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Articolo metodologico

Isolamento dei progenitori dei megacariociti di topo

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DOI:

10.3791/62498

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20 maggio 2021

In questo articolo

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Sommario

Questo metodo descrive la purificazione mediante citometria a flusso di MEP e MKp da topi femori, tibie e ossa pelviche.

Abstract

I megacariociti del midollo osseo sono grandi cellule poliploidi che assicurano la produzione di piastrine nel sangue. Derivano da cellule staminali ematopoietiche attraverso la megacariopoiesi. Le fasi finali di questo processo sono complesse e coinvolgono classicamente i progenitori bipotenti megacariociti-eritrociti (MEP) e i progenitori unipotenti dei megacariociti (MKp). Queste popolazioni precedono la formazione di megacariociti in buona fede e, come tali, il loro isolamento e caratterizzazione potrebbero consentire l'analisi robusta e imparziale della formazione di megacariociti. Questo protocollo presenta in dettaglio la procedura per raccogliere cellule ematopoietiche dal midollo osseo di topo, l'arricchimento dei progenitori ematopoietici attraverso l'esaurimento magnetico e infine una strategia di selezione cellulare che produce popolazioni MEP e MKp altamente purificate. In primo luogo, le cellule del midollo osseo vengono raccolte dal femore, dalla tibia e anche dalla cresta iliaca, un osso che contiene un numero elevato di progenitori ematopoietici. L'uso di ossa della cresta iliaca aumenta drasticamente il numero totale di cellule ottenute per topo e contribuisce quindi a un uso più etico degli animali. Un esaurimento del lignaggio magnetico è stato ottimizzato utilizzando perle magnetiche a 450 nm che consentono una selezione cellulare molto efficiente mediante citometria a flusso. Infine, il protocollo presenta la strategia di etichettatura e gating per la cernita delle due popolazioni progenitrici di megacariociti altamente purificate: MEP (Lin-Sca-1-c-Kit+CD16/32-CD150+CD9dim) e MKp (Lin- Sca-1-c-Kit+CD16/32-CD150+CD9bright ). Questa tecnica è facile da implementare e fornisce materiale cellulare sufficiente per eseguire i) caratterizzazione molecolare per una conoscenza più approfondita della loro identità e biologia, ii) saggi di differenziazione in vitro, che forniranno una migliore comprensione dei meccanismi di maturazione dei megacariociti, o iii) modelli in vitro di interazione con il loro microambiente.

Introduzione

Le piastrine del sangue sono prodotte dai megacariociti. Queste grandi cellule poliploidi si trovano nel midollo osseo e come per tutte le cellule del sangue sono derivate da cellule staminali ematopoietiche (HSC)1. La via classica di produzione dei megacariociti nel midollo osseo ha origine da HSC e prevede la generazione di diversi progenitori che limitano progressivamente il loro potenziale di differenziazione2. Il primo progenitore che firma l'impegno per la linea megacariocitica è il Megakaryocyte-Erythrocyte Progenitor (MEP), un progenitore bipotente in grado di produrre sia cellule eritroidi che megacariociti

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Protocollo

I protocolli che coinvolgono animali sono stati eseguiti in conformità con il Comitato CREMEAS per l'etica degli esperimenti sugli animali dell'Università di Strasburgo (Comité Régional d'Ethique en Matière d'Expérimentation Animale Strasbourg). Numero di permesso: E67-482-10).

1. Raccolta delle ossa del mouse

  1. Sacrificare l'animale nel rispetto delle linee guida istituzionali.
    NOTA: I dati presentati in questo manoscritto sono stati ottenuti da topi C57Bl/6 di età da 8 a 12 settimane. Il numero di cellule ottenute e la frequenza delle popolazioni citate possono variare con l'età e il ceppo di topo.
  2. Spruzzare il corpo ....

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Risultati

L'analisi fenotipica delle cellule identificate come MEP e MKp è stata eseguita mediante citometria a flusso. Le cellule sono state etichettate con anticorpi coniugati a fluorescenza contro CD41a e CD42c, marcatori classici delle linee megacariocitiche e piastriniche. Entrambi i marcatori sono stati espressi dalle cellule della popolazione MKp mentre questi marcatori non sono ancora stati rilevati sulla superficie delle cellule della popolazione MEP (Figura 4Ai,4Aii). La pol.......

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Discussione

Il metodo descritto in questo articolo consente l'estrazione e la purificazione di MEP e MKp di topo. Un parametro importante nell'ottimizzazione del protocollo è stato quello di ottenere un numero sufficiente di cellule che sarebbe stato compatibile con la maggior parte dei saggi molecolari e cellulari. La pratica generale della raccolta delle ossa di topo per l'estrazione delle cellule ematopoietiche di solito consiste nella raccolta sia dei femori che delle tibie di ciascun topo. L'osso pelvico, un'altra fonte di mate.......

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Dichiarazioni

Gli autori non dichiarano interessi finanziari concorrenti.

Ringraziamenti

Gli autori desiderano ringraziare Monique Freund, Catherine Ziessel e Ketty per l'assistenza tecnica. Questo lavoro è stato sostenuto da ARMESA (Association de Recherche et Développement en Médecine et Santé Publique), e da Grant ANR-17-CE14-0001-01 a Henri.de la. Salle.

