Name: Spettroscopia di Risonanza Magnetica dal vivo Drosophila melanogaster Utilizzando Magic Angle Spinning (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-04-15T16:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 33 s
Description: Scopri la spettroscopia HRMAS 1H-MRS per la caratterizzazione molecolare di Drosophila melanogaster vivi. Questa tecnica non invasiva analizza i metaboliti in vivo con uno spettrometro a 14,1 tesla.

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Questo lavoro è stato sostenuto in parte da una National Institutes of Health (NIH) a concedere AI063433 Laurence G. Rahme, una Istituti National Institute of Health (NIH) Centro Grant (P50GM021700) di Ronald Tompkins G. (A. Tzika Aria, Direttore del il nucleo NMR), e un Ospedale per i bambini Shriner assegno di ricerca (# 8893) ad A. Aria Tzika. Ringraziamo Dionyssios Mintzopoulos Ph.D. per l&#39;assistenza nelle fasi iniziali di sviluppo di questo protocollo e Ovidiu C. Andronesi Ph.D. per l&#39;assistenza con la sequenza di impulsi TOBSY.

Parte 1: Preparazione della Drosophila per le misure HRMAS <ol><li> Utilizzando le normali procedure flylab 1, raccogliere nuovi eclosing vola per 3 giorni e trasferirli a volare flaconi contenenti prodotti alimentari freschi volare. Incubare le mosche raccolti per 5 giorni in modo che le mosche diventerà 5-8 giorni vecchio appena prima dell'esperimento. Solo sesso (in genere maschi) viene utilizzato per gli esperimenti. </li><li> Uso sano, integro tipo selvatico vola da confrontare con trattati esempio traumatizzati o geneticamente modificati vola 1. </li><li> Luogo vola sola in provette da 2 ml contenente un pezzo (~ 0,2 ml) di volare cibo 24 ore prima dell'esperimento. Questi tubi sopportare un buco nella coppa effettuata utilizzando un tubo di fiamma riscaldato ago da insulina. </li><li> Pesare i tubi immediatamente prima e dopo l'inserimento volo usando una bilancia ad alta precisione e definire il peso di ogni volo s sottraendo il primo valore da quest'ultima. Una mosca singolo maschio pesa generalmente 0,7-1 mg. </li></ol> Parte 2: Preparazione del rotore HRMAS. <ol><li> Posizionare un unico tubo in ghiaccio per meno di un minuto per anestetizzare la parte interna volare. </li><li> Posare il volo su uno strato di foglio di alluminio posti su ghiaccio e spingere il volano dolcemente nello spazio vuoto semisferica dell'inserto rotore NMR con una spazzola morbida per evitare un inserimento completo volare evitando lesioni volare. </li><li> Collocare l'inserto in ossido di zirconio (ZrO 2) tubo rotore (4 mm di diametro, 50 ml) per individuare le mosche tra l'inserto del rotore e la parte inferiore del rotore (vedi figura 1). </li><li> Chiudere l'inserto con una vite e coprire con parafilm (vedi figura 1) per evitare il contatto tra la mosca e la soluzione TSP standard (TSP: trimetilsilil-propionico-2 ,2,3,3-d4 acido, Mw = 172, δ = 0,00 ppm, 50 mm in deuterato acqua-D 2 O, che funzionano come un punto di riferimento per entrambi i