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Gli esperimenti sono stati condotti secondo la Guida per la Cura e l'Uso degli Animali da Laboratorio dei National Institutes of Health (Pubblicazione NIH n. 8023, revisionata nel 1978). Il protocollo è stato approvato dal Comitato Etico dell'Università di Yantai (Approvazione n. YTDX20240526). I materiali pericolosi venivano smaltiti secondo i protocolli istituzionali sui rifiuti chimici. La Figura 1 illustra uno schema del disegno sperimentale. I reagenti e le attrezzature utilizzate sono elencati nella Tabella dei Materiali.
1. Dettagli sugli animali
I maschi di topi CD-1 del peso 22-25 g erano ospitati in una stanza con un ciclo di luce e scurezza di 12/12 ore. Gli animali erano liberi di prendere cibo e acqua.
2. Preparazione del modello mouse ICH
Il modello murino dell'ICH è stato stabilito secondo un precedente rapporto11. Per un breve periodo, i topi sono stati anestetizzati con xilazina (10 mg/kg) e ketamina (90 mg/kg), poi posizionati in un sistema stereotassico. Un piccolo foro di scavatura è stato praticato nella sutura coronale destra (2,2 mm laterale alla linea mediana, 0,2 mm posteriore alla bregma). Una microsiringa è stata inserita nel cervello destro a una profondità di 3,5 mm dalla superficie del cranio. Utilizzando una micropompa d'infusione, la collagenasi batterica (0,075 U in 0,5 μL di soluzione salina tamponata con fosfato [PBS]) è stata infusa a una velocità di 0,15 μL/min. L'ago è stato ritirato delicatamente dopo 5 minuti. I topi del gruppo finto ricevevano un volume equivalente di PBS invece che di collagenase. Ho sigillato il foro della bava con cera ossea e l'incisione al cuoio capelluto è stata suturata. La temperatura corporea degli animali veniva mantenuta a 37°C fino al risveglio.
3. Disegno sperimentale
I maschi di topi CD-1 sono stati assegnati casualmente a tre gruppi: sham, modello e lansoprazolo. Il modello ICH è stato stabilito come descritto sopra. Trenta minuti dopo l'induzione dell'ICH, i topi del gruppo lansoprazolo hanno ricevuto il lansoprazolo a una dose di 30 mg/kg (la dose di lansoprazolo è stata selezionata secondo un rapportoprecedente 12), somministrato una volta al giorno per tre giorni consecutivi. I topi nei gruppi sham e modello hanno ricevuto iniezioni intraperitoneali di PBS. A 3 giorni dall'ICH, la funzione neurologica a breve termine è stata valutata utilizzando il test di Garcia, il test di posizionamento dell'arto anteriore e il test del rotodo. Il giorno 29 dopo l'induzione dell'ICH, sono stati condotti i nuovi test di riconoscimento degli oggetti e del labirinto d'acqua per valutare la funzione neurologica a lungo termine.
4. Test Garcia
Due ricercatori, accecato al gruppo, hanno eseguito il test Garcia secondo un protocollo13 precedentemente segnalato. La funzione neurologica è stata valutata utilizzando un sistema di punteggio che variava da 0 a 21. La valutazione consiste in sette sottotest, ciascuno con un punteggio da 0 a 3 (0 = peggiore, 3 = migliore).
5. Test di posizionamento dell'arto anteriore
Dopo il test di Garcia, il test di posizionamento dell'arto anteriore è stato eseguito secondo un metodoprecedentemente descritto 14. I topi venivano tenuti in posizione verticale, paralleli al piano del tavolo, permettendo alle loro vibrisse di sfiorare la superficie. La posizione degli arti anteriori è stata osservata in 10 tentativi consecutivi. La percentuale di posizionamento dell'arto anteriore sinistro è stata calcolata come: Posizione dell'arto anteriore sinistro / (Posizionamento dell'arto anteriore sinistro + Posizionamento dell'arto anteriore destro) × 100%.
