$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Il protocollo dello studio sugli animali è stato approvato dal Comitato per la Cura e l'Uso Istituzionale degli Animali della Chongqing Medical University (IACUC-CQMU-2025-10073).
Preparazione della frazione arricchita di lattone sesquiterpene (SLEL)
Materiali medicinali essiccati di Eupatorium lindleyanum DC. sono stati polverizzati e sottoposti a estrazione da reflusso 2 volte con etanolo al 70% (v/v) a pressione ridotta. Ogni estrazione è stata effettuata con un rapporto solvente-materiale di 10:1 (v/w) per 2 ore. Gli estratti combinati venivano filtrati, concentrati a pressione ridotta a ≤60 °C e successivamente liofilizzati al vuoto per ottenere la polvere grezza di estratto di etanolo.
L'estratto essiccato è stato completamente disciolto in acqua distillata (concentrazione finale: 100 mg/mL) e sottoposto sequenzialmente a cromatografia in resina poliammidica, seguita da cromatografia macroporosa con resina adsorbitiva D101 per arricchire lattoni sesquiterpeni. Dopo aver raggiunto l'equilibrio di adsorbito, la resina D101 veniva lavata con acqua distillata per rimuovere impurità polari e poi eluita con etanolo anidro. Dopo l'eluzione da etanolo, la frazione raccolta veniva concentrata a pressione ridotta e sottoposta a liofilizzazione per produrre la frazione SLEL, che veniva conservata a −20 °C fino all'utilizzo.
La separazione è stata ottenuta su una piattaforma UPLC che impiega un sistema di fasi binaria mobile di acetonitrile e acido formico allo 0,1% (v/v) in acqua. Il programma di gradiente comprendeva una tenuta isocratica iniziale di 25 minuti a basso contenuto organico, una breve rampa lineare al 70% di acetonitrile, una fase ad alto gradino organico al 90% di acetonitrile e un passo finale di equilibrio per il ritorno alle condizioni iniziali. Il sistema operava a 0,25 mL·min⁻1 con una temperatura di colonna di 35 °C e un volume di iniezione di 0,1 μL (Figura Supplementare S1).
Animali
In questo studio sono stati utilizzati in totale 36 maschi di ratti Sprague–Dawley (200 ± 20 g) e 36 maschi di topi BALB/c (20 ± 2 g). Gli animali venivano ospitati in condizioni standardizzate (22 ± 2 °C, 55 ± 5% di umidità, 12 ore di ciclo chiaro/oscuro) con libero accesso a cibo e acqua. Gli animali sono stati acclimatati per 7 giorni prima della sperimentazione e monitorati quotidianamente per la salute generale. Tutte le procedure sono state condotte per minimizzare la sofferenza animale e l'anestesia è stata applicata prima della raccolta del sangue e del prelievo dei tessuti.
Edema dell'orecchio indotto da xilene nei topi
Il modello dell'edema dell'orecchio del topo è stato stabilito come descrittoin precedenza 9. Dopo l'acclimatazione, i topi sono stati suddivisi casualmente in sei gruppi (n = 6 per gruppo): controllo (CG), modello (MG), desametasone (DEX, 10 mg/kg) e SLEL a bassa dose (75 mg/kg), a dosi medie (150 mg/kg) e gruppi ad alta dose (300 mg/kg). Tutti i trattamenti sono stati somministrati con gavaga orale una volta al giorno per 7 giorni consecutivi (volume di dosaggio finale: 10 mL/kg). A 1,5 ore dall'ultima somministrazione, l'infiammazione è stata indotta applicando 30 μL di xilene in modo uniforme su entrambe le superfici dell'orecchio destro, tranne che nel gruppo di controllo. Trenta minuti dopo, i topi sono stati anestetizzati, sono stati prelevati campioni di sangue e sono stati prelevati punzoni circolari da 8 mm da posizioni anatomiche identiche di entrambe le orecchie.
