Name: Trasferimento nucleare in oociti mouse (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2006-11-30T00:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 17 s
Description: Impara la tecnica di trasferimento nucleare in oociti di topo per riprogrammare nuclei differenziati in stato embrionale. Questo metodo supporta la ricerca sulle cellule staminali e la medicina rigenerativa.

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DE desidera ringraziare il Dott. Hide Akutsu per la condivisione dei suoi trucchi NT e il Dr. Stephen Sullivan e Garrett Birkhoff per la lettura critica del protocollo.

Preparazioni: <ol><li class="jove_step"> Una descrizione dettagliata di superovulazione e di coltura degli embrioni MicroDrop può essere trovato altrove 2. </li><li class="jove_step"> Preparare una capsula di Petri con microgocce di medio dell&#39;embrione cultura (ad esempio KSOM, Chemicon). Coprite con olio minerale (olio minerale lotti dovrebbero essere testati per la compatibilità con la cultura degli embrioni). Equilibrare a 37 ° C in aria più il 5% di CO 2. (In Thermo-Electron acqua incubatore 3110 camicia o equivalente) </li><li class="jove_step"> Preparare un piatto per l&#39;isolamento degli ovociti: gocce Luogo di Hepes tamponata CZB &amp; ialuronidasi (0,1% w / v, Sigma) in una metà del piatto e HCZB nell&#39;altra metà. Coprire con olio minerale. Tenere il piatto caldo su un palco riscaldato di un microscopio a dissezione. </li><li class="jove_step"> Preparare il microscopio: Inserire una pipetta possesso di un diametro esterno di circa 50 μ m (leggermente più piccolo del diametro del ovocita), e un&#39;apertura di circa 20 m di μ in un titolare pipetta. Pipette holding sono facili da fare con l&#39;attrezzatura necessaria, un ago estrattore (Sutter Instruments) e un microforge (Narishige), ma possono anche essere acquistati presso Humagen. Carico 3-5 mercurio l μ nella coda di una micropipetta (diametro interno 8 m μ). Evitare dispersioni di mercurio. Preparare un piatto con varie piccole gocce ciascuno del 11% w / v PVP (polivinilpirrolidone) in HCZB e 5 μ g / ml citocalasina B in HCZB. Utilizzare il coperchio di una capsula di Petri piuttosto che il piatto come il coperchio ha un cerchio breve che non interferisce con il movimento della azienda e delle pipette enucleazione. Allineare la pipetta holding e la pipetta enucleazione di un calo HCZB. Aspirare uno HZCB piccolo nella punta della pipetta holding. </li><li class="jove_step"> Preparazione delle cellule del donatore dipende in gran parte dal tipo di cellula e l&#39;esperimento il ricercatore intende svolgere. In generale, le cellule del donatore devono essere trattati con un enzima proteolitico come la tripsina e tenuta in ghiaccio per ridurre la viscosità fino al trasferimento. </li><li class="jove_step"> Umanamente eutanasia topi 14-15 ore dopo la somministrazione di hCG. Ovidotti raccolta e sezionare loro nel warm-HCZB ialuronidasi gocce. Dopo circa. 5 min, gli ovociti saranno per lo più privo di cellule del cumulo. Dovrebbero poi essere lavati più volte in HCZB, poi lavata ulteriormente nella pre-equilibrata gocce KSOM, e tenuti in incubatrice fino enucleazione. </li></ol> Enucleazione Manipolazioni sono fatto con micromanipolatori idraulica, (Narishige) su un microscopio invertito, come il TE200 Nikon. Un micromanipolatore piezo (PrimeTech) utilizzate per l&#39;esecuzione la zona pellucida. A punta piatta enucleazione e pipette di trasferimento può essere acquistato da Humagen. Pulire e lubrificare la pipetta enucleazione nelle gocce PVP espellendo microscopiche gocce di mercurio e aspirando ed espellendo PVP. Per evitare che l&#39;ago di vischiosità, la stessa procedura deve essere eseguita tra ogni gruppo di ovociti che sono o enucleato o trasferiti. Mettere un piccolo gruppo di ovociti nella HCZB-citocalasina goccia B. La dimensione del gruppo dovrebbe essere adattata al livello di esperienza del ricercatore. Ovociti non dovrebbe essere tenuto sul palco per più di 20-30 minuti. Spostare gli strumenti per la HCZB-citocalasina B gocce. La pipetta holding e la pipetta enucleazione devono essere messe in allineamento con il piano equatoriale della ovocita. Questo sarà possibile se la pipetta azienda sia un diametro esterno che è leggermente più piccolo rispetto alla stessa ovocita. Ruotare un ovocita fino a quando il mandrino metafase differente rifrazione può essere visto. Se un principiante non può vedere il mandrino, la piastra di metafase possono essere identificati con il DNA colorante Hoechst e illuminazione UV, tuttavia, che non è compatibile con efficiente lo sviluppo embrionale. Posizionare il mandrino metafase a ore 3 e tenerlo bene con la pipetta in mano. Applicare gli impulsi piezoelettrici a penetrare la zona pellucida. Toccare la piastra in metafase, con la pipetta enucleazione. Una volta che la resistenza del fuso metafase può essere &#39;sentita&#39;, aspirare il mandrino