6. Test rotatorio
Dopo il test di posizionamento dell'arto anteriore, i topi sono stati posizionati su una barra rotante a 5 giri al minuto per 3 minuti per l'addestramento. La canna è stata accelerata da 5 a 30 giri/min in 4 minuti. La durata in cui ciascun topo è rimasto sulla bacchetta è stata registrata in un periodo di 5 minuti, mentre la latenza di fuga èstata di 15.
7. Saggio sulla permeabilità intestinale e sull'edema cerebrale
Dopo il test rotatoriod, sei topi di ogni gruppo sono stati selezionati casualmente. Secondo il metodoprecedente 16, il FITC-dextrano veniva somministrato intragicastricamente a una dose di 300 mg/kg. Tre ore dopo, i topi sono stati anestetizzati con isoflurano e il sangue è stato raccolto dal plesso venoso retro-orbitale, centrifugato a 4 °C e 11.000 × g per 5 minuti. Il contenuto di FITC-dextrano è stato analizzato utilizzando un lettore di lastre a fluorescenza a 485 nm di eccitazione e 528 nm di emissione. Gli animali venivano poi decapitati e l'emisfero destro del cervello veniva raccolto e pesato per ottenere il peso umido. Il tessuto è stato essiccato a 100 °C per 24 ore per determinare il peso secco. Il contenuto di acqua cerebrale (%) è stato calcolato come: [(Peso umido − Peso secco) / Peso umido] × 100%.
8. Valutazione della permeabilità della barriera emato-encefalica (BBB)
Dopo il test rotatoriod, sei topi di ciascun gruppo sono stati selezionati casualmente per valutare la permeabilità del BBB. Una soluzione blu di Evans al 2% è stata somministrata intraperitonealmente a 4 mL/kg. Tre ore dopo, i topi sono stati anestetizzati con isoflurano e la perfusione transcardica è stata eseguita utilizzando PBS. L'emisfero destro del cervello è stato omogeneizzato al 50% di acido tricloroacetico con un rapporto di 3:1 (tessuto cerebrale: acido tricloroacetico). L'omogeneato è stato centrifugato a 15.000 × g e 4 °C per 20 minuti. Successivamente, 500 μL del sovrantantante venivano mescolati con 500 μL di etanolo al 70% e incubati durante la notte a 4 °C al buio. La concentrazione di Evans blue è stata misurata a 610 nm e quantificata utilizzando una curva standard. I dati sono presentati come μg di blu di Evans per mg di tessuto cerebrale.
9. Esame istopatologico dell'intestino e del cervello
Dopo il test rotatorio, tre topi di ciascun gruppo sono stati selezionati casualmente. I topi sono stati anestetizzati con isoflurano. Il jegiuno, l'ileone e il cervello sono stati raccolti e fissati al 10% di formaldeide. I tessuti sono stati sezionati a uno spessore di 5 μm e è stata eseguita una colorazione con ematossilina-eosina (HE). L'esame istopatologico dell'intestino e del cervello è stato condotto al microscopio da due sperimentatori che erano accecati ai compiti di gruppo. Il numero di microglie che circondano l'ematoma è stato contato in sezioni rappresentative. I conteggi cellulari sono stati effettuati in cinque campi visivi arbitrari distribuiti in tre sezioni per animale.
10. Misurazione di LPS e IL-1β
Dopo il test rotatoriod, sei topi di ogni gruppo sono stati selezionati casualmente. I topi sono stati anestetizzati con isoflurano e il sangue è stato raccolto. I campioni di sangue sono stati centrifugati a 5.000 × g e 4 °C per 10 minuti, e il siero è stato raccolto. L'emisfero destro del cervello è stato prelevato e sono stati preparati omogeneati cerebrali in un rapporto di 1:3 (peso cerebrale in grammi rispetto al volume PBS in millilitri). Gli omogeneati sono stati centrifugati a 12.000 × g e 4 °C per 10 minuti. Le concentrazioni proteiche nel surnatante sono state determinate utilizzando un kit BCA. I livelli di LPS e IL-1β sia nel siero che nell'omogeneato cerebrale sono stati misurati utilizzando kit ELISA, seguendo le istruzioni del produttore.
