Screening per le modifiche genomiche: un metodo per identificare i mutanti generati da CRISPR in Drosophila

0 views • 3:48 min • April 30th, 2023

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- Quando gli embrioni iniettati si sviluppano in adulti G0, incrociare tutti i singoli moscerini con ceppi bilanciatori adatti per espandere le potenziali linee modificate F1 CRISPR ed essere in grado di tracciare l'ereditarietà della modifica genomica. Quindi, incrocia maschi singoli F1 scelti casualmente con femmine bilanciatrici adatte per essere in grado di recuperare la prole se un maschio F1 è positivo per la mutazione. Una volta che la croce è stata effettuata, trasferire il maschio F1 in una provetta per lo screening.

Per estrarre il DNA genomico, schiacciare la mosca con una punta per pipetta contenente un tampone di estrazione. Una volta che il tessuto è stato scomposto, espellere il liquido. Il tampone di estrazione contiene proteinasi K, un enzima che digerisce le proteine nel campione e viene inattivato dal calore elevato.

Ora che il DNA è accessibile, procedere allo screening PCR. Ad esempio, utilizzare primer progettati per amplificare una regione che include la nuova sequenza. Solo in presenza della modifica si legherà il secondo primer e verrà amplificato un prodotto per PCR. Nell'esempio, vedremo i moscerini allevati e sottoposti a screening mediante PCR per l'inserimento di una sequenza di transattivazione che sostituisce il primo esone del gene senza ramifici.

- Quando gli embrioni nos-Cas9 precedentemente iniettati sia con il plasmide di espressione dell'RNA guida che con il donatore sostitutivo si sviluppano in adulti, incrociano i moscerini G0 individualmente con i moscerini bilanciatori da una linea appropriata per l'allele bersaglio. Anestetizzare la prole F1 da ogni incrocio G0 su un tampone di anidride carbonica e scegliere casualmente da 10 a 20 maschi sotto uno stereomicroscopio. Incrociare individualmente ogni maschio selezionato con una femmina bilanciatrice da una linea appropriata per l'allele bersaglio.

Quando le larve F2 si schiudono, scegli il padre F1 da ogni incrocio. Estrarre il DNA genomico schiacciando ogni mosca per 10-15 secondi con una punta di pipetta contenente 50 microlitri di tampone di schiacciamento senza erogare il tampone. Quindi, erogare il tampone rimanente nella provetta e mescolare bene.

Incubare a 37 gradi Celsius per 20-30 minuti. Dopo l'incubazione, posizionare le provette in un blocco termico a 95 gradi Celsius per 1 o 2 minuti per inattivare la proteinasi K. Dopo aver centrifugato per 5 minuti a 10.000 volte g, conservare la preparazione a 4 gradi Celsius per ulteriori analisi PCR.

Eseguire screening basati su PCR in tre fasi utilizzando i primer avanti 1 e indietro 1 per verificare l'esistenza dell'inserimento o della sostituzione. Eseguire la PCR utilizzando i primer forward 2 e reverse 2 per verificare l'inserimento o la sostituzione da tre regioni prime. Eseguire la PCR utilizzando i primer M13F e reverse 3 per controllare le estremità in HDR.

- Mantieni le linee di mosca con l'HDR confermato e stabilisci le scorte di bilanciamento dalla generazione F2. L'incrocio vola di nuovo per rimuovere eventuali mutazioni indesiderate su altri cromosomi.

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Last updated: 11 July 2026