turni di risonanza chimica e quantificazione). </li><li> Aggiungere 8 ml di soluzione standard di TSP in cima al rotore inserto. (Vedi figura 1). </li><li> Fissare e serrare il tutto allestito nella rotori con un tappo superiore (vedi figura 1). </li></ol> Parte 3: HRMAS Data Acquisition <ol><li> Introdurre il rotore nella sonda HRMAS e posizionarlo in un angolo magico 54,7 ° (vedi figura 1). </li><li> Impostare la temperatura a 4 ° C da un BTO-2000 unità in combinazione con il pneumatico MAS. Le mosche sono conservati a 4 ° C, mentre nello spettrometro per mantenere l'anestesia. </li><li> Impostare il HRMAS 1 H MRS velocità di rotazione a 2 MAS kHz. </li><li> Stabilizzare la rotazione MAS frequenza a 2,0 ± 0,001 kHz da un regolatore di velocità MAS (frequenza di rotazione). </li><li> Per la preparazione magnete: sintonia e corrispondenza della bobina per ottimizzare prestazioni e spessore il magnete per una qualità ottimale degli spettri. </li><li> Acquistare una dimensione 1 spettri H con rotore sincronizzato Carr-Purcell-Meiboom-Gill (CPMG) sequenza di spin echo impulsi 2, [90 ° - (τ-180 ° - τ) n-acquisizione], che funziona come un filtro a 2 T rimuovere l'ampliamento dello spettro 1 H NMR singolo volo di spettri acquisiti unidimensionale dati su tutti i campioni. Sincronizzare l'inter-impulso ritardo (τ = 500μs) per la frequenza di rotazione MAS (2 kHz). Impostare il numero dei transitori a 256 con 32.768 (32k) punti di dati. Tempo di acquisizione 9 min. </li><li> Acquisire bidimensionali (2D) 1 H-1 H NMR HRMAS singolo volo spettri su tutti i campioni utilizzando una sequenza TOBSY con adiabatico impulsi 3. Parametri di acquisizione sono: dimensione 2k punti dati diretto (11 ppm larghezza spettrale), acqua 1 s pre-saturazione durante il ritardo di rilassamento, 8 scansioni per incremento, 128 incrementi, tempo di ripetizione totale di 2 s, 45 ms di tempo di miscelazione, e un acquisizione totale tempo di 29 min. </li></ol> Parte 4: elaborazione dei dati / Analisi <ol><li> Analizzare la MRspectra di campioni utilizzando MestReC software (Mestrelab Ricerca, www.mestrec.com) </li><li> Utilizzare una linea-ampliamento funzione apodizzazione di 0,5 Hz e si applicano a tutti HRMAS FID 1 H prima trasformata di Fourier. </li><li> Gli spettri di riferimento MR rispetto a TSP a δ = 0,0 ppm (standard esterno). </li><li> Fase di spettri e di applicare manualmente uno stimatore di base Whittaker per sottrarre i componenti generali della linea di base prima del calcolo delle aree dei picchi. </li><li> Stima delle aree dei picchi utilizzando il software MestReC. Scala di altezze del picco rispetto a TSP per ogni spettro acquisito (TSP picco altezza = 1). Usa t-test (a due code, p &lt;0,05) per confrontare all'interno del gruppo per i rapporti tra i gruppi. </li><li> 2D TOBSY parametri di processo sono: QSINE = 2 funzione finestra in entrambe le dimensioni, FT con punti 2k nella dimensione diretta e priva di riempimento al 1k nella seconda dimensione, la correzione di fase in