Edema delle zampe indotto dalla carragenan nei ratti
Il modello dell'edema delle zampe di ratto è stato stabilito utilizzando carragenina, come descrittoin precedenza 10. I ratti sono stati assegnati casualmente in sei gruppi (n = 6 per gruppo): CG, MG, DEX (5 mg/kg) e SLEL a bassa dose (50 mg/kg), a dosi medie (100 mg/kg) e ad alta dose (200 mg/kg). I trattamenti sono stati somministrati per via orale una volta al giorno per 7 giorni (10 mL/kg). I volumi di base delle zampe sono stati misurati prima della dose finale. Trenta minuti dopo l'ultima somministrazione, 0,1 mL di soluzione di carragenina al 1% (w/v) sono stati iniettati sottocutaneamente sulla superficie plantare della zampa posteriore destra. I volumi delle zampe sono stati misurati a 1, 2, 3 e 4 ore dopo l'iniezione utilizzando un pletissometro. L'edema delle zampe è stato calcolato come:
Edema delle zampe (%) = (Vt − V0) / V0 × 100%
Esame istologico
I tessuti dell'orecchio e delle zampe sono stati prelevati immediatamente dopo le valutazioni funzionali. I tessuti sono stati fissati in formalina tamponata al 10% di neutro per 72 ore a temperatura ambiente, incorporate nella paraffina, sezionate (5 μm) e colorate con H&E secondo i protocollistandard 11.
Saggio immunoenzimatico legato (ELISA)
I campioni di siero sono stati prelevati tramite centrifugazione a 3.000 × g per 10 minuti a 4 °C. I livelli di TNF-α, IL-6 e IL-1β sono stati quantificati utilizzando kit ELISA disponibili in commercio secondo protocolli standard.
Analisi del western blot
Gli estratti proteici totali sono stati preparati da tessuti di orecchio e zampe utilizzando il tampone di lisi RIPA integrato con inibitori di proteasi e fosfatasi. Le concentrazioni proteiche sono state quantificate tramite un saggio BCA e quantità uguali di proteina (30 μg per campione) sono state risolte tramite SDS-PAGE e trasferite sulle membrane PVDF. Le membrane sono state bloccate con il 5% di latte scremo per 1 ora a temperatura ambiente, seguite da incubazione con anticorpi primari a 4 °C durante la notte e anticorpi secondari coniugati con HRP per 1 ora a temperatura ambiente. Le bande immunoreattive sono state rilevate tramite chemiluminescenza potenziata e quantificate con il software ImageJ.
PCR quantitativa in tempo reale (qRT-PCR)
L'RNA totale è stato isolato dai tessuti dell'orecchio e delle zampe utilizzando il reagente di estrazione dell'RNA elencato nella Tabella dei Materiali. Un microgrammo di RNA totale è stato trascritto inversamente in cDNA utilizzando un kit commerciale di trascrizione inversa secondo le istruzioni del produttore. La PCR quantitativa è stata eseguita utilizzando la chimica SYBR Green con primer specifici per geni (Tabella 1) in un volume di reazione di 10 μL sotto un protocollo di amplificazione in due fasi. Le condizioni dettagliate di trascrizione inversa e i parametri di ciclo PCR sono forniti nella sezione Protocollo. I livelli relativi dei trascrizioni sono stati calcolati utilizzando il metodo 2⁻ΔΔCT , con Gapdh usato come gene di riferimento interno.
Dati e analisi statistica
I dati sono espressi come media ± SD. I confronti statistici tra due gruppi sono stati effettuati utilizzando un test t di Student non accoppiato, mentre l'ANOVA unidirezionale è stata applicata per analisi che coinvolgono più di due gruppi. La significatività statistica è stata definita come p < 0,05. La significatività è indicata come # p < 0,05 e ## p < 0,01 rispetto al gruppo di controllo (CG), e * p < 0,05 e ** p < 0,01 rispetto al gruppo modello (MG).