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- Inizia pulsando la Drosophila anestetizzata insieme al tampone in un frullatore per rompere le mosche in piccoli pezzi. Filtrare il composto attraverso una rete per rimuovere le parti del corpo più grandi. Quindi, lascia affondare le uova mentre i frammenti più grandi rimangono in superficie e possono essere rimossi.
Ripeti questo processo utilizzando una rete più piccola per rimuovere ulteriori detriti. Raccogli le uova in una fiala e, se le uova devono essere trattate con un farmaco, fallo a questo punto. Quindi, rimuovere il liquido e sostituirlo con un fissativo. Aggiungi eptano per aiutare il fissativo a penetrare nella membrana che circonda l'uovo.
Quindi, lavare via il fissativo con PBS. Per colorare gli ovociti, rimuovere le membrane esterne protettive per consentire la penetrazione degli anticorpi. Pipettare gli ovociti sulla parte smerigliata di un vetrino. Posiziona un vetrino coprioggetti sulle uova e arrotola delicatamente il vetrino coprioggetti con un movimento avanti e indietro per separare meccanicamente il corion e la membrana vitellina dall'uovo. Gli ovociti sono ora pronti per essere colorati.
Nel protocollo di esempio, prepareremo gli ovociti nella meiosi I per colorare e visualizzare l'apparato del fuso.
- Per iniziare, pretagliare l'interno di una provetta da 5 millilitri e una pipetta Pasteur con PTB per evitare che gli ovociti si attacchino alle superfici. Aggiungi 100 millilitri di tampone di Rob a un frullatore e poi aggiungi da 100 a 300 mosche anestetizzate e pulsa tre volte per un secondo.
Filtrare il liquame risultante in un becher da 250 millilitri attraverso una maglia larga con pori di circa 1500 micrometri. Lasciare riposare il filtrato per circa due minuti e poi aspirare lo strato superiore, rimuovendo il maggior numero possibile di parti del corpo di grandi dimensioni. Filtrare nuovamente il liquame in un becher da 250 millilitri attraverso una maglia più piccola con una dimensione dei pori di 300 micrometri.
Sciacquare il primo becher utilizzando un tampone aggiuntivo nella pipetta rivestita per raccogliere gli ovociti rimanenti. Lasciare riposare l'impasto liquido per tre minuti e poi aspirare tutti i 10 millilitri inferiori. Versare la maggior parte possibile dei 10 millilitri nel tubo da 5 millilitri rivestito. Lasciare riposare l'impasto per circa due minuti e poi rimuovere con cura il liquido.
Aggiungere il resto dei 10 millilitri di liquame e lasciare che il composto si depositi nuovamente prima di rimuovere il liquido. Sciacquare gli ovociti rimanenti dal becher utilizzando un tampone aggiuntivo nella pipetta rivestita. Lasciare riposare il risciacquo nel tubo da 5 millilitri per tre-cinque minuti.
Per fissare le ovaie, per prima cosa, aspirare tutto il liquido dai tessuti e aggiungere immediatamente 1 millilitro di miscela fissa. Metti i fazzoletti su un nutatore per due minuti e mezzo. Quindi, aggiungi 1 millilitro di eptano, agita la provetta per un minuto, quindi lascia riposare gli ovociti per un altro minuto.
Rimuovere tutto il liquido dal tessuto depositato, quindi aggiungere 1 millilitro di 1x PBS. Agitare la tuba per 30 secondi, quindi lasciare riposare gli ovociti per un minuto. Successivamente, rimuovere tutto il liquido dal tubo e riempirlo con cinque millilitri di 1x PBS.
Utilizzando la pipetta rivestita, aggiungere circa 500-1.000 ovociti a un vetrino di vetro smerigliato. Rimuovere eventuali parti del corpo o materiali estranei utilizzando una pinza. Posizionare un vetrino coprioggetti sopra il fazzoletto e arrotolare delicatamente gli ovociti fino a rimuovere tutte le membrane. Trascinare il bordo del vetrino coprioggetti sugli ovociti funziona bene. Controllare periodicamente l'andamento della rimozione della membrana al microscopio. Troppa pressione distruggerà gli ovociti.