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Analisi differenziale del contenuto di nutrienti e del metabolismo di Camellia oleifera in diversi periodi di crescita

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DOI:

10.3791/69560

17 marzo 2026

In questo articolo

Sommario

Questo articolo presenta un protocollo per fornire il primo rapporto sul contenuto di nutrienti e sulle vie metaboliche correlate delle foglie di C. oleifera in tre stadi di crescita e sviluppo, e per fornire una base per comprendere il meccanismo molecolare della senescenza fogliare.

Abstract

Per indicare le variazioni nel contenuto di nutrienti, nell'espressione genica associata al metabolismo dell'azoto e nel metabolismo dell'amido e del saccarosio in C. oleifera in diversi periodi di crescita, foglie della cultivar C. oleifera 'Dabieshan 1' sono state raccolte nelle fasi giovanili ( C. oleifera a 2 anni), agli stadi di fruttificazione precoce ( C. oleifera a 6 anni) e al picco di fruttificazione ( C. oleifera a 10 anni)), che sono stati selezionati come materiali sperimentali. La determinazione del contenuto di nutrienti e l'analisi del sequenziamento del trascrittoma sono state condotte su campioni fogliari nella fase iniziale di fioritura, studiando sistematicamente il contenuto di nutrienti e le vie metaboliche correlate di C. oleifera durante diversi periodi di crescita. I risultati hanno distinto 9 geni omologhi relativi al metabolismo dell'azoto e 24 relativi al metabolismo dell'amido e del saccarosio, rispettivamente, dopo aver sottoposto alle foglie di C. oleifera raccolte sia nella fase giovanile che nella fase di massimo fruttificazione nel database KEGG. Con l'aumento dell'età degli alberi, cambiamenti nel metabolismo dell'azoto e nelle vie metaboliche dell'amido e del saccarosio nelle foglie di C. oleifera. C. oleifera migliorerebbe sia la via fenilalanina-liasi sia la biosintesi del saccarosio. Questi hanno portato infine a un aumento dei livelli di proteine solubili e zuccheri solubili nelle foglie di C. oleifera . Questo studio fornisce nuove intuizioni sui meccanismi dei cambiamenti nel metabolismo dell'azoto, nel metabolismo dell'amido e del saccarosio, e sul contenuto di nutrienti durante la trasformazione di C. oleifera dalla crescita vegetativa alla crescita riproduttiva. Fornisce riferimenti teorici per comprendere il periodo di fruttificazione e applicare fertilizzanti fogliari per piante per favorire la fioritura e la fruttificazione.

Introduzione

Durante lo stadio giovanile, C. oleifera possiede tipicamente un fusto principale indiviso e subisce principalmente una crescita vegetativa, priva della capacità di processi riproduttivi come la differenziazione dei boccioli fiorie la fioritura 1. Quando si innestano piantine di C. oleifera, è pratica comune utilizzare germogli primaverili che entrano nello stadio adulto come sciocchi, poiché hanno la capacità di indurre lafioritura 2,3,4. Tuttavia, durante la fase iniziale di piantumazione, C. oleifera nella fase giovanile può avere difficoltà a formare boccioli e subire differenziazione dei boccioli a causa della crescita vegetativa vigorosa, poiché le condizioni ambientali possono limitare la formazione dei boccioli. Tuttavia, man mano che C. oleifera progredisce attraverso la fase giovanile fino al suo periodo primario di fruttificazione e raggiunge infine il suo picco fruttifero, sviluppa gradualmente la capacità di sviluppare normali germogli fiorici e di sviluppare la normale fioritura. C. oleifera ha la caratteristica di una forma complessa, frutti e fiorisimultanei 5. Nella fase iniziale di fruttificazione, C. oleifera può produrre pochi fiori, ma quando entra nella fase di picco di fruttificazione, produce una quantità maggiore di fiori. Nella fase di fruttificazione di picco di C. oleifera, la crescita riproduttiva diventa predominante, accompagnata da maggiori richieste di luce, temperatura, acqua e nutrienti. È evidente che gli alberi da produzione legnosa, come C. oleifera, hanno un lungo periodo di crescita vegetativa prima della fioritura, limitando la possibilità di accorciare il ciclo di coltivazione e raggiungendo un'alta produttivitàprecoce 6.