entrambe le dimensioni e la correzione al basale nella seconda dimensione. </li><li> Produrre gli spettri 2D utilizzando il programma Sparky (TD Goddard e DG Kneller, SPARKY 3, USCF, <a href="http://www.cgl.ucsf.edu/home/sparky/">http://www.cgl.ucsf.edu/</a>home / Sparky /) </li></ol> Parte 5: Spectra Rappresentante da Live Drosophila melanogaster Flies Le procedure sopra descritte consentono di raccogliere spettri riproducibile dal vivo le mosche Drosophila melanogaster. Figure 2 e 3 mostrano rappresentante MR spettri acquisiti nel wild-type (WT) Oregon-R mosche. La figura 2 presenta 1D 1 H HRMAS spettri CPMG. Componenti lipidici principali [C H 3 (0,89 ppm), (C H 2) n (1,33 ppm), C H 2 C-CO (1.58ppm), C H 2 C = C (2,02 ppm), C H 2 C = O (2,24 ppm), C H = C H (5,33 ppm)], glicerolo (1,3-C H 4,10 ppm e 4,30 ppm; 2-CH 2 5,24 ppm), e piccoli metaboliti: β-Alanina (β-Ala , 2,57 ppm), acetato (At, 1,97 ppm), phosphocholine (PC, 3.22 ppm) e phophoetanolamine (PE, 3.23ppm) sono stati rilevati e assegnate in base ai rapporti prima del 4, 5. Segnali a 2,02 ppm sono stati assegnati ai protoni del metilene H2 C-CH = CH porzione di acidi grassi mono-insaturi (cioè palmitoleico). Gli acidi grassi insaturi sono stati identificati da un segnale a 5,33 ppm prodotta da protoni del-CH = CH-porzione. Metaboliti piccole dimensioni che non potevano essere assegnati o non erano visibili utilizzando lo spettro 1D sono stati rilevati utilizzando 2D 1 H-1 H TOBSY HRMAS (vedi figura 3). <img src="/files/ftp_upload/1710/1710fig1.jpg" alt="Figura 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 1"> Figura 1. Sperimentale messa a punto di in vivo HRMAS 1H MRS per lo studio della Drosophila vivere al 14,1 T. esterna di serie trimetilsilil-propionico-2 ,2,3,3-d4 acido in acqua deuterato (TSP / D 2 O). Nella piazza: posizione del rotore con un angolo magico nel HRMAS sonda. <img src="/files/ftp_upload/1710/1710fig2.jpg" alt="Figura 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 2"> Figura 2. In vivo 1D HRMAS 1 spettri H CPMG di un live mosca Drosophila melanogaster peso. Componenti lipidici: C H 3 (0,89 ppm), (C H 2) n (1,33 ppm), C H 2 C-CO (1.58ppm), acetato (Ac), C H 2 C = C (2,02 ppm), C H 2 C = O (2,24 ppm), β-Alanina (β-Ala), phosphocholine (PC) e phophoetanolamine (PE), glicerolo (1,3-C H 4,10, 4,30 ppm; 2-C H 2 5,22 ppm) , C H = C H (5,33 ppm). <img src="/files/ftp_upload/1710/1710fig3.jpg" alt="Figura 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figura 3"> Figura 3. In vivo 2D 1H-1H TOBSY HRMAS spettro di un moscerino Drosophila melanogaster peso vivo al 14,1 metaboliti T. Piccolo e componenti lipidici sono stati identificati. Metaboliti: alanina (Ala), β-Alanina (β-Ala), arginina (Arg), glutamina (Gln), glutammato (Glu), phosphocholine PC (PC), phophoetanolamine (PE), Taurina (Tau), α-glucosio (α-Glc) e glicerolo. Componenti Lipidi: C H 3 (0,89 ppm), (C H 2) n (1,33 ppm), C H 2 C-CO (1,58 ppm), C H 2 C = C (2,02 ppm), C H 2 C = O (2,24 ppm), C H = C H (5,33 ppm).

