Articolo metodologico

Applicazione combinata di colloide zolfoso tecnezio-99m e colorante blu per la rilevazione dei linfonodi sentinella nel cancro al seno in fase iniziale

DOI:

10.3791/69027

19 dicembre 2025

In questo articolo

Sommario

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Questo articolo descrive in dettaglio il protocollo di mappatura dei linfonodi sentinella (SLN) con l'applicazione combinata di colloide zolfoso tecnezionale-99m (99mTc-SC) e blu di metilene, inclusa la preparazione di 99mTc-SC, iniezione di farmaci, acquisizione e ricostruzione dell'immagine, mappatura del blu di metilene e localizzazione intraoperatoria delle SLN.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

La biopsia dei linfonodi sentinella (SLNB) è la procedura standard per la stadiazione dei linfonodi ascellari nelle pazienti con tumore al seno, e la sua applicazione ha prevenuto la dissezione inutili dei linfonodi ascellari (ALND) nei tumori al seno in stadio iniziale negli ultimi decenni. Una localizzazione accurata dei linfonodi sentinella (SLN) aiuta a migliorare il tasso di successo della SLNB. La tecnica a doppio tracciante (radiocolloide più colorante blu) per la mappatura SLN migliora significativamente il tasso di identificazione rispetto ai metodi a tracciante singolo. Il radiocolloide più ampiamente adottato è il 99mTc-SC, e il blu di metilene è ampiamente utilizzato nella mappatura visiva. Tuttavia, studi precedenti hanno rilevato che il tasso di identificazione dell'imaging SLN varia significativamente, il che può essere strettamente legato al processo di preparazione e all'esperienza dell'operatore. La standardizzazione del protocollo di mappatura SLN è cruciale per massimizzare il tasso di identificazione e minimizzare i risultati falsi negativi. Questo articolo fornisce un processo dettagliato utilizzando 99mTc-SC combinato con blu di metilene per la mappatura SLN nel cancro al seno in fase iniziale, incluse procedure per la preparazione di 99mTc-SC, iniezione, acquisizione di immagini SLN, mappatura del blu di metilene e localizzazione intraoperatoria.

Introduzione

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Nel cancro al seno in stadio iniziale, solo una minoranza dei casi presenta metastasi dei linfonodi ascellari. Per questi pazienti, la dissezione dei linfonodi ascellari (ALND) non offre benefici aggiuntivi di sopravvivenza e può portare a gravi complicazioni come il linfedema dell'artosuperiore 1,2. Il linfonodo sentinella (SLN) è definito come il linfonodo "prima stazione" che riceve drenaggio linfatico dal tumoreal seno 3. Se la SLN non mostra metastasi, la probabilità di metastasi nei linfonodi a valle è estremamentebassa 4. Secondo le linee guida del 2021 intitolate Gestione dell'Ascella nel Cancro al Seno in Stadio Precoce: Ontario Health (Cancer Care Ontario) e la GuidaASCO 1, le pazienti con risultati negativi della biopsia dei linfonodi sentinella (SLNB) possono essere risparmiate dall'ALND, mentre quelle con 1-2 SLN metastatici possono evitare l'ALND in condizioni specifiche. Gli studi hanno dimostrato che la SLNB risparmia circa il 70% delle pazienti in fase iniziale di cancro al seno da ALND 5,6,7 non necessaria. Pertanto, la rilevazione della SLN svolge un ruolo cruciale nel determinare la necessità dell'ALND, migliorando significativamente la qualità della vitapostoperatoria 1.

Studi diversi hanno esplorato la biopsia dei linfonodi guidata da ultrasuoni per determinare la metastasi nodale in pazienti con cancro al seno, ma questo metodo produce un alto tasso di falsi negativi (FNR) del 6,4%-40,8%4. Inoltre, la necessità della presenza di un ecografista esperto durante l'operazione pone sfide significative per un'implementazione clinica diffusa. Sono disponibili diversi traccianti per la mappatura SLN nel cancro alseno 8,9,10, coloranti radiocolloidi e/o blu, fluoresceina, verde di indocyanina (ICG) e iniezione di cloridrato di mitosxantrone. Tausch et al. hanno riportato un tasso di identificazione (IR) dell'82% con il solo colorante blu, dell'85% con il solo radiocolloide e del 94% quando sono stati utilizzati doppi traccianti (radiocolloide più colorante blu) 11. Una meta-analisi di 13 studi ha rivelato una resistenza interrresistente comparabile per radiocolloidi (96%) e colorante blu (96%), mentre la combinazione ha raggiunto il 97%12. La somministrazione combinata di tracce riduce significativamente i tassi di falsi negativi (FNR), con approcci solo a radiocolloidi che mostrano FNR del 16%-20,3% contro il 5,2%-10,8% per il doppiotracciatore 13,14,15,16,17. La fluoresceina non è inferiore a 99mTc-SC ed è più conveniente. Tuttavia, la scarsa penetrazione tissutale ne limita l'applicazione nel rilevamento di SLNpiù profonde 18. L'ICG dimostra un'efficacia diagnostica paragonabile a 99mTc-SC, rendendolo particolarmente adatto a istituzioni prive di risorse di medicinanucleare 19,20. Tuttavia, la sua efficacia è bassa nei pazienti con BMI > 30 o tumoricentralmente localizzati 21. Alcuni studi hanno confermato che la prestazione diagnostica dell'iniezione di cloridrato di mitoxantrone è simile a quella di 99mTc-SC per la mappaturaSLN 8,10. Tuttavia, il numero limitato di studi richiede ulteriori convalidazioni cliniche.

