Drosophila In Vivo Imaging del calcio: un metodo per l'imaging funzionale dell'attività neuronale

0 visualizzazioni4:02 min • April 30th, 2023

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- Per eseguire l'imaging del calcio in vivo nel sistema nervoso della Drosophila, indirizzare l'espressione di un indicatore del calcio geneticamente codificato, come GCaMP, ai neuroni di interesse. Quando i neuroni attivano un potenziale d'azione, la rapida depolarizzazione della membrana provoca l'apertura dei canali del calcio voltaggio-dipendenti, portando a un afflusso di calcio extracellulare nella cellula.

GCaMP è una proteina di fusione in cui la proteina fluorescente verde potenziata, o EGFP, viene modificata e fusa al frammento M13 della catena leggera della miosina all'N-terminale e alla proteina legante il calcio, la calmodulina, all'estremità C. Il calcio si lega alla calmodulina, innesca cambiamenti di conformazione nella GCaMP, causando un aumento della fluorescenza della proteina.

Per visualizzare i cambiamenti nella fluorescenza GCaMP come proxy per l'attività neuronale in vivo, esporre la regione del sistema nervoso con l'attività prevista. Quindi, utilizzare un microscopio a fluorescenza in grado di catturare le dinamiche GCaMP ed è dotato di una configurazione di erogazione dello stimolo. Eroga lo stimolo, ad esempio un odore, mentre registri la fluorescenza GCaMP nei neuroni che rispondono.

Nel protocollo di esempio, vedremo l'imaging funzionale GCaMP utilizzato per visualizzare le risposte nei corpi dei funghi del cervello durante l'apprendimento associativo olfattivo.

- Per la visualizzazione degli indicatori di calcio basati su GFP, regolare il laser di un microscopio multifotone dotato di un laser a infrarossi e di un obiettivo a immersione in acqua, installato su un tavolo isolato dalle vibrazioni, su una lunghezza d'onda di eccitazione di 920 nanometri e installare un filtro passa-banda GFP. Utilizzando la manopola di regolazione Z grossolana, eseguire la scansione dell'asse Z del cervello per individuare la regione cerebrale di interesse. Utilizzare la funzione di ritaglio per concentrare la scansione solo sull'area di interesse per ridurre al minimo il tempo di scansione e ruotare la vista di scansione in modo che la parte anteriore della testa sia rivolta verso il basso. Quindi, regolare le dimensioni del fotogramma su 512 x 512 pixel e selezionare la regione da scansionare, tenendo conto del tempo di scansione calcolato per ciascun fotogramma per ottenere un frame rate di almeno 4 Hertz.

Per la visualizzazione dei transitori di calcio evocati dagli odori, avviare un pacchetto macro pre-programmato in grado di collegare il software di acquisizione delle immagini e il programma di erogazione degli odori e iniziare la misurazione nel software del microscopio per 6,25 secondi per stabilire un valore di base F0. Nel sistema di erogazione degli odori, erogare uno stimolo olfattivo di 2,5 secondi, indicato qui dall'accensione dei LED, attivato dall'apertura e dalla chiusura di specifiche valvole della coppa degli odori, seguito da 12,5 secondi di registrazione al termine dell'offset dell'odore. Quindi, ripetere l'erogazione per un secondo e un terzo odorante allo stesso modo.

Per eseguire il condizionamento associativo in questa configurazione, utilizzare il sistema di erogazione degli odori controllato da computer per presentare lo stimolo condizionato più l'odore per 60 secondi, insieme a 12 scosse elettriche da 90 volt. Dopo una pausa di 60 secondi, presentare lo stimolo della condizione meno l'odore da solo per 60 secondi senza scosse elettriche. Misurare nuovamente i transitori di calcio evocati dagli odori post-allenamento ripetendo il protocollo di stimolazione degli odori pre-allenamento 3 minuti dopo aver terminato la fase di allenamento. Quindi, salvare i file di imaging in un formato appropriato per una successiva analisi dell'immagine.

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Ultimo aggiornamento: 15 agosto 2026