11. Microscopia elettronica a trasmissione
Per l'esame microscopico elettronico, tre animali di ogni gruppo sono stati selezionati casualmente dopo il test rotatorio. I topi sono stati anestetizzati con isoflurano e hanno subito una perfusione transcardiaca con glutaraldeide al 2% e paraformaldeide al 2,5% in PBS 0,1 M (seguendo protocolli istituzionalmente approvati). Il cervello, il jegiuno e l'ileo sono stati poi prelevati e inseriti al 2% di glutaraldeide in un tampone cacodilato di 0,1 M (pH 7,4) a 4 °C durante la notte. I campioni sono stati successivamente trasferiti a tetrossido di osmio all'1% per 1 ora a temperatura ambiente. I tessuti sono stati tagliati in sezioni ultrasottili (50 nm). Dopo la disidratazione, le sezioni venivano colorate con acetato di uranile e citrato di piombo per l'osservazione al microscopio elettronico a trasmissione. Tutte le sezioni sono state valutate in modo cieco e fotografate con un microscopio elettronico a trasmissione.
12. Riconoscimento di oggetti nuovi
A 29 giorni dalla modellazione dell'ICH, è stato eseguito il nuovo test di riconoscimento degli oggetti per valutare la funzione di apprendimento e memoria dei topi. Il primo giorno, nessun oggetto è stato inserito nell'apparecchio (lunghezza: 40 cm, larghezza: 40 cm, altezza: 40 cm), permettendo ai topi di esplorare liberamente per 5 minuti. Il secondo giorno, due oggetti identici sono stati inseriti nell'apparecchio e ai topi è stato permesso di esplorarli per 5 minuti. Ventiquattro ore dopo, uno degli oggetti fu sostituito da uno nuovo. I topi hanno esplorato di nuovo i due oggetti per 5 minuti. Il tempo di esplorazione veniva registrato quando il naso del topo toccava un oggetto o quando la sua testa era orientata verso l'oggetto entro una distanza di 1 cm. Il tempo dedicato all'esplorazione dell'oggetto originale è stato misurato e calcolato. Un tempo di esplorazione più lungo dell'oggetto nuovo indica una migliore capacità di apprendimento e memoria.
13. Labirinto d'acqua Morris
A 32 giorni dalla modellazione dell'ICH, le funzioni di apprendimento e memoria sono state valutate utilizzando il labirinto acquatico Morris. L'apparato consisteva in una vasca circolare (diametro: 100 cm, altezza: 40 cm) riempita d'acqua (profondità: 25 cm) mantenuta a 22 °C ± 1 °C. Una piattaforma di fuga (diametro: 9 cm) era sommersa a 1 cm sotto la superficie dell'acqua. Nel test di navigazione, i topi hanno subito quattro prove al giorno. Il tempo necessario per trovare la piattaforma è stato registrato come latenza di fuga. I topi che non riuscivano a localizzare la piattaforma entro 60 secondi venivano gentilmente guidati verso di essa. Il quinto giorno è stato condotto un test di sonda a 60 secondi. La funzione di memoria veniva valutata registrando la latenza di fuga, il numero di attraversamenti della piattaforma e il tempo trascorso nel quadrante bersaglio. I dati sono stati analizzati utilizzando software di tracciamento video.
14. Analisi statistica
I dati sono stati analizzati utilizzando il software GraphPad Prism versione 7.0. I risultati sono presentati come deviazione media ± standard. Il test di Shapiro-Wilk è stato utilizzato per valutare se i dati di ciascun gruppo seguissero una distribuzione normale. Le differenze tra i gruppi sono state analizzate tramite ANOVA unidirezionale seguite dal test post hoc di Tukey. Per i confronti non parametrici, è stato utilizzato il test di Kruskal-Wallis seguito dal test di Dunn. Un p-valore di <0,05 è stato considerato statisticamente significativo.