Sebbene negli ultimi decenni siano disponibili molti agenti di imaging per rilevare le SLN, le linee guida raccomandano ancora la combinazione di radiocolloide e colorante blu per la localizzazione della SLN nel cancro al seno, grazie alla sua elevata efficacia diagnostica, al sostanziale supporto medico basato su evidenze e alle minime reazioni avversegravi 1,20,22. Gli agenti alternativi sono la fluoresceina o l'ICG senza il supporto di un reparto di medicina nucleare. 99mIl Tc-SC è il radiocolloide più comunemente utilizzato. Rispetto ad altri coloranti blu, il blu di metilene è più comunemente usato nella maggior parte dei centri in Asia23, perché dimostra un'efficacia di localizzazione SLN simile a quella del blu di isosulfano o blu patentato, ma è più conveniente.

La RI segnalata di SLN con solo radiocolloide o colorante blu differisce significativamente (dal 69,8% al 90,8%) tra gli studi e dipende fortemente dai protocolli procedurali e dall'esperienzadell'operatore 9,12,13,24. Pertanto, procedure operative standardizzate sono fondamentali per garantire la coerenza delle relazioni internazionali. Attualmente sono disponibili diversi protocolli, il che complica gli sforzi di standardizzazione. Il primo è il tempo di riscaldamento durante la preparazione di 99mTc-SC. Gli studi hanno dimostrato che una riduzione del riscaldamento di 3 min può migliorare l'efficienza di sintesi di 99mTc-SC 25. 99mIl Tc-SC preparato con un riscaldamento ridotto di 3 minuti aveva una purezza radiochimica (RCP) comparabile al riscaldamento standard di 5 minuti (entrambi >92%) a 0 ore e 6ore e 26. Inoltre, un Tc-SC a 99 mdi 3 minuti di riscaldamento ha mostrato una maggiore ritenzione dei linfonodi, a 24 oree 27. Pertanto, consideriamo il protocollo di riscaldamento a 3 minuti superiore. In secondo luogo, sono raccomandate iniezioni periareolari e peritumorali per la somministrazione di Tc-SC al 99m. Gli studi dimostrano che l'iniezione periareolare presentava una resistenza all'insulina più alta per la SLN ascellare rispetto all'iniezione peritumorale (99,3% contro 91,1%, P < 0,001)28. La tecnica periareolare è tecnicamente più semplice e mostra vantaggi particolari per tumori o lesioni non palpabili nel quadrante esterno superiore, principalmente prevenendo il fenomeno del "shine-through"29. Inoltre, l'iniezione periareolare copre naturalmente il drenaggio linfatico da tutti i quadranti mammari, potenzialmente riducendo il tasso di mancata rilevazione delle SLN e rivelandosi particolarmente benefica nei tumorimultifocali 30,31. Pertanto, consideriamo l'iniezione periareolare più vantaggiosa.

In questo articolo abbiamo adottato un protocollo a doppio tracciatore di Tc-SC preoperatorio 99m(iniezione periareolare) combinato con blu di metilene intraoperatorio (iniezione periareolare). 99mIl Tc-SC è stato preparato utilizzando un protocollo di riscaldamento ridotto di 3 minuti.

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Protocollo

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Questo studio è stato approvato dal Clinical Research Approval Committee del First Affiliated Hospital, Zhejiang University School of Medicine [2025B] IIT Ethics Approval No.0125. È stato ottenuto il consenso informato scritto da tutti i soggetti. L'intera procedura di sintesi deve essere condotta all'interno di una cappa fumi. Il pannello in vetro piombo della cappa fornisce schermatura contro le radiazioni, mentre il suo design a flusso d'aria a pressione negativa impedisce la dispersione di aerosol radioattivi o volatili, evitando così l'inalazione da parte del personale. Smaltire fiale, siringhe e aghi in un contenitore di rifiuti radioattivi da 99m di Tc in conformità con le normative pertinenti. Gli altri materiali dovrebbero essere gestiti come rifiuti medici normali. Mantenere la protezione contro le radiazioni e la privacy del paziente durante tutto il processo.

