JoVE Encyclopedia of Experiments
Biologia
0 visualizzazioni • 3:23 min • April 30th, 2023
- Preparare aghi per iniezione conici tirando capillari di vetro a parete sottile utilizzando un estrattore per aghi. Tieni un ago sotto un microscopio e rompi la punta, assicurandoti che l'apertura sia abbastanza grande da perforare la cuticola della mosca adulta senza ferirla più del necessario. Misurare il volume di iniezione caricando l'ago con una soluzione tampone sterile di colorante e sale e quindi espellendolo su una goccia di olio minerale su un micrometro da tavolino. Utilizzare la scala sul micrometro per misurare il diametro della gocciolina espulsa, che può essere utilizzata per calcolare il volume erogato e calibrare di conseguenza le impostazioni dell'iniettore.
Caricare l'ago con la soluzione iniettabile e montarlo su un ugello di iniezione. Anestetizza le tue mosche con CO2 e disponile su un cuscinetto antimosche CO2 che le manterrà anestetizzate. Una volta che le mosche sono nell'orientamento corretto per il tuo esperimento, procedi con le iniezioni. Nel protocollo di esempio, inietteremo moscerini adulti con particelle marcate con fluoresceina per l'imaging in vivo.
- Dopo aver estratto capillari di vetro a parete sottile con un estrattore per aghi, utilizzare un micrometro per tenere l'ago al microscopio e utilizzare cinque pinzette in acciaio inossidabile a punta fine per rompere la punta a un diametro della punta di 100 micrometri. Per misurare il volume di liquido che verrà iniettato in ogni mosca, caricare un ago capillare con colorante alimentare sterile al 5% in PBS ed espellere il liquido su una goccia di olio minerale su un micrometro da stadio di 0,01 millimetri.
Erogare 10 microlitri di particelle da 1,6 milligrammi per millilitro su un piccolo quadrato di parafilm e tirare il liquido nell'ago. Montare l'ago nell'ugello dell'iniettore e allineare le mosche anestetizzate lungo l'area designata sul cuscinetto volante, con il lato ventrale rivolto verso l'alto, con le teste orientate verso la parte anteriore del cuscinetto. Posizionare le fiale nelle aree corrispondenti sul banco e iniettare le mosche nell'angolo superiore dell'addome con cinque pompe di liquido da 100 millisecondi per erogare circa 10 nanolitri di particelle in totale. Trasferire ogni mosca nell'apposito flaconcino man mano che viene iniettato, annotando l'ora sul flaconcino.
Quindi, caricare un nuovo ago con una soluzione di Trypan Blue allo 0,4% e impostare l'iniettore pneumatico su "gated" per consentire un flusso d'aria costante per spingere il liquido fuori dall'ago. 30 minuti dopo l'iniezione iniziale, iniettare ogni addome di mosca con Trypan Blue fino a quando gli addomi non sono pieni e distesi. Monta le mosche su vetrini da microscopio con il nastro isolante con il lato ventrale rivolto verso il basso, spingendo le ali sul lato della mosca per fissarle al nastro. Quindi spingere delicatamente la testina nel nastro per assicurarsi che la mosca non si muova.
In questo articolo viene descritto un protocollo per l'iniezione di particelle marcate con fluoresceina in moscerini adulti al fine di effettuare imaging in vivo. Il metodo prevede la preparazione di aghi di iniezione affusolati e l'anestesia dei moscerini per facilitare iniezioni precise.
La somministrazione precisa di composti in organismi modello consente la riduzione del rischio meccanicistica dei bersagli terapeutici e supporta lo sviluppo di saggi nelle fasi iniziali. Questo metodo fornisce un approccio scalabile per l'introduzione di composti marcati o biologici in Drosophila adulte, facilitando le analisi fenotipiche e le procedure di validazione del bersaglio. Standardizzando il volume di iniezione e minimizzando i danni ai tessuti, migliora la riproducibilità nei flussi di lavoro della biologia della scoperta.
Questo metodo si inserisce nel percorso di scoperta che va dal test dell'ipotesi sul bersaglio all'identificazione del composto guida, in particolare quando è necessario visualizzare in vivo la localizzazione del composto o la modulazione del bersaglio.
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Ultimo aggiornamento: 22 agosto 2026