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Proteine di superficie sono fondamentali per la capacità della cellula di reagire al suo ambiente e di interagire con le cellule vicine. Essi sono noti per essere induttori di quasi tutti i segnali intracellulari. Inoltre, essi svolgono un ruolo importante nell'adattamento ambientale e trattamento farmacologico, e spesso sono coinvolti nella patogenesi della malattia e patologia (1). Interazioni proteina-proteina sono intrinseche vie di segnalazione, e per ottenere un quadro più chiaro in questi complessi processi biologici, metodi sensibili e affidabili sono necessari per lo studio delle proteine di superficie delle cellule. Bidimensionale (2-D) elettroforesi è ampiamente utilizzato per il rilevamento dei biomarcatori e altri obiettivi in campioni di proteine complesse per studiare i cambiamenti differenziale. Proteine di superficie cellulare, in parte a causa della loro abbondanza basso (1 2% di proteine cellulari), sono difficili da individuare in un 2-D gel senza frazionamento o qualche altro tipo di arricchimento. Sono anche spesso poco rappresentati in 2-D gel a causa della loro natura idrofobica e ad alto peso molecolare (2). In questo studio, presentiamo un nuovo protocollo per le cellule intatte mediante CyDye DIGE coloranti Fluor minimi specifici per l'etichettatura e la rilevazione di questo importante gruppo di proteine. I risultati hanno mostrato specifici dell'etichettatura di un gran numero di proteine di superficie delle cellule con l'etichettatura minimo di proteine intracellulari. Questo protocollo è rapido, semplice da usare, e tutti CyDye tre DIGE coloranti Fluor minima (Cy 2, 3 e Cy Cy 5) può essere usato per etichettare superficie cellulare delle proteine. Queste caratteristiche consentono di multiplexing utilizzando il 2-D elettroforesi su gel a fluorescenza Differenza (2-D DIGE) con tecnologia DIGE Ettan e l'analisi dei cambiamenti dell'espressione proteica con DeCyder 2-D Software differenziale di analisi. Il livello di superficie cellulare delle proteine è stato seguito durante il digiuno nel siero di cellule CHO per varie lunghezze di tempo (vedi tabella 1). Piccoli cambiamenti in abbondanza sono stati rilevati con elevata precisione, ed i risultati sono supportati da definire metodi statistici.