1. Selezione dei pazienti

NOTA: Secondo le linee guida del 2021 intitolate Gestione dell'ascella nel cancro al seno in fase iniziale: Ontario Health (Cancer Care Ontario) e le linee guida ASCO, le pazienti in stadio iniziale di cancro al seno che richiedono localizzazione SLN sono identificate dal chirurgo1. La mappatura SLN di 99mTc-SC è stata eseguita 3-18 ore prima dell'intervento.

  1. Stabilire i seguenti criteri di inclusione: (1) Cancro al seno in stadio iniziale con linfonodi ascellari clinici (ALN) negativi (cN0). cN0 è definito come risultati negativi nell'esame clinico e nell'imaging di image, oppure ALN è risultata patologicamente negativa tramite biopsia guidata da ultrasuoni con ago. (2) ALN negativa dopo terapia neoadiuvante nei pazienti con cN0. (3) Metastasi ALN confermata tramite biopsia nei pazienti con cN1 e clinicamente negativa dopo la terapia neoadiuvante.
  2. Stabilisci i seguenti criteri di esclusione: (1) Cancro infiammatorio al seno. (2) Pazienti con ALN metastatico confermata tramite biopsia senza terapia neoadiuvante. (3) Pazienti con metastasi ALN positiva e ancora positivi dopo la terapia neoadiuvante.

2. Preparazione del 99mTc-SC

  1. Preparativi necessari prima dell'etichettatura del 99mTc-SC
    1. Preordina il kit del prodrug composto da tre fiale: Fiala A contenente 2,0 mL di acido cloridrico (HCl) 0,15 mol/L; Fiala B contenente 2,0 mL di una soluzione tampone composta da 49,2 mg di fosfato di diidrogeno di sodio (NaH 2PO4) e 15,8 mg di idrossido di sodio (NaOH); Fiala C, un prodotto liofilizzato contenente una polvere bianca solubile in acqua composta da 2,0 mg di tiosolfato di sodio (Na2S2O3), 2,3 mg di edetato disodico (Na2EDTA) e 18,1 mg di gelatina. Conserva il kit in un frigorifero a 4 °C.
    2. Scongelare il kit: Rimuovilo 1 ora prima della preparazione del farmaco per raggiungere la temperatura ambiente.
    3. Ordinare il tecnezio-99m il giorno dell'immaginio: Assicurarsi che l'iniezione di tecnezio-99m sia eluita da un generatore Mo-Tc entro 24 ore e sia priva di agenti ossidanti.
    4. Preparazione del bagno d'acqua: riempire il bagno d'acqua con acqua sufficiente e riscaldarlo a 100 °C, mantenendo uno stato di ebollizione.
      NOTA: Il pertecnetato di sodio ordinato [99mTc] richiede un'attività sufficiente per compensare la perdita di sintesi, e si raccomanda un'attività di 185 MBq per paziente per la prescrizione, con un volume totale di 0,5-1 mL. Durante la preparazione per più pazienti, il dosaggio totale di 99 mdi Tc deve essere aumentato in base al numero di pazienti, con un volume totale non superiore a 1 mL e una concentrazione radioattiva non superiore a 18,5 GBq/mL.
  2. Processo di etichettatura
    1. Preparare l'iniezione di 99mTc-SC in condizioni di protezione dalle radiazioni, tipicamente in una cappa a pompa. In condizioni asettiche, iniettare un'iniezione di pertechnetato di sodio [99mTc] nella Fiala C. Agitare accuratamente per sciogliere la polvere liofilizzata e lasciarla riposare per 5 minuti.
      NOTA: Eseguire tutte le operazioni in condizioni asettiche e disinfettare prima di ogni prelievo della soluzione. Se i tamponi disinfettanti sono contaminati con radionuclidi, smaltili come rifiuti radioattivi. Assicurati che l'aria venga espulsa rigorosamente quando iniettano 99mTc nelle fiale del kit. Mantieni la pressione negativa nelle fiale fino all'ultimo passaggio del ritiro della soluzione.
    2. Preleva 1,5 mL di soluzione dalla fiala A e iniettala nella fiala della reazione. Mescola bene e lascia riposare altri 5 minuti per ottenere la miscela D.
    3. Bagno d'acqua bollente: Inserire la fiala contenente la miscela D nel bagno-maria e riscaldare per 3 minuti (Figura 1A).
      NOTA: Il tempo di riscaldamento non deve superare i 3 minuti, poiché un riscaldamento prolungato può ridurre significativamente la percentuale di particelle < 0,2 μm 99mTc-SC 25,26,27. Usa le pinze per maneggiare le fiale dopo la bollitura per prevenire ustioni.
    4. Prepara la miscela E: Rimuovi la fiala contenente la miscela D e lasciala raffreddare per 2-5 minuti. Poi, preleva 1,5 mL di soluzione dalla fiala B e iniettala nella fiala contenente la miscela D. Mescola accuratamente per ottenere la miscela E. Usa una siringa da 5 mL per prelevare l'intera miscela E.
    5. Filtrazione: Attacca un filtro dedicato alla siringa. Rimetti l'ago e inseriscilo in una bottiglia sottovuoto. Filtrare lentamente la miscela E senza applicare pressione per ottenere la soluzione Tc-SC a 99m(Figura 1B).
  3. Preparazione dell'iniezione finale:
    1. Usa una siringa da 2 mL per prelevare la soluzione Tc-SC da 99m. Assicurarsi che ogni paziente riceva 37-55,5 MBq in un volume totale di 0,4-1,0 mL, preferibilmente vicino a 0,1 mL per sito, per minimizzare il disagio da iniezione. Dopo aver prelevato la soluzione, sostituire l'ago con un ago calibro 4,5 (26 G) per l'somministrazione.
      NOTA: Una dose totale iniettata di 37 MBq è generalmente consideratasufficiente 32.