L'azoto è fondamentale per come le piante crescono e si sviluppano. Tipi diversi di piante hanno quantità diverse di azoto e, anche all'interno della stessa specie, esistono notevoli disparità nel contenuto di azoto in diversi periodi di crescita. Man mano che le piante passano alla fase di crescita riproduttiva, l'azoto si accumula gradualmente in organi come fiori, frutti esemi 7. L'azoto è essenziale per enzimi, proteine, ormoni specifici, acidi nucleici e altre sostanze vitali, orchestrando così le attivitàmetaboliche 8. Il processo di differenziazione dei boccioli floreali rappresenta un punto di svolta chiave, che fa passare le piante dalla fase vegetativa alla fase riproduttiva, e comporta un complesso processo di sviluppo. L'accumulo di nutrienti rappresenta una base fondamentale per la differenziazione dei boccioli dellepiante 9. L'attuale consenso sostiene che la differenziazione efficace dei boccioli fioreli dipende dall'accumulo dicarboidrati 10. Durante la differenziazione dei boccioli dei fiori degli alberi da frutto, le fluttuazioni nel contenuto di zucchero solubile influenzano direttamente o indirettamente il processo10. Le indagini hanno mostrato una stretta correlazione tra i livelli di carboidrati nelle foglie di Prunus salicina e la differenziazione dei boccioli floreali, poiché i livelli di zucchero solubile sono più alti nella fase fisiologica di differenziazione dei boccioli fioreli rispetto al periodo morfologico di differenziazione dei boccioli, per P. salicina subì una rapida esaurimento dei carboidrati durante la differenziazione deiboccioli floreali 11. Tuttavia, ci sono segnalazioni che indicano che non si osservano fluttuazioni significative nel contenuto solubile di amido in Ficus carica durante la differenziazione deiboccioli floreali 12. Le piante sempreverdi accumulano amido all'interno dell'ovaio durante il periodo primaverile di differenziazione dei boccioli, mentre le piante che cadono foglie immagazzinano amido durante il periodo di dormienza delgermoglio 13. Sulla base delle informazioni sopra, possiamo concludere che ci sono differenze nelle traiettorie dei cambiamenti del contenuto di carboidrati tra le diverse specie durante la differenziazione dei boccioli fioriali. Ying et al.14 hanno analizzato i modelli di espressione dei geni enzimatici-chiave implicati nei processi delle vie meteorologiche di base, come il metabolismo dell'azoto e il metabolismo del saccarosio e dell'amido, in due diversi stadi di differenziazione dei germogli floreali in Vernicia fordii. Questa analisi è stata combinata con i cambiamenti dinamici negli indicatori fisiologici e biochimici dei germogli floreali degli alberi di tug, fornendo una chiarificazione dettagliata dell'accumulo, dell'utilizzo, del trasporto e della distribuzione dei nutrienti durante la differenziazione dei germogli floreali degli alberidi tung 8,14. Ricerche di Lai Chengchun et al. hanno rilevato che la rimozione di due foglie può modulare i geni espressi come saccarosio fosfato sintasi (SPS), invertasi neutra (NI), invertasi della parete cellulare (CWI) e α-amilasi (AMY), favorendo così la sintesi di saccarosio e la successiva accumulazione di amido, fornendo il quadro nutrizionale essenziale necessario per la maturazione dei frutti, la germinazione dei germogli ela fioritura 13,15.