e ritirare l&#39;ago. Il citoplasma dell&#39;ovocita è fluida, il mandrino metafase si muove però come un cespuglio quando è toccato con la pipetta. Cercare di ridurre la quantità di citoplasma che viene rimosso con il mandrino. Dopo che un gruppo di ovociti è stato enucleato, lavarli con la cultura media degli embrioni e metterli in incubatrice fino al trasferimento. Enucleato alcuni ovociti non devono essere trasferiti, ma dovrebbe essere attivato e servire come controllo per l&#39;enucleazione. Questi ovociti si frammenterà entro alcune ore, indicando l&#39;enucleazione di successo. Trasferimento nucleare Cellule posto nella soluzione di PVP (11% PVP in HCZB). Se molti cloni arresto a 1-cellula fase, la concentrazione PVP dovrebbe essere abbassata al 5% o meno. Cellule Mescolare bene arguziah PVP. Raccogliere le cellule con una pipetta con un diametro interno leggermente inferiore al diametro della cellula. La membrana della cellula si rompe su aspirazione. In alcuni casi, l&#39;espulsione ripetitivi e aspirazione così come l&#39;applicazione di impulsi piezoelettrici dolce può essere utilizzato per rompere la cellula donatrice. Una nuova goccia di cellule del donatore deve essere effettuato con ogni gruppo di ovociti vengono trasferiti, come cellule del donatore diventare appiccicoso dopo qualche tempo. Iniettare la cellula donatrice rotto poco dopo la rottura della membrana. Per il trasferimento, si concentrano sul piano equatoriale della stessa ovocita piuttosto che il piano equatoriale della zona pellucida, e posizionare il trasferimento e la pipetta tenendo sullo stesso piano. Tenere l&#39;ovocita compresa una parte del suo citoplasma con fermezza. Penetrare nella zona pellucida l&#39;uso di impulsi piezoelettrici. Portare il nucleo donatore alla punta della pipetta, quindi spingere la punta della pipetta quasi al lato opposto della ovocita enucleato, vicino alla pipetta detenzione, facendo un solco profondo nell&#39;ovocita. Aspirare una piccola quantità di citoplasma dell&#39;ovocita nella pipetta, applicare un unico polso debole piezo per rompere la membrana dell&#39;ovocita, espellere il nucleo donatore, ritirare l&#39;ago aspirare rapidamente, mentre a livello della membrana citoplasmatica all&#39;estremità destra del solco. Contemporaneamente estrarre l&#39;ago e aspirazione, dovrebbe essere possibile chiudere il buco lasciato da NT. Questo &#39;tecnica di rimozione buco ridurrà il numero di ovociti che lyse durante NT. Lavare gli ovociti ricostruito nel KSOM e restituirli al incubatore per 1-3 ore. Ovocita di attivazione Preparare la metà di un piatto con goccioline di calcio MCZB libero e l&#39;altra metà con gocce di calcio MCZB libero più 10mM Sr 2 + e 5 μ g / ml citocalasina B per inibire l&#39;estrusione del corpo polare. Equilibrare per 30 min. sotto del 5% di CO 2 in aria. Lavare bene gli embrioni NT di calcio senza MCZB e poi metterli in piccoli gruppi in diverse gocce di calcio senza MCZB. Ritorna il piatto per l&#39;incubatore e la cultura per 5-6 ore. Per il controllo per il protocollo di attivazione artificiale e per le condizioni di coltura degli embrioni, non ovociti enucleati dovrebbe essere usato. Essi si svilupperà come embrioni partenogenetiche. Dopo l&#39;attivazione, lavare gli embrioni attraverso gli embrioni KSOM e posto nell&#39;incubatore a lungo termine cultura. Pronuclei deve essere visibile a questo punto del tempo, che indicano il trasferimento di successo. Embrione Cultura Media Cookbook Maestro Sali Iniziare con 980 ml ​​ultrapura H 2 O in sterili 1 bottiglia L Aggiungere componenti a secco: NaCl 4760 mg (81mm) Sigma S-5886 KCl 360 mg (5 mm) Sigma P-5405 MgSO 4 • 7H 2 O 290 mg (1.18mM) Sigma M-2773 KH 2 PO 4 160 mg (1.17mM) Sigma P-5655 EDTA 2NA 40 mg (0,1 mm), Sigma E-6635 Glucosio (D) 1000 mg (5,5 mm) Sigma G-6152 Aggiungi componenti liquidi Na-lattato (acido lattico) 5,3 ml &amp; nbsp; Sigma 44263 Pen&#39;Strep 10 mL Gibco 15140-122 Per Sali Archivi MCZB: Filtro sterilizzare 500 sali maestro mL (buon per 3-4 mesi; conservare a 4 ° C) Per Sali Archivi HCZB: Iniziare con 500 ml sali maestro Aggiungere 50 mg di PVA (freddo solubile; Sigma P-8136) Mescolare per 30-60 min e filtro sterile (buon per 3 mesi; conservare a 4 ° C) Ca + + libero MCZB (per l&#39;attivazione ovociti in 5% CO 2) Iniziare con 99 ml di sali magazzino MCZB Aggiungere componenti a secco: NaHCO 3 211 mg Sigma S-5761 Na-piruvato (acido piruvico) 3 mg Sigma P-4562 L-Glutamina 15mg Sigma G-8540 Albumina sierica bovina (BSA) 500 mg Sigma A-3311 Agitare fino a quando tutti i componenti sono sciolto; filtro sterile. HCZB (per micromanipolazione in atmosfera ambiente) Iniziare con 99 ml di sali magazzino HCZB Aggiungere componenti a secco: Hepes-Na 520 mg Sigma H-3784 NaHCO 3 42 mg Sigma S-5761 Aggiungere componenti liquidi: 128 mm CaCl 2 (18.8g / l) 1 ml di Sigma C-7902 Regolare il pH a 7,5 con 1 N HCl Agitare fino a completa dissoluzione; filtro sterile.