3. Controllo qualità del 99mTc-SC

NOTA: Una piccola aliquota del radiofarmaco viene aspirata in una siringa per i test di controllo qualità prima dell'uso.

  1. Proprietà fisicochimiche
    1. Confermare che l'iniettato preparato sia una sospensione coloidale stabilizzata con gelatina, sterile e priva di pirogeni, adatta all'amministrazione endovenosa. Secondo i requisiti della Farmacopea degli Stati Uniti (USP)33, assicurarsi che il pH vari tra 4,5 e 7,5.
      NOTA: Il valore di pH di 99mTc-SC sintetizzato in questo studio era di ~6,0.
  2. Purezza radiochimica (RCP)
    1. Eseguire la determinazione della purezza radiochimica (RCP) di campioni di 0 h e 6 h sia dai protocolli di riscaldamento a 3 minuti che a 5 minuti in conformità con i requisiti dellaUSP 33.
      1. Prelevare un'iniezione di Tc-SC da 0,1 mL 99mdi 3 minuti di riscaldamento e 5 minuti di riscaldamento a 0 h e 6 ore dopo la preparazione, poi diluirlo adeguatamente (circa 1:10).
      2. Individuare le iniezioni diluite usando un tubo capillare da 10 μL su una striscia di carta cromatografica (25 mm × 300 mm), in un punto circa 20 mm da un'estremità, e poi lasciare asciugare.
      3. Utilizzando l'85% di metanolo come fase mobile, sviluppare il cromatogramma tramite la cromatografia ascendente su un periodo adeguato e asciugare.
      4. Determinare la distribuzione radioattiva sul cromatogramma scansionando con uno scanner radioattivo. Calcola il RCP usando la formula: RCP = 100% - (% pertechnetate libero).
        NOTA: Un valore RCP superiore al 92% è stato considerato accettabile (Figura 2). Se il RCP è inferiore al 92% o qualsiasi altro parametro di controllo qualità non rispetta gli standard, l'iniezione deve essere ripreparata incondizionatamente e sottoposta a test di riqualificazione fino a quando tutte le specifiche non saranno soddisfatte.

4. Preparazione e somministrazione del paziente di 99mTc-SC

  1. Confermare l'identità del paziente, il numero della cartella clinica, la diagnosi e la localizzazione preoperatoria del tumore al seno (tipicamente indicata dal chirurgo).
  2. Informare il paziente della procedura di mappatura del linfonodo sentinella (SLN), inclusi il potenziale dolore per iniezione, i siti di iniezione e la tempistica per l'imaging.
  3. Misurare la dose radioattiva di 99mTc-SC prima dell'iniezione a ciascun paziente (Figura 3A) per garantire una dose ragionevole, in modo da ottenere un'eccellente imaging e il minor danno possibile da radiazioni. Assicurarsi che ogni paziente riceva una dose totale iniettata di 37 MBq in un volume totale di 0,4 mL32. Disinfettare la pelle con tamponi iodri, poi somministrare 99mTc-SC tramite iniezione sottocutanea nella regione periareolare (posizioni 3, 6, 9 e 12) del seno interessato (Figura 3B).
  4. Applica pressione sul punto di iniezione con un cotton fion sterile per 5 minuti. Dopo l'emostasi, istruire la paziente a eseguire un delicato massaggio al seno per migliorare il drenaggio linfatico e ad attendere nell'area di contenimento per le immaginisuccessive 32.
    NOTA: Durante l'iniezione di 99mTc-SC, utilizzare schermi di piombo per ridurre l'esposizione alle radiazioni.