Tuttavia, ricerche sui cambiamenti nel contenuto di nutrienti, nel metabolismo dell'azoto e sul metabolismo dell'amido e del saccarosio in C. oleifera in diverse fasi sono state raramente riportate. La maggior parte degli studi si è concentrata sulla costruzione di mappe di polimorfismi a singolo nucleotide (SNP), sullo sviluppo di marcatori SSR e sull'analisi delle risposte fisiologiche e molecolari di C. oleifera in condizioni di bassa o altatemperatura 16,17,18,19,20. Pertanto, in questo studio è stata selezionata la comune cultivar di C. oleifera "Dabieshan 1", e sono stati raccolti campioni di foglie di germogli primaverili in diversi periodi di crescita (fase giovanile, fase iniziale di fruttificazione e fase di picco di fruttificazione) di C. oleifera per l'analisi del sequenziamento dei nutrienti e del trascrittoma. L'obiettivo era identificare differenze nel contenuto di nutrienti, nel metabolismo dell'azoto e nel metabolismo dell'espressione genica dello saccarosio e dell'amido attraverso le varie fasi dei processi di crescita e sviluppo osservati nelle foglie di C. oleifera. Chiarire il metabolismo dell'azoto, le vie del metabolismo del saccarosio e dell'amido, e le loro relazioni con i nutrienti correlati può gettare le basi per lo studio del meccanismo di differenziazione dei germogli floreali di C. oleifera e fare luce sui meccanismi molecolari alla base della fioritura di C. oleifera.

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Protocollo

1. Materiali sperimentali

C. oleifera Le foglie 'Dabieshan 1' venivano raccolte in tre fasi chiave dello sviluppo: la fase giovanile, intorno ai 2 anni; Il soggetto progredisce in una fase di fruttificazione precoce intorno ai 6 anni, raggiungendo infine il suo periodo di massimo fruttificazione a circa 10 anni. Tutte le piante di C. oleifera nelle tre fasi di sviluppo sopra elencate sono state piantate utilizzando piantine coltivate in contenitore della stessa specifica di C. oleifera 'Dabieshan 1'. Le proprietà fisiche e chimiche del suolo nei terreni forestali di C. oleifera sono state mostrate nella Tabella 1.

2. Panoramica del sito di raccolta

Materiali sperimentali sono stati raccolti da Heping Town, situata nel cuore della provincia di Anhui. La contea di Shucheng si trova nella regione centrale della provincia, appartenente all'area periferica dei Monti Dabie. Le coordinate sono 31°11′N, 116°47′E, con un'altitudine media di 90 m. Il suolo è classificato come giallo-marrone. La regione presenta un modello climatico monsonico subtropicale umido, che mantiene una temperatura media annua di 15,6 °C e registra tipicamente circa 1.100 mm di precipitazione all'anno, gode di circa 1.969 ore di sole all'anno e un periodo senza gelate di 224 giorni.

3. Raccolta e pretrattamento dei campioni

I campioni sono stati selezionati durante il periodo pre-fioritura (fine settembre). Per ogni fase di sviluppo, sono state selezionate le piante di C. oleifera con crescita simile, costante e forte. Da ogni pianta veniva rimossa la terza foglia dall'alto verso il basso, che consisteva in germogli primaverili a crescita moderata provenienti dalle direzioni est, ovest, sud e nord della parte esterna della corona di C. oleifera . I campioni sono stati contrassegnati con lettere e numeri seriali: YAT1, YAS2 e YAT3 per le foglie di C. oleifera nello stadio giovanile, il soggetto progredisce verso una fase di fruttificazione precoce e il periodo di fruttificazione di picco, rispettivamente. Questi venivano raccolti e conservati in azoto liquido. Cinque alberi campionari casuali da ogni stadio sono stati selezionati come una replica biologica, e tre repliche biologiche sono state create in tutte le fasi. Gli esemplari selezionati furono riportati lo stesso giorno in laboratorio e conservati a -80 °C.

4. Determinazione dell'indice fisiologico

Il contenuto di zucchero solubile è stato determinato dal metodo colorimetrico dell'anthrone21. Il contenuto di carbonio organico è stato determinato tramite il metodo di titolazione del solfato di dicromato di potassio- solfato ferroso 22. Il contenuto di proteine solubili è stato ottenuto con il metodo Coomassie brilliantblue 23. La concentrazione totale di azoto è stata quantificata dal metodo di Kjeldahl22.

