaccio tritatoBel-ArtM18848-4001
Fiale di vetro con collo a vite da 2 mLInnovazioni analitiche CSIVT009M-1232
Provette di plastica sterili da 15 mLThermo Scientific339651
Provette di plastica sterilizzate da 1,5 mLEppendorf30120086
Puntali per pipette sterilizzatiCorningSterilizzato in autoclave.
< libero da RNasi

Riferimenti

  1. Blain, J. C., Szostak, J. W. Progress toward synthetic cells. Annual review of biochemistry. 83, 615-640 (2014).
  2. Richmond, D. L., et al. Forming giant vesicles with controlled membrane composition, asymmetry, and contents. Procee....

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Ristampe e permessi

Tag

Estratti cell freeproduzione di proteineincapsulamento in liposomimetodo di trasferimento per emulsionepreparazione di lisato battericoanalisi tramite citometria a flussorilevamento tramite Western blotmicroscopia a fluorescenzaliposomi ricchi di colesterolo