5. Acquisizione e ricostruzione dell'immagine

  1. Per l'acquisizione dell'immagine32, iniziare l'imaging ~30 minuti dopo l'iniezione (di solito tra 20 e 40 minuti) con SPECT/TC.
    1. Chiedi al paziente di assumere una posizione supino e un decubito laterale (lato iniettato adiacente al rilevatore), con le braccia abdotte e le mani posizionate vicino alla testa.
    2. Utilizzare i seguenti parametri di imaging planare: modalità H, collimatore ad alta risoluzione (LEHR) a bassa energia, fotopicco a 140 keV con finestra ±10%, matrice 256 × 256, ZOOM 1.0, conteggi da 300K, campo visivo che va dalla regione sopraclavicolare al diaframma.
    3. Eseguire immediatamente l'imaging per fusione Tomo se le SLN vengono visualizzate tramite imaging planare. In caso contrario, eseguire imaging ritardato a 1 ora dopo l'iniezione utilizzando i seguenti parametri di imaging per fusione Tomo: collimatore LEHR, fotopicco a 140 keV, finestra ±10%, matrice 128 × 128, ZOOM 1.0, 60 proiezioni (intervalli di 6°, 16 s/fotogramma). Parametri CT: 120 kV, 150 mA, spessore di taglio 2,5 mm.
  2. Per la ricostruzione delle immagini, elabora le immagini su una workstation per generare dataset SPECT/CT planari e fusi. Localizza le SLN su immagini fuse e misura le dimensioni nodali dell'asse lungo.
  3. Se le SLN non sono visualizzate nell'imaging Tc-SC a 99m, si escludono innanzitutto i fattoricorreggibili 32.
    1. Riconfermare con il personale infermieristico che l'iniezione è stata somministrata sottocutaneamente nella regione periareolare piuttosto che in profondità nel tessuto ghiandolare (se errato, iniettare nuovamente 99mTc-SC).
    2. Controlla la presenza di compressione locale nel sito di iniezione, che potrebbe compromettere il drenaggio linfatico. Se presente, rilasciare immediatamente la compressione e istruire i pazienti a massaggiare delicatamente il seno per favorire il flusso linfatico.
    3. In alcuni pazienti con drenaggio linfatico lento, estendere il tempo di imaging a 2 ore e, se negativo, eseguire un'ulteriore imaging preoperatorio 2 ore prima dell'intervento, entro 24 ore dall'iniezione34,35. Se la SLN è ancora negativa dopo questi passaggi, usa il blu dimetilene 36.

6. Mappatura intraoperatoria del blu di metilene e identificazione SLN

  1. Il giorno dell'intervento (entro 24 ore dalla somministrazione della radiofarmacia): iniettare 1 mL di blu di metilene nel tessuto sottocutaneo alla posizione periareolare delle 3, 6, 9 e 12 in punto,20, 29.
  2. Dopo 10-15 minuti, traccia i canali linfatici colorati di blu per localizzare le SLN.
  3. Confermare le SLN utilizzando un sistema di rilevamento gamma (segnale positivo: il nodo più caldo e qualsiasi altro nodo caldo con più del 10% del numero di nodi più caldo).
  4. Eliminare le SLN per l'analisi delle sezioni congelate e assicurarsi che la gestione chirurgica finale sia guidata dai risultati patologici della SLN.
    NOTA: Se il metodo dual-tracer non può localizzare le SLN, si può tentare un terzo tracer, come ICG. Tuttavia, nella maggior parte dei casi, la causa del fallimento dell'imaging può essere costituita da fattori come metastasi linfonodali, occlusione linfatica o interruzione del drenaggio linfatico dovuto a interventi chirurgiciprecedenti 14,37. Pertanto, ulteriori metodi di tracciamento SLN potrebbero comunque fallire. Di conseguenza, nella maggior parte dei casi, le linee guida attuali raccomandano di procedere con un ALND20,38; la responsabilità finale di questa decisione chirurgica ricade sul chirurgo operatorio.