5. È stato effettuato l'isolamento dell'RNA completo, seguito dalla costruzione di una libreria complementare di DNA (cDNA) e dal successivo sequenziamento

L'RNA totale è stato estratto dalle foglie di C. oleifera in diverse fasi utilizzando il kit di estrazione dell'RNA vegetale. La concentrazione totale di RNA è stata determinata da uno spettrofotometro visibile ultravioletto a spettro completo. L'integrità e la chiarezza dell'RNA sono state determinate da un analizzatore biologico. Dopo la costruzione e la validazione della libreria cDNA, il sequenziamento trascrittomico è stato condotto utilizzando una piattaforma di sequenziamento ad alta produttività sequence-by-sequencing. La procedura di sequenziamento produceva letture individuali, ciascuna coprendo 100 coppie dibasi 24, 25 e 26. I risultati dell'allineamento dei processi di sequenza sono stati sottoposti ad analisi statistica utilizzando il softwareRSEM 27. I geni di espressione differenziale (DEG) in varie fasi dello sviluppo di C. oleifera sono stati identificati utilizzando il software di analisi differenzialeDESeq 28,29.

6. Assemblaggio de novo e annotazione UniGene

SeqPrep http://github.com/jstjohn/SeqPrep) e Sickle (http://github.com/najoshi/sickle) sono stati utilizzati per filtrare i dati grezzi, inclusa la rimozione di sequenze di bassa qualità e adattatori contaminati. Successivamente, le letture pulite ottenute da ogni campione venivano assemblate utilizzando il softwareTrinity 30,31. Tutti i trascriverti assemblati sono stati sottoposti all'allineamento BLASTX contro lo Swiss-Prot, cluster di gruppi ortologi per genomi completi eucariotici e database KEGG in ordine sequenziale. Un tipico valore E di soglia (valore E <10−5) veniva impostato per recuperare le loro annotazioni di funzione. Il KEGG è stato applicato per analizzare le vie metabolichecorrelate 32.

7. Annotazione funzionale dei geni e analisi genica espressa differenzialmente

Le abbondanze geniche e isoforme sono state analizzate statisticamente utilizzando il softwareRSEM 27. È stato fissato un cut-off (P < 0,05, FDR < 0,01, |log2FC|>1) per identificare i geni espressi differenzialmente (DEG). Il numero atteso di frammenti per kb di trascrizione per milione di frammenti mappati (FPKM) è attualmente il metodo più utilizzato per stimare i livelli di espressionegenica 28. Sono stati calcolati i valori FPKM di tutti i geni delle tre diverse fasi di crescita e sviluppo (YAT1, YAS2 e YAT3). È stata condotta un'analisi gerarchica di clustering per esaminare i livelli differenziali di espressione genica. Nel frattempo, la via KEGG è stata preparata per identificare DEG significativamente arricchite nelle vie metaboliche a P corretta da Bonferroni ≤ 0,05 rispetto all'intero trascrinome usandoKOBAS 29.

8. Metodi analitici

I dati sono stati presentati utilizzando Excel per calcolare valori medi e deviazioni standard. L'analisi della varianza (ANOVA) è stata utilizzata per l'analisi statistica tramite il software SPSS, mentre il test a più intervalli di Duncan è stato utilizzato per valutare differenze significative nel contenuto di nutrienti tra le tre fasi. Successivamente, differenze significative tra i gruppi sono state determinate tramite confronti multipli post-hoc con il metodo della Minima Differenza Significativa (LSD). Grafici e tabelle venivano generati utilizzando il software Origin per visualizzare i risultati sperimentali e analitici. Non è stata indicata alcuna significatività statistica con 'ns' (P > 0,05). Le differenze statisticamente significative erano indicate rispettivamente con '*' (P < 0,05), '**' (P < 0,01), '***' (P < 0,001) e '****' (P < 0,0001).