<ol><li>Apidianakis, Y., Rahme, L. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drosophila+melanogaster+as+a+model+host+for+studying+Pseudomonas+aeruginosa+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Drosophila melanogaster as a model host for studying Pseudomonas aeruginosa infection.</a> Nat Protoc. 4, 1285-1294 (2009).</li>
<li>Meiboom, S., Gill, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modified+spin-echo+method+for+measuring+nuclear+relaxation+time%5BTitle%5D)+AND+%22Rev+Sci+Instrum%22%5BJournal%5D)">Modified spin-echo method for measuring nuclear relaxation time.</a> Rev Sci Instrum. 29, 688-691 (1958).</li>
<li>Andronesi, O. C., Mintzopoulos, D., Struppe, J., Black, P. M., Tzika, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Solid-state+NMR+adiabatic+TOBSY+sequences+provide+enhanced+sensitivity+for+multidimensional+high-resolution+magic-angle-spinning+1H+MR+spectroscopy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Magn+Reson%22%5BJournal%5D)">Solid-state NMR adiabatic TOBSY sequences provide enhanced sensitivity for multidimensional high-resolution magic-angle-spinning 1H MR spectroscopy.</a> J Magn Reson. 193, 251-258 (2008).</li>
<li>Astrakas, L. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Proton+NMR+spectroscopy+shows+lipids+accumulate+in+skeletal+muscle+in+response+to+burn+trauma-induced+apoptosis%5BTitle%5D)+AND+%22Faseb+J%22%5BJournal%5D)">Proton NMR spectroscopy shows lipids accumulate in skeletal muscle in response to burn trauma-induced apoptosis.</a> Faseb J. 19, 1431-1440 (2005).</li>
<li>Fan, T. W. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metabolite+profiling+by+one-+and+two+dimensional+NMR+analysis+of+complex+mixtures%5BTitle%5D)+AND+%22Prog+Nuc+Magn+Reson+Spec%22%5BJournal%5D)">Metabolite profiling by one- and two dimensional NMR analysis of complex mixtures.</a> Prog Nuc Magn Reson Spec. 28, 161-219 (1996).</li>
<li>Null, B., Liu, C. W., Hedehus, M., Conolly, S., Davis, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-resolution%2C+in+vivo+magnetic+resonance+imaging+of+Drosophila+at+18.8+Tesla%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">High-resolution, in vivo magnetic resonance imaging of Drosophila at 18.8 Tesla.</a> PLoS One. 3, e2817-e2817 (2008).</li>
<li>Zektzer, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+signal+to+noise+in+high-resolution+magic+angle+spinning+total+correlation+spectroscopy+studies+of+prostate+tissues+using+rotor-synchronized+adiabatic+pulses%5BTitle%5D)+AND+%22Magn+Reson+Med%22%5BJournal%5D)">Improved signal to noise in high-resolution magic angle spinning total correlation spectroscopy studies of prostate tissues using rotor-synchronized adiabatic pulses.</a> Magn Reson Med. 53, 41-48 (2005).</li>
</ol>