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Risultati

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Abbiamo sintetizzato con successo 99mTc-SC con RCP > 92%, la curva di RCP è mostrata nella Figura 2. Abbiamo ottenuto una mappatura SLN di alta qualità di 99mTc-SC per rilevare SLN in pazienti oncologici al seno in stadio iniziale (Figura 4). La mappatura del blu di metilene è stata utile per la rapida localizzazione delle SLN durante il funzionamento (Figura 5). Le SLN sono st...

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Discussione

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

In questo studio, l'uso combinato di Tc-SC preoperatorio 99me blu di metilene intraoperatorio ha raggiunto un tasso di identificazione del 99,8% di SLN, mentre il radiocolloide da solo ha mostrato un tasso altissimo del 99,1%. Pertanto, i chirurghi possono raggiungere un tasso di rilevamento SLN quasi ottimale usando solo il radiocolloide. Tuttavia, nei casi in cui la mappatura radiocolloidale non è andata, il blu di metilene ha aiutato la rilevazione della SLN, che è in linea...

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Dichiarazioni

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Gli autori non hanno conflitti di interesse da divulgare.

Ringraziamenti

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Questo lavoro è stato finanziato dalla Zhejiang Natural Science Foundation (grant n. LTGY23H180014); Programma di Scienze e Tecnologie Mediche e della Salute dello Zhejiang (grant n. 2023KY694).

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Salina allo 0,9%China Otsuka Pharmaceutical Co., Ltd.24a75B3Soluzione diluizione
Filtro a siringa AcrodiscPALLPN46120.2 & mu; m Membrana Supor
Articolo sulla cromatografiaCytiva09927854Per l'analisi della purezza radiochimica
CappaQingdao Qingdun Medical Technology Co., Ltd.20150710Protezione dalle radiazioni nella sintesi di farmaci
Capillare a macchiatura del vetroSinopharm Chemical Reagent Co., LtD20250510Campiona l'iniezione per l'analisi della purezza radiochimica
Scudo di piomboSuzhou Hengkang Medical Devices Co., Ltd5mm PbProtezione radiologica durante l'iniezione
Guanti di gomma per sterilizzazione medica usa e gettaSri Trang Gloves (Thailandia) Società Pubblica Limitata  F840Protegge le mani dalla contaminazione.
MetanoloHuzhou Shuanglin Chemical Technology Co., LtD20251021Per l'analisi della purezza radiochimica
Blu di metileneJumpcan Pharmaceutical Co., Ltd.240812Mappatura intraoperatoria del Blu di Metilene e identificazione SLN
Scanner a strato sottile radioattivo TLC MiniGitaSepate Technology Co., LtDTLC per la purezza radiochimica
  agoJiangsu Kangbao Medical Equipment Co., Ltd.20240722Scala 4,5 (26 G)
Sistema di Rilevamento Gamma Neosonda (GDS)Mammotome2331609Rilevamento intraoperatorio dei linfonodi Sentinella  
Esame per il test PHSinopharm Chemical Regent  Co.,LtD72002361Autonomia: 1-14
SPECT/CTGE Assistenza SanitariaDiscovery NM/CT 670Acquisizione di immagini
  siringaZhejiang Longde Pharmaceutical Co., Ltd. 202404004, 2024120141 mL, 5 mL
Technetium-99MBeijing Atom High-Tech Co., Ltd.241020-111  Dovrebbe essere eluzionata da un generatore Mo-Tc entro 24 ore e deve essere priva di agenti ossidanti.
Fiala ABeijing Shihong Pharmaceutical Co., Ltd.2410202,0 mL di acido cloridrico (HCl) a 0,15 mol/L
Fiala BBeijing Shihong Pharmaceutical Co., Ltd.2410202,0 mL di una soluzione tampone composta da 49,2 mg di fosfato di diidrogeno sodio (NaH2PO4) e 15,8 mg di idrossido di sodio (NaOH).
Fiala CBeijing Shihong Pharmaceutical Co., Ltd.241020prodotto liofilizzato contenente una polvere bianca solubile in acqua composta da 2,0 mg di tiosolfato di sodio (Na2S2O3), 2,3 mg di edetato disodio (Na2EDTA) e 18,1 mg di gelatina
Stazione di lavoro XelerisGE Assistenza SanitariaSoftware per l'imagingImmagini di processo per generare dataset SPECT/CT planari e fusi, localizzare SLNs & nbsp;