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Aghi calibro 21BD Microlance301155
7AADSigma-AldrichA9400
Anticorpo Gr-1-biotinaeBioscience13-5931-85Deplezione magnetica
Anticorpo B220-biotinaeBioscience13-0452-85deplezione magnetica
Mac-1-biotinaeBioscience13-0112-85Magnetico deplezione
Anticorpo CD3e-biotinaeBioscience13-0031-85Deplezione magnetica
Anticorpo CD4-biotinaeBioscience13-9766-82Deplezione magnetica
Anticorpo CD5-biotinaeBioscience13-0051-85deplezione magnetica
CD8a-biotinaeBioscience13-0081-85Anticorpo a deplezione magnetica
TER119-biotinaeBioscience13-5921-85deplezione magnetica
CD127-biotinaeBioscience13-1271-85deplezione magnetica
CD45-FITCeBioscience11-0451-85Anticorpo di selezione cellulare
CD45-PEeBioscience12-0451-83Anticorpo di smistamento cellulare
TER119-APCeBioscience17-5921-83Smistamento cellulare
Anticorpo CD45-PECy7eBioscience25-0451-82Selezione cellulare
Anticorpo CD45-biotinaeBioscience13-0451-85Selezione cellulare
Anticorpo CD9-FITCeBioscience11-0091-82Selezione cellulare
Anticorpo  c-kit-APCeBioscience17-1171-83Selezione cellulare
Anticorpo Sca-1-PEeBioscience12-5981-83Selezione cellulare
Anticorpo CD16/32-PEeBioscience12-0161-83Selezione cellulare
Anticorpo CD150-PECy7eBioscience25-1502-82Selezione cellulare Terreno di
coltura StemSpan-SFEMTecnologie delle cellule staminali#09650
Cuscinetto di dissezioneFisher Scientific10452395
DPBSLife Technologies14190-094
EtanolovWR Chemicals83813.360
PinzeEuronexiaP-120-AS
Pipetta pasteur in vetroDutscher42011
Magnete :  DynaMag-5Thermo Fisher Scientific12303D
Perline magnetiche: Dynabeads IgG anti-rattoThermo Fisher Scientific11035
MegacultStemcell technologies#04970
MethoCult SF M3436Stemcell technologies#03436
Siero di vitello neonatoDutscher50750-500
Lisi dei globuli rossi soluzioneBD Bioscience555899
BisturiFisher Scientific12308009
ForbiciEuronexiaC-165-ASB
Siringhe sterili da 1 mLBD Bioscience303172
Provette sterili da 15 mlSarstedt62.554.502
Provette sterili da 5 ml in polipropileneFalcon352063
Provette sterili in polistirene da 5 mlFalcon352054
Provette sterili con 70µ Tappo del filtro cellulare Capsuladi Petri sterile Falcon352235
Falcon353003
Streptavidina-APC-Cy7BD Biosciences554063Selezione cellulare
Rullo portaprovetteBenchmark ScientificR3005
Anticorpo a Anticorpo Anticorpo a Anticorpo a

Riferimenti

  1. Kaushansky, K. Historical review: megakaryopoiesis and thrombopoiesis. Blood. 111 (3), 981-986 (2008).
  2. Akashi, K., Traver, D., Miyamoto, T., Weissman, I. L. A clonogenic common myeloid progenitor that gives rise to all myeloid lineages. Nature. 404 (6774), 193-197 (....

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Ristampe e permessi

Errata corrige


Formal Correction: Erratum: Isolation of Mouse Megakaryocyte Progenitors
Posted by JoVE Editors on 7/28/2021. Citeable Link.

An erratum was issued for: Isolation of Mouse Megakaryocyte Progenitors. A figure was updated.

Figure 2 was updated from:

Hematopoietic cell separation diagram with flow cytometry result, showing Lin+ and Lin- fractions.
Figure 2: Magnetic depletion of lineage committed (Lin) cells. (A) Schematic representation of the magnetic depletion protocol. First, unsorted bone marrow cells are labeled with the biotin-conjugated rat anti-mouse antibody cocktail. Cells are then incubated with anti-rat Ig coated magnetic beads and subsequently subjected to the magnetic depletion using a strong magnet. The magnet will retain the labeled magnetic Lin+ fraction against the tube walls, while the unlabeled non-magnetic Lin- negative fraction will be collected in a new tube. (B) Lineage committed cells can be identified using fluorescent conjugated streptavidin. Typical analysis of the lineage expression in cells prior to magnetic depletion (total bone marrow) and after magnetic depletion (Lin- Fraction) N = 21. Please click here to view a larger version of this figure.

to:

Hematopoietic cell separation process diagram with antibody labeling and magnet use, flow cytometry results.
Figure 2: Magnetic depletion of lineage committed (Lin) cells. (A) Schematic representation of the magnetic depletion protocol. First, unsorted bone marrow cells are labeled with the biotin-conjugated rat anti-mouse antibody cocktail. Cells are then incubated with anti-rat Ig coated magnetic beads and subsequently subjected to the magnetic depletion using a strong magnet. The magnet will retain the labeled magnetic Lin+ fraction against the tube walls, while the unlabeled non-magnetic Lin- negative fraction will be collected in a new tube. (B) Lineage committed cells can be identified using fluorescent conjugated streptavidin. Typical analysis of the lineage expression in cells prior to magnetic depletion (total bone marrow) and after magnetic depletion (Lin- Fraction) N = 21. Please click here to view a larger version of this figure.

Tag

Isolamento del midollo osseodeplezione magneticacitometria a flussosmistamento cellulareprogenitori ematopoieticiprogenitori megacariocito-eritrocitidifferenziamento in vitromarcatore CD41formazione di piastrine