Alimentazione FITC-destrano: un metodo per quantificare la permeabilità intestinale in C. elegans

0 visualizzazioni2:56 min • April 30th, 2023

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- C. elegans è utilizzato come modello sperimentale di infezione da patogeni intestinali che causano la malattia, in parte, interrompendo la barriera intestinale, aumentandone la permeabilità. Per quantificare l'integrità della barriera dopo l'esposizione a un batterio o a un composto chimico di interesse, raccogliere i vermi lavandoli via dalle piastre.

Successivamente, posiziona questi vermi su piastre di agar con cibo etichettato composto da E. coli ucciso a caldo mescolato con FITC-destrano, un polisaccaride ad alto peso molecolare con un'etichetta fluorescente.

Consenti ai vermi di mangiare i batteri etichettati. Quelli con barriere intestinali intatte elimineranno rapidamente il cibo, mentre nei vermi con intestino più permeabile, il marcatore fluorescente penetrerà oltre il lume dell'organo.

Trasferisci i vermi in una soluzione di formaldeide per fissare gli animali. Dopo 1 o 2 minuti, sostituire la formaldeide con un mezzo di montaggio.

Infine, visualizza i vermi mediante microscopia a fluorescenza. Si noti che i granuli intestinali di C. elegans sono autofluorescenti, quindi ci sarà un segnale di fondo. Ma nel complesso, una maggiore fluorescenza intestinale indica una maggiore permeabilità.

Nel protocollo di esempio, valuteremo l'effetto del trattamento con la biomolecola DIM sulla permeabilità intestinale di vermi infettati da batteri patogeni Pseudomonas aeruginosa.

- Preparare le piastre integrate con FITC destrano mescolando 2 millilitri di E. coli inattivato termicamente con 4 milligrammi di FITC-destrano. Aggiungere 100 microlitri della miscela a ciascuna delle 20 piastre di agar NGM fresche e lasciare asciugare le piastre per un'ora su un banco da laboratorio pulito. Dopo 48 ore di trattamento, lavare i vermi con S Buffer. Trasferirli in piastre integrate con FITC-destrano e in piastre NGM senza FITC-destrano e incubare le piastre per una notte.

Il giorno successivo, lavare i vermi con S Buffer e lasciarli strisciare nella piastra di agar NGM fresca per un'ora. Aggiungere 50 microlitri di formaldeide al 4% in ciascun pozzetto di una piastra nera a fondo piatto a 96 pozzetti e trasferire circa 50 vermi in ciascun pozzetto. Dopo 1 o 2 minuti, rimuovere tutta la formaldeide e aggiungere 100 microlitri di terreno di montaggio in ogni pozzetto.

- La formaldeide è una sostanza chimica tossica e deve essere maneggiata con cura.

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Ultimo aggiornamento: 1 agosto 2026