Riferimenti

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Brackstone, M., et al. Management of the axilla in early-stage breast cancer: Ontario Health (Cancer Care Ontario) and ASCO guideline. J Clin Oncol. 39 (27), 3056-3082 (2021).
  2. Donker, M., et al. Radiotherapy or surgery of the axilla after a positive sentinel node in breast cancer (EORTC 10981-22023 AMAROS): a randomised, multicentre, open-label, phase 3 non-inferiority trial. Lancet Oncol. 15 (12), 1303-1310 (2014).
  3. Jansen, L., et al. Clinical relevance of sentinel lymph nodes outside the axilla in patients with breast cancer. Br J Surg. 87 (7), 920-925 (2000).
  4. Amin, M. B., et al. The eighth edition AJCC cancer staging manual: continuing to build a bridge from a population-based to a more "personalized" approach to cancer staging. CA Cancer J Clin. 67 (2), 93-99 (2017).
  5. Krag, D. N., et al. Technical outcomes of sentinel-lymph-node resection and conventional axillary-lymph-node dissection in patients with clinically node-negative breast cancer: results from the NSABP B-32 randomised phase III trial. Lancet Oncol. 8 (10), 881-888 (2007).
  6. Krag, D. N., et al. Sentinel-lymph-node resection compared with conventional axillary-lymph-node dissection in clinically node-negative patients with breast cancer: overall survival findings from the NSABP B-32 randomised phase 3 trial. Lancet Oncol. 11 (10), 927-933 (2010).
  7. Veronesi, U., et al. A randomized comparison of sentinel-node biopsy with routine axillary dissection in breast cancer. N Engl J Med. 349 (6), 546-553 (2003).
  8. Yang, B., et al. A single-center, self-controlled, phase I clinical trial of mitoxantrone hydrochloride injection for lymph tracing for sentinel lymph node identification of breast cancer. Gland Surg. 10 (3), 992-1001 (2021).
  9. Swerdlow, M., et al. Determining accurate dye combinations for sentinel lymph node detection: a systematic review. Plast Reconstr Surg Glob Open. 12 (2), e5598(2024).
  10. Jiao, D., et al. Efficacy and safety of mitoxantrone hydrochloride injection for tracing axillary sentinel nodes in breast cancer: a self-controlled clinical trial. Front Oncol. 12 (1), 914057(2022).
  11. Tausch, C., et al. Sentinel node biopsy after primary chemotherapy in breast cancer: a note of caution from results of ABCSG-14. Breast J. 17 (3), 230-238 (2011).
  12. Geng, C., Chen, X., Pan, X., Li, J. The feasibility and accuracy of sentinel lymph node biopsy in initially clinically node-negative breast cancer after neoadjuvant chemotherapy: a systematic review and meta-analysis. PLoS One. 11 (9), e0162605(2016).
  13. Nathanson, S. D., Grogan, J. K., Debruyn, D., Kapke, A., Karvelis, K. Breast cancer sentinel lymph node identification rates: the influence of radiocolloid mapping, case volume, and the place of the procedure. Ann Surg Oncol. 14 (5), 1629-1637 (2007).
  14. Boughey, J. C., et al. Sentinel lymph node surgery after neoadjuvant chemotherapy in patients with node-positive breast cancer: the ACOSOG Z1071 (Alliance) clinical trial. JAMA. 310 (14), 1455-1461 (2013).
  15. Hunt, K. K., et al. Sentinel lymph node surgery after neoadjuvant chemotherapy is accurate and reduces the need for axillary dissection in breast cancer patients. Ann Surg. 250 (4), 558-566 (2009).
  16. Berrocal, J., et al. Intraoperative injection of technetium-99m sulfur colloid for sentinel lymph node biopsy in breast cancer patients: a single institution experience. Surg Res Pract. 2017 (1), 5924802(2017).
  17. Boileau, J. F., et al. Sentinel node biopsy after neoadjuvant chemotherapy in biopsy-proven node-positive breast cancer the SN FNAC study. J Clin Oncol. 33 (3), 258-264 (2015).
  18. Valiveru, R. C., et al. Low-cost fluorescein as an alternative to radiocolloid for sentinel lymph node biopsy-a prospective validation study in early breast cancer. World J Surg. 44 (10), 3417-3422 (2020).
  19. Zhang, X., et al. Diagnostic performance of indocyanine green-guided sentinel lymph node biopsy in breast cancer: a meta-analysis. PLoS One. 11 (6), e0155597(2016).
  20. Zaveri, S., et al. Operative standards for sentinel lymph node biopsy and axillary lymphadenectomy for breast cancer: review of the American College of Surgeons Commission on Cancer Standards 5.3 and 5.4. Surgery. 174 (3), 717-721 (2023).