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Risultati

Confronto del contenuto di composti azotati nelle foglie di C. oleifera in diversi periodi di crescita

L'azoto fu fondamentale nel facilitare la crescita e lo sviluppo delle piante, esercitando un'influenza profonda sui loro processi riproduttivi. Di conseguenza, comprendere il contenuto complessivo di azoto nelle piante ha un'importanza notevole per le attività di ricerca. Il contenuto totale di az...

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Discussione

Gli zuccheri solubili fungono come fonti essenziali di energia e componenti strutturali nelle piante, alimentando varie attività fisiologiche e processibiosintetici 10. Le alterazioni nel contenuto di zucchero solubile influenzano direttamente o indirettamente il processo di trasformazione dei boccioli vegetativi in boccioli floreali negli alberi dafrutto 10. Alcune ricerche hanno rilevato che la necessità di zuccheri solubili abbondanti er...

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Ringraziamenti

Questo lavoro è stato supportato dalla Fondazione Provinciale di Scienze Naturali dell'Anhui per Giovani Studiosi (2008085QC135), dal Progetto Postdoctoral di Ricerca con Post-Dottorato del Wanxi College (WXBSH2020003), dal Programma di Ricerca Scientifica Post-Dottorato della Provincia dell'Anhui (2024A767), dal Programma di Distacco per Imprese della Facoltà di Sci-Tech dell'Anhui (2024jsqygz79) e dal Progetto di Ricerca e Innovazione Forestale della Provincia dell'Anhui, Documento n. 4 [2024].

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Bioanalizzatore 2100Agilent Technologies, Inc. (USA)Utilizzato per valutare l'integrità e la chiarezza dell'RNA
Software DESeqCodice sorgente3.2Utilizzato per l'analisi differenziale dell'espressione
Kit EASYspin Plus (Isolamento totale dell'RNA)Aidlab Biotechnology Co., Ltd. (Cina)RN 28 (Aidlab)Utilizzato per l'estrazione totale di RNA dalle foglie di C. oleifera
Piattaforma di sequenziamento HiSeq 2000Illumina (Cina)Utilizzato per il sequenziamento del trascrittoma, lunghezza di lettura 100 bp
Metodo Kjeldahl/Kjeltec 2300Foss Tecator (Svezia)Per la concentrazione totale di azoto (Bao 2007)
Metodo per la determinazione delle proteine solubiliAcido solforico concentrato6104-58-1 (Aladdin)Metodo sviluppato da Chen Jianxun (Chen et al. 2015)
Metodo per la determinazione dello zucchero solubileAnthrone90-44-8 (Macklin)Zhang Zhilang s (Zhang et al. 2003)
Ossidazione del dicromato di potassio - metodo di titolazione del solfato ferrosoDicromato di potassio Solfato ferrosoNA (aladdin) 7782-63-0(aladdin)Per la determinazione del carbonio organico (Bao 2007)
Software RSEMCodice sorgente1.2.3Utilizzato per l'analisi statistica dell'allineamento di sequenza
Spettrofotometro Thermo Scientific NanoDrop 2000C  ABI (USA)Utilizzato per determinare la concentrazione di RNA