<ol><li>Eggan, K., Jaenisch, R. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aEggan%2C+K+%22Mammalian+and+Avian+Transgenesis-+New+Approaches%22">Mammalian and Avian Transgenesis- New Approaches</a>. Pease, S., Lois, C. , Springer. (2006).</li>
<li>Nagy, A., Gertsenstein, M., Vintersten, K., Behringer, R. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aNagy%2C+A+%22Manipulating+the+mouse+embryo%22">Manipulating the mouse embryo</a>. Press, C. S. H. L. , (2003).</li>
<li>Wakayama, T., Perry, A. C., Zuccotti, M., Johnson, K. R., Yanagimachi, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Full-term+development+of+mice+from+enucleated+oocytes+injected+with+cumulus+cell+nuclei%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Full-term development of mice from enucleated oocytes injected with cumulus cell nuclei.</a> Nature. 394, 369-374 (1998).</li>
</ol>

Gli autori non hanno nulla da dichiarare.

Si prega di verificare la presenza di ulteriori composizioni buffer nella parte protocollo.

trasferimento nucleare in oociti mouse

Nuclear Transfer into Mouse Oocytes

Trasferimento nucleare in un ovocita non fecondato in grado di ripristinare il potenziale di sviluppo di una cellula differenziata. Questo dimostra che i processi alla base dello sviluppo, la differenziazione e l&#39;invecchiamento sono epigenetiche, piuttosto che processi genetici. La reversibilità di questi processi si apre interessanti prospettive nella ricerca di base, e in un futuro più lontano, nella medicina rigenerativa. Nel topo, le cellule staminali embrionali possono essere derivate da embrioni clonati fase preimpianto. Tali cellule staminali embrionali hanno la capacità di dare origine a tutti i tipi di cellule dell&#39;organismo adulto. È importante sottolineare che queste cellule sono geneticamente identiche al donatore. Se applicabile a uomo, ciò permetterebbe la derivazione di cellule staminali da un paziente. Queste cellule potrebbero poi essere differenziate nel tipo di cellula colpita del paziente e studiate in vitro, o utilizzati per sostituire le cellule danneggiate o mancanti. Lo studio del trasferimento nucleare nel topo rimane importante perché ci può diffondere i principi della riprogrammazione nucleare. Questo film e il protocollo di accompagnamento hanno lo scopo di aiutare l&#39;apprendimento trasferimento nucleare nel topo, un metodo sviluppato inizialmente nel gruppo del Prof. Yanagimachi (WAKAYAMA et al. 1998).

Questo film e il protocollo hanno lo scopo di aiutare l&#39;apprendimento di trasferimento nucleare.

Trasferimento nucleare in oociti mouse

Il trasferimento nucleare in un ovocita non fecondato può ripristinare il potenziale di sviluppo di una cellula differenziata. Ciò dimostra che i processi alla base di...

Quindi eseguiamo il trasferimento nucleare NU perché il nostro gruppo è interessato al riprogrammamento. Questo è un processo affascinante, in cui il nucleo differenziato può essere riprogrammato in uno stato embrionale. Questi sono i reagenti caso SUM e HCCV e questa è l'ialuronidasi.E innanzitutto preparo una piastra con, e questa andrà negli incubatori per equilibrare con una atmosfera di CO2. Queste sono gocce, diverse gocce per Turing ricoperte con olio minerale. In questo modo si calibra l'atmosfera di CO2.Ora preparare una goccia di HCZB. Questa verrà utilizzata per il lavaggio. Questa è ricca di giorni e nuovamente coperta da questo olio minerale.Questo alto, questo diminuisce con l'ialuronidasi. Questa parte qui è costituita soltanto da gocce di HCCP. Queste sono per il lavaggio.Questo serve a rimuovere le cellule ulu dal lato O. Questo stadio viene riscaldato, quindi si riscalderà finché non tornerò a prendere i segni di olio dai topi e a coprire tutto con olio minerale. Qui ci sono gocce di PVP per la pulizia dell'ago e per inserire le cellule, e questo è HCCB più Cyla B. E qui eseguirò le manipolazioni.Ok, questo qui è un ago di colore. Quello che sto facendo ora è estr

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