Gli esperimenti sugli animali sono stati eseguiti in conformità con le linee guida e dei regolamenti previsti dal Massachusetts General Hospital di ricerca Comitato Istituzionale Animal Review Board.

Con l&#39;eccezione del recente rapporto della fattibilità di risonanza magnetica in vivo nei moscerini della frutta 6, studi in vivo MRS in Drosophila non sono ancora stati segnalati. Nel presente protocollo, si descrive l&#39;implementazione di un romanzo in vivo HRMAS 1 H-MRS approccio per la rilevazione di molecole biologicamente importanti. In particolare, abbiamo rilevato lipidi e metaboliti piccoli vivono Drosophila vola al 14,1 T in circa 45 minu...

<table><tbody><tr><td>Ossido di deuterio</td><td>Reagente</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>7789-20-0</td><td></td></tr><tr><td>3-(trimetilsilil)propionico-2,2,3,3-d&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt; acido</td><td>Reagente</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>24493-21-8</td><td></td></tr><tr><td>agar, saccarosio, lievito, farina di mais</td><td>Alimenti</td><td>Genesee Scientific</td><td></td><td>&lt;a href=&quot;http://www.flystuff.com/&quot;&gt;http://www.flystuff.com/&lt;/a&gt;</td></tr><tr><td>Moscerini Oregon RS o Canton-S</td><td>Linee di drosofile adulte</td><td>Centro di conservazione delle linee genetiche di Bloomington</td><td></td><td>&lt;a href=&quot;http://flystocks.bio.indiana.edu/&quot;&gt;http://flystocks.bio.indiana.edu/&lt;/a&gt;</td></tr><tr><td>Pennello</td><td>Attrezzatura</td><td></td><td></td><td>(dimensione 0)</td></tr><tr><td>tubi da 2 ml</td><td>Attrezzature</td><td>Fisher Scientific</td><td>K749521-1590</td><td></td></tr><tr><td>Incubatori per Drosophila</td><td>Attrezzatura</td><td></td><td></td><td>elevata capacità di umidità (60-75%), temperatura regolabile e ciclo luce:buio di 12 h:12 h.</td></tr><tr><td>Spettrometro NMR Bruker Bio-Spin Avance (600,13 MHz) con sonda tripla risonanza da 4 mm&lt;sup&gt;1&lt;/sup&gt;H, &lt;sup&gt;13&lt;/sup&gt;C, &lt;sup&gt;2&lt;/sup&gt;H) Sonda HRMAS </td><td>Attrezzature</td><td>Bruker Corporation</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Unità BTO-2000 in combinazione con un'unità pneumatica MAS</td><td>Attrezzature</td><td>Bruker Corporation</td><td></td><td></td></tr><tr><td>rotore in ossido di zirconio da 4 mm (capacità 50 µl)</td><td>Attrezzatura</td><td>Bruker Corporation</td><td>B3829 (negozio Bruker)</td><td></td></tr><tr><td>MestReC (Mestrelab Research) </td><td>Software</td><td></td><td></td><td>Analisi degli spettri NMR monodimensionali&lt;br/&gt;&lt;a href=&quot;http://mestrelab.com/&quot;&gt;http://mestrelab.com/&lt;/a&gt;</td></tr><tr><td>SPARKY 3, USCF</td><td>Software</td><td></td><td></td><td>Analisi spettrale NMR 2D&lt;br/&gt;&lt;a href=&quot;http://www.cgl.ucsf.edu/home/sparky/&quot;&gt;http://www.cgl.ucsf.edu/home/sparky/&lt;/a&gt;</td></tr></tbody></table>

spettroscopia di risonanza magnetica dal vivo drosophila melanogaster utilizzando magic angle spinning

Magnetic Resonance Spectroscopy of live Drosophila melanogaster using Magic Angle Spinning

Ad alta risoluzione magico angolo Spinning (HRMAS) spettroscopia di risonanza magnetica protonica (<sup&gt; 1</sup&gt; H-MRS) è una nuova tecnica non distruttiva che migliora spettrale linea larghezza e permette ad alta risoluzione da spettri ottenuti da estratti, di cellule intatte, colture cellulari e tessuti più importante intatto per indagare i rapporti tra i metaboliti e dei processi cellulari.<em&gt; In vivo</em&gt; HRMAS<sup&gt; 1</sup&gt; H-MRS studi devono ancora essere riportato nel moscerino della frutta dal vivo<em&gt; Drosophila melanogaster.</em&gt;<em&gt; Drosophila,</em&gt; Come un organismo semplice genetica, permette molteplici funzioni biologiche e diverse vie di segnalazione evolutivamente conservata da esaminare a livello intero organismo ed è un modello utile per studiare la genetica e la fisiologia. A tal fine, abbiamo sviluppato e implementato un<em&gt; In vivo</em&gt; HRMAS<sup&gt; 1</sup&gt; H-MRS metodo per studiare dal vivo<em&gt; Drosophila</em&gt; Al 14,1 T. Qui, delineare un HRMAS<sup&gt; 1</sup&gt; H-MRS protocollo per la caratterizzazione molecolare di<em&gt; Drosophila</em&gt; Con uno spettrometro convenzionale RM dotato di una sonda HRMAS. Questa tecnica è un romanzo,<em&gt; In vivo,</em&gt; Non distruttiva<em&gt; Drosophila</emApproccio di misura&gt; metabolita, che consente l&#39;identificazione di biomarcatori malattia e possono quindi contribuire al romanzo di sviluppo terapeutico.

Questa tecnica consente l&#39;utilizzo di alta risoluzione magic angle spinning spettroscopia RM del protone (1H-MRS HRMAS) per la caratterizzazione molecolare di vivere<em&gt; Drosophila melanogaster</em&gt; Con un tradizionale 14,1 tesla spettrometro dotato di una sonda HRMAS.