Riferimenti

  1. Cao, Z. H., Shu, Q. L., Dong, C. Y., Zhang, X. Variation in physiological and chemical characteristics at developmental stage in different disease-resistant varieties of Camellia oleifera. Pak J Bot. 46 (1), 207-212 (2014).
  2. Hu, J. J., et al. Comparison of dynamic changes in endogenous hormone level, water content, and water-soluble sugars in Camellia oleifera of different ages. Pak J Bot. 49 (1), 25-32 (2017).
  3. Hu, J. J., et al. Morphological, physiological and biochemical responses of Camellia oleifera to low-temperature stress. Pak J Bot. 48 (3), 899-905 (2016).
  4. Zhuang, R. L. Chinese Camellia oleifera. , China Forestry Press. Beijing. (2008).
  5. Li, Z. R., et al. Mechanics vibration model of fruit tree analysis and generalized coordinate system establishment for Camellia oleifera branches. For Mach Woodw Equip. 53 (2), 70-74 (2025).
  6. Wu, W., et al. Study on the chemical components of shoots and leaves of Camellia oleifera from different elevations. Pak J Bot. 47 (3), 1111-1114 (2015).
  7. Tan, B. Z., Close, D. C., Quin, P. R., Swarts, N. D. Nitrogen use efficiency, allocation, and remobilization in apple trees: uptake is optimized with pre-harvest N supply. Front Plant Sci. 12, 657070(2021).
  8. Luo, J., et al. Net fluxes of ammonium and nitrate in association with H⁺ fluxes in fine roots of Populus popularis. Planta. 237, 919-931 (2013).
  9. Zhang, Y. H., Liu, B. H., Kong, F. J., Chen, L. Y. Nutrient-mediated modulation of flowering time. Front Plant Sci. 14, 1101611(2023).
  10. Zhang, W. N., Li, J. J., Zhang, W. L., Njie, A., Pan, X. J. The changes in C/N, carbohydrate, and amino acid content in leaves during female flower bud differentiation of Juglans sigillata. Acta Physiol Plant. 44, 1-12 (2022).
  11. Lee, H. B., Jeong, S. J., Lim, N. H., An, S. K., Kim, K. S. Correlation between carbohydrate contents in the leaves and inflorescence initiation in Phalaenopsis. Sci Hortic. 265, 265109270(2020).
  12. Wan, X., et al. Auxin and carbohydrate control flower bud development in Anthurium andraeanum during early stage of sexual reproduction. BMC Plant Biol. 24 (1), 159(2024).
  13. Mesejo, C., Martínez-Fuentes, A., Reig, C., Agustí, M. The flower to fruit transition in Citrus is partially sustained by autonomous carbohydrate synthesis in the ovary. Plant Sci. 285, 224-229 (2019).
  14. Sun, Y., Liu, R., Luo, M., Li, J. A. Molecular response of Tunglfy gene to exogenous hormones in flower buds differentiation period. J Cent South Univ For Technol. 34 (4), 25-29 (2014).
  15. Lai, C. C., et al. Effect of shoot pinching on growth, sucrose and starch metabolism in 'Kyoho' grape. J Trop Subtrop Bot. 30 (5), 623-635 (2022).
  16. Cao, R. L., et al. Identification of NAC gene in Camellia oleifera and analysis of its response to drought stress. Acta Agric Univ Jiangxi. 43 (6), 1357-1370 (2021).
  17. Lin, P., Wang, K. L., Yao, X. H., Ren, H. D. Development of DNA molecular ID in Camellia oleifera germplasm based on transcriptome-wide SNPs. Sci Agric Sin. 56 (2), 217-235 (2023).
  18. Song, J. M., Li, X. Y., Zhang, S. H., Lai, H. Development and evaluation of SSR markers based on transcriptome sequencing of Camellia in Hainan Province. Mol Plant Breed. 20 (20), 6791-6801 (2022).
  19. Tang, R. Y., Sun, M. H., Wu, L. L., Li, J. A., Wang, N., Xiong, L. Alleviating effect of different exogenous substances on floral organs of Camellia oleifera under low temperature stress. Plant Physiol. 59 (1), 219-230 (2023).
  20. Guo, H. Y., Tan, X. J., Tian, F., Zhong, Q. P. The relationship between floral initiation and spring-shoot growth in Camellia oleifera. For Res. 35 (3), 123-130 (2022).
  21. Zhang, Z. L., Qu, W. J. Plant Physiology Laboratory Manual. , Higher Education Press. Beijing. (2003).
