Essiccazione chimica: preparazione di campioni biologici per microscopia elettronica a scansione (SEM)

0 visualizzazioni4:17 min • April 30th, 2023

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- Per iniziare, iniziare disidratando ed essiccando un campione fisso per ridurre la distorsione del campione causata dalla rimozione di gas e acqua liquida alla pressione operativa ridotta dei microscopi elettronici a scansione convenzionali, SEM.

Per disidratare il campione, lavarlo con concentrazioni crescenti di etanolo in acqua fino a raggiungere il 100% di etanolo. Quindi ripetere questo processo con un agente essiccante chimico in etanolo fino a quando il campione non viene lavato con un agente essiccante puro. Trasferire il campione e l'agente essiccante in una capsula di evaporazione. Coprirlo con una quantità minima di essiccante aggiuntivo e lasciarlo asciugare in una cappa aspirante per una notte.

Quindi, montare il campione preparato sulla parte superiore di un tronchetto del microscopio utilizzando del nastro adesivo al carbonio. Infine, applica la vernice d'argento ai bordi dello stub, quindi dal bordo dello stub a ciascuno dei campioni, per ridurre l'accumulo di elettroni in eccesso, che potrebbero causare artefatti indesiderati dell'immagine.

In questo esperimento, i moscerini della frutta, Drosophila melanogaster, vengono preparati per l'analisi SEM utilizzando l'agente essiccante HMDS.

- Per preparare la Drosophila melanogaster, immergere le mosche anestetizzate in 1 millilitro di fissativo per 2 ore a 4 gradi Celsius, assicurandosi che siano completamente sommerse.

Utilizzare una pipetta di vetro per rimuovere il fissativo. Lavare tre volte il campione di Drosophila fissato in una provetta da microcentrifuga da 1,5 millilitri con 1 millilitro di tampone fosfato molare 0,1 a pH 7,2 a temperatura ambiente per 10 minuti. Utilizzare una pipetta di vetro per rimuovere ogni lavaggio, facendo attenzione a non rimuovere il campione.

Quindi disidratare il campione in una provetta per microfuge, in un volume di 1 millilitro, utilizzando una serie di etanolo graduato per 10 minuti ciascuna. Utilizzare una pipetta di vetro per rimuovere ogni lavaggio, facendo attenzione a non rimuovere il campione. Conservare il campione nella provetta da microcentrifuga da 1,5 millilitri con una quantità di etanolo al 100% sufficiente a coprirlo.

Per eseguire l'essiccazione chimica delle mosche utilizzando HMDS, in primo luogo, sostituire la soluzione di etanolo al 100% con una soluzione da 1 a 2 di HMDS ed etanolo al 100% per 20 minuti. Quindi sostituire la soluzione con una soluzione 2 a 1 di HMDS ed etanolo al 100% per 20 minuti. Infine, sostituisci questa soluzione con 100% HMDS per 20 minuti, quindi ripeti il processo una volta.

Trasferire il campione, che si trova in una provetta da microcentrifuga da 1,5 millilitri e HMDS, in un piatto di pesata monouso in alluminio. Sostituire l'HMDS al 100% con un HMDS fresco al 100% sufficiente a coprire il campione. Posizionare il campione all'interno della capsula di alluminio direttamente in una cappa chimica per asciugare con un coperchio allentato, come una scatola, per evitare che i detriti cadano sul campione e lasciarlo asciugare per 12-24 ore.

Per montare la Drosophila, etichettare la parte inferiore di un tronchetto di montaggio in alluminio. Usa una pinzetta di precisione per posizionare le mosche essiccate nella posizione desiderata su una linguetta adesiva in carbonio fissata alla parte superiore di un troncone sotto un microscopio da dissezione. Applicare l'adesivo conduttivo argentato attorno ai bordi esterni delle borchie.

Usa uno stuzzicadenti per collegare la vernice argentata alle mosche, garantendo la conduttività, assicurandoti che la vernice non tocchi l'area di imaging desiderata. Metti i mozziconi in una scatola porta mozziconi. E poi metti la scatola del portatronco aperta in un essiccatore e lascia asciugare la vernice d'argento per almeno tre ore.

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Ultimo aggiornamento: 1 agosto 2026