Spettroscopia di Risonanza Magnetica dal vivo Drosophila melanogaster Utilizzando Magic Angle Spinning

La spettroscopia di risonanza magnetica del protone (1H-MRS) ad alta risoluzione con rotazione all'angolo magico (HRMAS) è una tecnica non distruttiva innovativa che migliora la risoluzione spettrale...

24 ore prima dell'esperimento, una mosca maschio viene posta in un tubo da due millilitri. Dopo una breve anestesia con ghiaccio, la mosca viene inserita nel portacampioni dello spettrometro NMR, quindi posizionata nel tubo rotore. Una soluzione standard di TSP viene aggiunta sopra il portacampioni, dopodiché i rotori vengono chiusi con un tappo superiore.Il rotore viene inserito nella sonda H-R-M-A-S e posizionato all'angolo magico di 54,7 gradi. Lo spettrometro viene impostato per acquisire esperimenti monodimensionali e bidimensionali. Infine, gli spettri Mr. del campione vengono analizzati.Sono Valeria Rigi del Laboratorio Chirurgico di Risonanza Magnetica Nucleare presso il Dipartimento di Chirurgia del Massachusetts General Hospital e della Harvard Medical School. Ciao, sono Y AB del Laboratorio di Chirurgia Molecolare del Dipartimento di Chirurgia del Massachusetts General Hospital e della Harvard Medical School. Salve, sono Lawrence Achman, direttore del Laboratorio di Chirurgia Molecolare e del Dipartimento di Chirurgia del Massachusetts General Hospital e della Harvard Medical School.E io sono Mario Zika, direttore del Laboratorio Chirurgico di Risonanza Magnetica Nucleare presso il Massachusetts Journal Hospital e affiliato al centro Aula Martin della Harvard Medical School. Oggi vi mostreremo un procedimento per la caratterizzazione molecolare di grandi campioni di Melanogaster mediante spettroscopia di risonanza magnetica con rotazione sotto angolo magico. Nel nostro laboratorio, utilizziamo questo procedimento per studiare i metaboliti cellulari in vivo al fine di identificare biomarcatori di malattia che contribuiscano allo sviluppo di nuove terapie. Cominciamo dunque.Iniziare la preparazione raccogliendo moscerini appena schiusi per tre giorni, quindi trasferirli in provette contenenti nuovo alimento per moscerini. Incubare i moscerini raccolti per cinque giorni, in modo che risultino di età compresa tra cinque e otto giorni poco prima dell'esperimento. Utilizziamo esclusivamente moscerini maschi nei nostri esperimenti.Preparare provette sperimentali da due millilitri per le mosche utilizzando un ago per insulina riscaldato alla fiamma per praticare un foro nel tappo della provetta. Posizionare ora singole mosche nelle provette contenenti un pezzetto di alimento per mosche 24 ore prima dell'esperimento. Utilizzare una bilancia ad alta precisione per pesare le provette immediatamente prima e dopo l'inserimento della mosca e determinare il peso di ciascuna mosca sottraendo i due valori.Una singola mosca maschio di solito pesa circa da 0,7 a un milligrammo con le mosche preparate. Esaminiamo la preparazione del rotore per la spettroscopia ad alta risoluzione con rotazione all'angolo magico, o H-R-M-A-S. Per iniziare.Posizionare un singolo tubo sul ghiaccio per meno di un minuto. Per anestetizzare la mosca all'interno, appoggiare la mosca su uno strato di carta d'alluminio posta sul ghiaccio e utilizzare un pennello morbido per spingerla delicatamente nello spazio cavo semisferico dell'inserto NMR. Assicurarsi che la mosca sia completamente inserita, evitando qualsiasi lesione.Posizionare l'inserzione nel tubo rotore in ossido di zirconio in modo da collocare le mosche tra l'inserzione del rotore e il fondo del rotore. Chiudere ora l'inserzione con una vite e coprirla con paraform per evitare qualsiasi contatto tra la mosca e la soluzione standard TSP, che funge da riferimento