  22. Bao, S. D. Soil Chemical Analysis. , China Agricultural Press. Beijing. (2007).
  23. Chen, J. X., Wang, X. F. Plant Physiology Laboratory Manual. , South China University of Technology Press. Guangzhou. (2015).
  24. Himanshu, S., et al. Identification and cross-species transferability of 112 novel unigene-derived microsatellite markers in tea (Camellia sinensis). Am J Bot. 133, e133-e138 (2011).
  25. Knight, M. R., Knight, H. Low-temperature perception leading to gene expression and cold tolerance in higher plants. New Phytol. 195 (4), 737-751 (2012).
  26. Weiser, C. Cold resistance and injury in woody plants: knowledge of hardy plant adaptations to freezing stress may help us to reduce winter damage. Science. 169 (3952), 1269-1278 (1970).
  27. Iseli, C., Jongeneel, C. V., Bucher, P. ESTScan: A program for detecting, evaluating, and reconstructing potential coding regions in EST sequences. Intell Syst Mol Biol. 99, 138-148 (1999).
  28. Sung, S., Amasino, R. M. Vernalization in Arabidopsis thaliana is mediated by the PHD finger protein VIN3. Nature. 427 (6970), 159-164 (2004).
  29. Xie, C., et al. KOBAS 2.0: A web server for annotation and identification of enriched pathways and diseases. Nucleic Acids Res. 39 (suppl_2), W316-W322 (2011).
  30. Zhang, Y., Liu, Q. L. Research progress on the molecular mechanisms of plant flower development. Chin Bull Bot. 20 (5), 589-601 (2003).
  31. Schmitz, R. J., Hong, L., Michaeles, S., Amasino, R. M. FRIGIDA-ESSENTIAL 1 interacts genetically with FRIGIDA and FRIGIDA-LIKE 1 to promote the winter-annual habit of Arabidopsis thaliana. Development. 132, 5471-5478 (2005).
  32. Kanehisa, M., Goto, S. KEGG: Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes. Nucleic Acids Res. 27 (1), 29-34 (1999).
  33. Fan, W. G., et al. Study on the changes of endogenous hormones, carbohydrate and nitrogen nutrition at the flower bud differentiation stage of Rosa roxburghii. J Fruit Sci. 20 (1), 40-43 (2003).
  34. Chen, J. Z. Southern Version of Pomology Cultivation Theories. , 4th Edition, China Agriculture Press. Beijing. (2003).
  35. Liu, Z. L., Lin, S. Q., Chen, H. B. Dynamics of protein during flower-bud formation in Eriobotrya japonica. Subtrop Plant Sci. 37 (2), 6(2008).
  36. Poorter, L., Bongers, F. Leaf traits are good predictors of plant performance across 53 rain forest species. Ecology. 87 (7), 1733-1743 (2006).
  37. Lv, Q., Chen, Y. Y., Yu, Z. D., Ma, J. L. Functional traits and stoichiometric analysis of Camellia osmantha at the early fruiting stage. Mol Plant Breed. , 1-12 (2023).
  38. Li, J. X., Huang, H. L., Zhao, Y. C., Qiao, X. Y. Status of Camellia oleifera germplasm resources and breeding directions in Guangdong. Guangdong Agric Sci. 38 (20), 34-35 (2011).
  39. Li, W. Q., Fan, X. L., Lin, C. H. Effects of nitrogen on flowering of fruit trees. Chin J Soil Sci. (06), 1203-1207 (2007).
  40. Thiele, J., Jørgensen, R. B., Hauser, T. P. Flowering does not decrease vegetative competitiveness of Lolium perenne. Basic Appl Ecol. 10 (4), 340-348 (2009).
  41. Peña, L., et al. Constitutive expression of ArabidopsisLEAFY or APETALA1 genes in citrus reduces their generation time. Nat Biotechnol. 19 (3), 263-267 (2001).
  42. Pillitteri, L. J., Lovatt, C. J., Walling, L. L. Isolation and characterization of LEAFY and APETALA1 homologues from Citrus sinensis L. Osbeck 'Washington'. J Am Soc Hortic Sci. 129 (6), 846-856 (2004).

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Metabolismo dell azotoMetabolismo dell amidoMetabolismo del saccarosioEspressione genicaSequenziamento del trascrittomaProteine solubiliZuccheri solubili

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