Articolo metodologico

Protocollo per la coltura neuroni simpatico da Rat gangli cervicale superiore (SCG)

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DOI:

10.3791/988

30 gennaio 2009

In questo articolo

Sommario

Questo è un protocollo che descrive come isolare e colture primarie di neuroni simpatici gangli cervicale superiore (SCG) di cuccioli di ratto appena nati.

Abstract

I gangli cervicale superiore (SCG) nei ratti sono piccole, lucide, a mandorla strutture che contengono neuroni simpatici. Questi neuroni fornire innervazioni simpatico per la testa e del collo e costituiscono una popolazione ben caratterizzato e relativamente omogenea (4). Neuroni simpatici dipendono dal fattore di crescita nervosa (NGF) per la crescita sopravvivenza, differenziazione e assonale e la diffusa disponibilità di NGF facilita la loro cultura e la manipolazione sperimentale (2, 3, 6). Per queste ragioni, colture di neuroni simpatici sono stati utilizzati in una vasta gamma di studi tra cui lo sviluppo neuronale e la differenziazione, i meccanismi della morte cellulare programmata e patologiche, e trasduzione del segnale (1, 2, 5 e 6). Sezionare la SCG di ratto appena nati e dei neuroni simpatici coltura non è molto complicata e può essere imparato abbastanza rapidamente. In questo articolo, descriveremo in dettaglio come sezionare la SCG da cuccioli di ratto appena nati e di utilizzarle per stabilire le culture di neuroni simpatici. L'articolo si descrivono anche le fasi preparatorie e reagenti vari e le attrezzature che sono necessarie per raggiungere questo obiettivo.

Protocollo

1. Preparazione per la dissezione:

  1. Selezionare il piatto appropriata cultura (10 cm o piastre 6-24-bene o bene, ecc) a seconda della natura dei vostri esperimenti, e il cappotto con coda di topo collagene 24 ore prima della dissezione. I metodi per la preparazione di ratto coda di collagene e di utilizzarlo per i piatti della cultura cappotto sono stati descritti altrove (1).
  2. Preparare una soluzione di tripsina 0,25% in tampone fosfato (PBS) (nessun EDTA) e filtro sterilizzare. Preparare 1 ml di aliquote e conservare a -20 ° C.
  3. Preparare una soluzione contenente 2,5 mM ciascuno di uridina e 5-FDU in distillata / deionizzata H 2

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Discussione

Noi usiamo ratti Sprague Dawley per le nostre culture.

Prendetevi il tempo e attenzione durante la pulizia dei gangli. Rimuovere tutti, detriti vasi sanguigni e grasso. Questo passo è importante per garantire una cultura che è più o meno omogeneo e privo di tipi di cellule estranee. L'aggiunta di uridine/5-FDU in gran parte eliminare eventuali cellule rimanenti non neuronali (mitosi) che contaminano la cultura, o almeno sopprimere la proliferazione.

Inoltre, durante la fase di dissociazione, di pazienza e il tempo di sep.......

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Dichiarazioni

Gli autori non hanno nulla da dichiarare.

Ringraziamenti

NZ ringrazia laboratorio membri Subhas Biswas, Andrew Sproul, e Ryan Willet per la formazione lei in dissezione e la raccolta neuroni simpatici. Supportato anche da finanziamenti del NIH-NINDS.

....

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Materiali

Elenco dei materiali utilizzati in questo articolo
NomeAziendaNumero di catalogoCommenti
Pinzette, acciaio inossidabile #5StrumentoRoboz Surgical Instruments Co.RS4976
Forbici, DEAVER dritte con lame affilate-smussate da 43 mm - 5,5StrumentoRoboz Surgical Instruments Co.RS6760
RPMI 1640 con L-GlutaminaReagenteCellgro10-040-CV
Siero fetale bovinoReagenteSAFC Global12103c
Siero equino da donatoreReagenteJRH Biosciences12449Inattivare termicamente incubando in bagnomaria a 56°C per 30 minuti.
Penicillina/streptomicinaReagenteGIBCO, by Life Technologies15140-122
Tripsina senza EDTAReagenteDifco LaboratoriesMT 25-050-CI
UridinaReagenteSigma-AldrichU3003
5-Fluoro-5’ deossiuridinaReagenteSigma-AldrichF-8791
NGFReagenteHarlan LaboratoriesBT-5025
Microscopio per dissezione e sorgente luminosaMicroscopio
Provette in polipropilene da 15 mlStrumentoBD Biosciences352096
Piastre per colture cellulariStrumentoCorning

Riferimenti

  1. Banker, G., Goslin, K. Culturing Nerve Cells. , MIT Press. (1998).
  2. Biswas, S. C., Shi, Y., Sproul, A., Greene, L. A. Pro-apoptotic Bim Induction in Response to Nerve Growth Factor Deprivation Requires Simultaneous Activation of Three Different Death Si....

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Tag

Fattore di crescita nervosoDissociazione cellulareRivestimento al collagenePipetta levigata a fiammaTrattamento con tripsinaUridine FDUColtura cellulare primariaCuccioli di ratto

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