  21. Kolbow, M., et al. The use of indocyanine green and technetium-99 for dual-tracer sentinel lymph node biopsy in breast cancer. Breast Cancer Res Treat. 213 (1), 151-159 (2025).
  22. Schmidt, M., et al. [Nuclear medicine procedure guideline for sentinel lymph node localization]. Nuklearmedizin. 63 (4), 233-246 (2024).
  23. Khadka, S., et al. Sentinel node mapping in early breast cancer: a randomized comparison of fluorescein-guided All India Institute of Medical Sciences, Anurag's technique with technetium-99m sulfur colloid plus methylene blue. Indian J Nucl Med. 37 (3), 236-244 (2022).
  24. Clarke, D., Newcombe, R. G., Mansel, R. E., Group, A. T. The learning curve in sentinel node biopsy: the ALMANAC experience. Ann Surg Oncol. 11 (3 Suppl), 211S-215S (2004).
  25. Eshima, D., et al. Technetium-99m-sulfur colloid for lymphoscintigraphy: effects of preparation parameters. J Nucl Med. 37 (9), 1575-1578 (1996).
  26. Michenfelder, M. M., Bartlett, L. J., Mahoney, D. W., Herold, T. J., Hung, J. C. Particle-size and radiochemical purity evaluations of filtered 99mTc-sulfur colloid prepared with different heating times. J Nucl Med Technol. 42 (4), 283-288 (2014).
  27. Phillips, W. T., et al. Evaluation of [(99m)Tc] liposomes as lymphoscintigraphic agents: comparison with [(99m)Tc] sulfur colloid and [(99m)Tc] human serum albumin. Nucl Med Biol. 28 (4), 435-444 (2001).
  28. Chagpar, A., et al. Validation of subareolar and periareolar injection techniques for breast sentinel lymph node biopsy. Arch Surg. 139 (6), 614-618 (2004).
  29. Malhotra, C., et al. Efficacy of periareolar versus peritumoral injection of Tc99-labelled sulphur colloid and methylene blue dye for detection of sentinel lymph node in patients with early breast cancer: a comparative study. Indian J Surg Oncol. 12 (1), 119-123 (2021).
  30. Mertz, L., et al. [Subareolar injection of 99m-Tc sulfur colloid for sentinel nodes identification in multifocal invasive breast cancer]. Bull Cancer. 86 (11), 939-945 (1999).
  31. Blanco Saiz, I., et al. [Sentinel node biopsy in patients with multifocal and multicentric breast cancer: a 5-year follow-up]. Rev Esp Med Nucl Imagen Mol. 33 (4), 199-204 (2014).
  32. Giammarile, F., et al. The EANM and SNMMI practice guideline for lymphoscintigraphy and sentinel node localization in breast cancer. Eur J Nucl Med Mol Imaging. 40 (12), 1932-1947 (2013).
  33. United States Pharmacopeia-National Formulary (USP 29-NF 24). , United States Pharmacopeial Convention. (2005).
  34. Yeung, H. W., et al. Lymphoscintigraphy and sentinel node localization in breast cancer patients: a comparison between 1-day and 2-day protocols. J Nucl Med. 42 (3), 420-423 (2001).
  35. Wang, H. Y., Tsai, C. C., Hung, G. U., Lin, W. Y. Effectiveness of delayed 2-day lymphoscintigraphy on sentinel lymph node detection in patients with breast cancer with negative early lymphoscintigraphy. Clin Nucl Med. 31 (9), 523-526 (2006).
  36. Park, K. U., et al. Sentinel lymph node biopsy in early-stage breast cancer: ASCO guideline update. J Clin Oncol. 43 (14), 1720-1741 (2025).
  37. Kohl Schwartz, A. S., et al. Does increased tumor burden of sentinel nodes in breast cancer affect detection procedure. Eur J Surg Oncol. 39 (3), 266-272 (2013).
  38. Lyman, G. H., et al. Sentinel lymph node biopsy for patients with early-stage breast cancer: American Society of Clinical Oncology clinical practice guideline update. J Clin Oncol. 35 (5), 561-564 (2017).
  39. Ratnagiri, R., et al. Performing sentinel lymph node biopsy without a hand-held gamma probe-overcoming hurdles through teamwork: an analysis of our learning curve over five years. World J Surg Oncol. 23 (1), 285(2025).

Accesso limitato. Accedi o avvia una prova gratuita per visualizzare questo contenuto.

Ristampe e permessi

Richiedi il permesso di riutilizzare il testo o le figure di questo articolo JoVE

Richiedi permesso

Tag

Tecnica a doppio tracciantemappatura con colorante blubiopsia del linfonodo sentinellastadiazione dei linfonodi ascellariblu di metilenelocalizzazione dei linfonodi

Articoli correlati