sia per lo spostamento chimico di risonanza che per la quantificazione. Aggiungere otto microlitri di soluzione standard TSB sulla parte superiore dell'inserzione del rotore, fissare e serrare l'intero sistema del rotore con il tappo superiore; una volta completato il montaggio del rotore, vediamo come acquisire i dati H-R-M-A-S.Inserire il rotore nella sonda H-R-M-A-S e posizionarlo all'angolo magico, 54,7 gradi. Successivamente, impostare la velocità di rotazione H-R-M-A-S-H per una spettroscopia di risonanza magnetica nucleare in condizioni di MAS a due kilohertz MAS e utilizzare un regolatore di velocità MAS per stabilizzarla. Impostare la temperatura a quattro gradi Celsius mediante un'unità BTO 2000.In combinazione con l'unità pneumatica MAS. I moscerini vengono mantenuti a quattro gradi Celsius all'interno dello spettrometro per mantenere l'anestesia, preparare il magnete, sintonizzare e adattare la bobina per ottenere prestazioni ottimali e shimare il magnete per una qualità ottimale degli spettri. Una volta completato lo shimming, sincronizzare il ritardo INTERPULSE con la frequenza di rotazione MAS.Impostare il numero di transitori a 256 con 32.768 punti di dati. Acquisire uno spettro monodimensionale ad impulso singolo utilizzando una sequenza di impulsi car sincronizzata con il rotore, Purcell MEO kill o spin-eco CPMG. Questa sequenza funziona come un filtro T₂ per rimuovere l'allargamento spettrale.Ora acquisire lo spettro monodimensionale di una singola mosca su tutti i campioni utilizzando una sequenza topsy con impulsi atic. Aprire il rotore ed estrarre la mosca. Vediamo ora come analizzare i dati.Utilizziamo il software mare per analizzare gli spettri RM dei nostri campioni. Per iniziare, utilizzare una funzione di allargamento della linea di 0,5 hertz e applicarla a tutti gli HRM A SH one fis prima della trasformazione di Fourier. Fare riferimento agli spettri RM rispetto al TS P a delta uguale a 0,0 parti per milione.Effettuare la fase dello spettro manualmente e applicare un estimatore di baseline di tipo Whitaker per sottrarre le componenti larghe della baseline prima del calcolo delle aree dei picchi. Stimare le aree dei picchi mediante il software mastre. Scalare le altezze dei picchi rispetto al TSP per ciascuno spettro acquisito.Ora esaminiamo alcuni risultati rappresentativi di spettroscopia MRS. Qui viene mostrato uno spettro tipico 1H HR-MAS 1H-CPMG acquisito in moscerini di tipo selvatico Oregon R. I principali componenti lipidici, il glicerolo e piccoli metaboliti come la beta-alanina, l'acetato, la fosfocolina e la fosfoetanolammina sono stati rilevati e assegnati in accordo con studi precedenti. I segnali a 2,02 parti per milione sono stati attribuiti ai protoni del gruppo metilenico della porzione propano degli acidi grassi monoinsaturi. Gli acidi insaturi sono stati identificati mediante un segnale a 5,33 parti per milione prodotto dai protoni del gruppo alchenilico.I metaboliti piccoli che non potevano essere assegnati o non erano visibili utilizzando lo spettro 1D sono stati rilevati mediante due DH una H una top Z-H-R-M-A-S. Finora vi abbiamo mostrato per la prima volta come studiare il profilo biochimico di Drosophila vive mediante spettroscopia di risonanza magnetica ad alta risoluzione con rotazione all'angolo magico. Quando si esegue questa procedura, è importante utilizzare un tampone morbido per inserire le mosche senza provocare loro lesioni.Assicurarsi di non stringere troppo la vite, evitando così di danneggiare l'insetto, e non acquisire spettri per più di un'ora perché le mosche potrebbero non sopravvivere. Questo è tutto. Grazie per aver guardato e buona fortuna con il vostro esperimento.

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